Conditions for effcient formation and regeneration of protoplasts of Micromonospora rosaria and Micromonospora purpurea were investigated. The state of inoculm, culture stage and growth in a medium containing partially growth-inhibiting concentration of glycing have significant effects on portoplasting. A high frequency of regeneration (up to 30%) was accomplished with a hypertonic regeneration agar medium defined by Okanishi for Strptomyces. Using the optimal conditions for protroplasting and regeneration, protoplast fusion of auxotrophic M.rosaria was carried out. Polyethylene glycol 1,000 was chosen for fusogenic agent. When signgle auxotrophs were used, the recombinant frequency of auxortrophic markers varied from 1.3 to 3.2%. Using two double auxotrophs, the recombinant frequencies of 0.7-4.3% were obtained. Much lower frequencies(three or more orders of magnitude) were observed by the conventional matings.
The optimal conditions for the production and regeneration of L. helveticus protoplasts were examined. The protoplast formation of L. helveticus was most efficient obtained when the cells grown to mid and late logarithmic phase in MRS medium were used. The maximum number of protoplasts was obtained when lysozyme and mutanolysin were used to lysis the cell wall in 20mM HEPES buffer (pH 7.0) containing 1M sucrose. Regeneration was accomplished with a complex medium containing 10% sucrose, 10mM MaCl2, 20mM CaCl2, 5% gelatin and 0.5% bovine serum albumin. The regeneration frequency of the protoplasts was 10-20% after 5 days of incubation at 30C.
A reproducible transformation system via optimized regeneration media for Korean rice cultivars was established using Agrobacterium tumefeciens LBA4404 (pSBM-PPGN; gusA and bar). Although japonica rice genotypes were easier to produce transgenic plants compared to Tongil type cultivars, transformation efficiencies were not always correlated with regeneration efficiencies of non-transgenic callus on the control medium. Regeneration efficiencies of Donganbyeo, Ilmibyeo, and Manchubyeo were over 50% in non-transgenic control, however, transformation efficiencies were significantly low when only sucrose was added to the media as a carbon source. However, the medium, MSRK5SS-Pr (or MSRK5SM-Pr), that contains $5\textrm{mgL}^{-1}$ kinetin, $0.5\textrm{mgL}^{-1}$ NAA, 2 % sucrose (or maltose), 3% sorbitol, and $500\textrm{mgL}^{-1}$ proline, was the most efficient not only for regeneration of non-transgenic callus but also for regeneration of transgenic callus in the presence of L-phosphinotricin (PPT). Average transformation efficiencies of 16 Korean rice cultivars were significantly enhanced by using the optimized medium from 1.5% to 5.8% in independent callus lines and from 2.9% to 19.4% in tromsgenic plants obained. Approximately 98.9% (876 out of 885) transgenic plants obtained on optimized media showed basta resistance. Stable integration, inheritance and expression of gusA and bar genes were continued by GUS assay and PCR and Southern analysis of the bar gene. With Pst1 digestion of genomic DNA of transgenic plants, one to five copies of T-DNA segment were observed; however, 76% (19 out of 25 transgenic plants) has low copy number of T-DNA. The transformants obtained from one callus line showed the same copy numbers with the same fractionized band patterns.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.24
no.1
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pp.29-36
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2004
In an effort to optimize tissue culture responses of zoysiagrass(Zoysia japonica Steud.) for genetic transformation, factors affecting callus induction and plant regeneration were investigated. MS medium containing 3 mg/L 2,4-D was optimal for embryogenic callus induction from mature seed. The plant regeneration frequency of 73.3% was observed when embryogenic calli induced in this medium were transferred to N6 medium supplemented with 0.1 mg/L 2,4-D and 5 mg/L BA. Among several basic media, MS and N6 medium were optimal for callus induction and plant regeneration, respectively. Regenerated plants were grown normally when shoots transplanted to the soil. A rapid and efficient plant regeneration system established in this study will be useful for molecular breeding of turfgrass through genetic transformation.
Yang Zhi Hong;Jin Hua;Plaha Prikshit;Woong Bae Tae;Jiang Guo Bin;Woo Jong Gyu;Yun Han Dae;Lim Yong Pyo;Lee Hyo Yeon
Journal of Plant Biotechnology
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v.6
no.4
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pp.235-239
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2004
We studied the effect of genotype, explant, age of explant, medium (plant growth regulators and gelling agents), and standardized an efficient regeneration protocol for inbred lines of Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). Of the different concentrations of NAA and BA tested, the combination of $5\;\cal{mg/L}\;BA\;and\;0.5\;\cal{mg/L}$ NAA gave the highest frequency of shoot regeneration. The cotyledonary explants had more shoot regeneration frequency ($\ge40\%$) than the hypocotyl ex-plants. Besides, the cotyledonary explants, excised from the 4-day old seedlings, showed higher shoot regene-ration ($56.7\%$). Of the three gelling agents and their concentrations used, 16 g/L agar was found to be the best for shoot regeneration. Shoot regeneration frequency in-creased significantly by supplementing the medium with $4\;\cal{mg/L}\;of\;AgNO_3$ MS medium devoid of NAA showed higher frequency of rooting in the regenerated shoots than the ones supplemented with NAA. Our improved regeneration protocol will be especially useful for the genetic transformation of Chinese cabbage inbred lines to develop transgenic hybrids.
To establish the system of in uitro plant regeneration, the leaf segments of Sedum sarmentosum were cultured on MS media supplemented with different levels of 2,4-D, NAA and BA. The callus induction and growth showed a good response on MS medium supplemented with 3.0mg/L 2,4-D and 1.0mg/L BA, but a few callus induced on medium containing NAA and BA. In plant regeneration, combination of BA and NAA promoted shoot organogenesis from callus, and the highest frequency was obtained on MS medium supplemented with 0.2mg/L NAA and 3.0mg/L BA. When calli were transferred to the plant regeneration medium containing 0.2mg/L NAA and 3.0mg/L BA, healthy shoots without hyperhydricity were continuously induced (17.2 plantlets per callus) after 50 days of culture. When regenerated plantlets were transferred onto hormone-free MS medium, rooting was easily achieved from all of them.
The establishment of cell suspension culture and plant regeneration of the halophytic Leymus chinensis (Trin.) are described in this study for the first time. Callus induction solid medium containing Murashige and Shoog (MS) basic salt, $2.0\;mg\;l^{-1}$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and $5.0\;mg\;l^{-1}$ L-glutamic acid with $30.0\;g\;l^{-1}$ sucrose and $4.0\;g\;l^{-1}$ gelrite for solidification induced the highest rate of cell division in Type 1 callus among calli of various types. Liquid medium with the same hormone distribution was therefore, used for cell suspension culture from Type 1 callus. Over a 30 d suspension culture at 100 rpm, great amounts of biomass were accumulated, with 71.07% average daily increment and 22.32-fold total fresh weight increment. Comparison of before and after suspension culture, the distribution of different size callus pieces and the maintenance of callus type were basically unaltered, but a slight increase in relative water contents was observed. To induce the potential of plant regeneration, the directly transferring on plant regeneration solid medium containing MS basic salt, $0.2\;mg\;l^{-1}$$\alpha$-naphthalene acetic acid (NAA), $2.0\;mg\;l^{-1}$ kinetin (Kn), and $2.0\;g\;l^{-1}$ casamino acid and indirectly transferring were simultaneously performed. Even now growth rates of suspension-derived callus on solid medium were approximately half of those of Type 1 callus, but faster somatic embryogenesis was observed. Rooting of all regenerated shoots was successfully performed on half-strength MS medium. All plants appeared phenotypically normal.
Xinlei Bai;Han-Sol Lee;Hosakatte Niranjana Murthy;Hyuk-Joon Kwon;Soo-Ho Yeon;Jae-Yeong Ju;So-Young Park
Korean Journal of Plant Resources
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v.37
no.3
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pp.225-234
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2024
Chinese lobelia (Lobelia chinensis Lour.) is an important medicinal plant that is used in traditional Chinese, Korean, and Japanese medicine. The goal of the current study was to develop an in vitro propagation technique for Lobelia chinensis. We have examined the effects of different media compositions on the regeneration of shoots from nodal cultures of Lobelia chinensis, including Murashige and Skoog (MS), Gamborg (B5), Schenk and Hildebrandt (SH), Woody plant (WPM), Chu (N6), and Nitsch and Nitsch (NLN) media. Similar to this, shoot regeneration was examined using MS medium of double (2.0), full (1.0), half (0.5), and quarter (0.25) strengths. The regeneration of shoots was also examined with additions of 0, 1, 3, 5, and 7% (w/v) sucrose to MS media. For axillary shoot regeneration, full-strength MS medium supplemented with 3% (w/v) sucrose was shown to be the most effective of all the evaluated factors. On this medium, nodal explants optimally regenerated 4.5 shoots per explant and subsequently shoots involved in rooting on the same medium. The regenerated plants possessed abundant phenolics, flavonoids, and DPPH, ABTS, and FRAP antioxidant activities. High performance liquid chromatographic examination (HPLC) of the regenerated plants revealed an accumulation of myricetin and catechin in higher amounts.
Present studies are carried out to find media components and culture methods for in vitro propagation of Athyrium niponicum and to establish the optimal economic masspropagation systems. Among pinnae, petiole and rhizome segments only rhizome segments produced young plants. Rhizome segments showed vigorous plant regeneration on 1/2MS medium and supplement to 1% sucrose and 50 $mg{\cdot}L^{-1}$$NaH_2PO_4$ were promoted the plant regeneration from rhizome segments. Kinetin was better than BA for plant regeneration and combination with 2 ${\mu}M$ kinetin and 5 ${\mu}M$ IBA was most efficient for plant regeneration. Solid or liquid medium with or without 0.1% qactivated charcoal in modified 1/2MS medium (1% sucrose, 50 $mg{\cdot}L^{-1}$$NaH_2PO_4$, 2 ${\mu}M$ kinetin, 5 ${\mu}M$ IBA, pH 5.8) were used to find the optimal culture methods. The plant regeneration from rhizome segments were most vigorous on solid medium without activated charcoal. The addition of activated charcoal were inhibited the plant regeneration from rhizome segments not only on solid medium but also liquid stationary or suspension culture.
In order to optimize tissue culture conditions for genetic transformation of orchardgrass (Dactylis glomerata L.), the effects of culture medium supplements on tissue culture responses were investigated with mature seeds of a cultivar, 'Roughrider', as explant tissues. The optimal concentration of 2,4-D for the induction of embryogenic callus from mature seeds was 3 mg/L. Plant regeneration frequency was 36.3% when embryogenic calli were cultured on the regeneration medium supplemented with 1mg/L 2,4-D and 3mg/L BA. Addition of 1 g/L casein hydrolysate and 300 mg/L L-proline improved frequencies of embryogenic callus induction and plant regeneration up to 57.3 and 60.7%, respectively. Supplementation of the media with 10 mga $\textrm{AgNO}_3$ and 40 mg/L cysteine enhanced frequencies of callus induction and plant regeneration. Efficient regeneration system established in this study will be useful for molecular breeding of orchardgrass through genetic transformation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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