Khanaliha, Khadijeh;Motazedian, Mohammad Hossein;Kazemi, Bahram;Shahriari, Bahador;Bandehpour, Mojgan;Sharifniya, Zarin
Parasites, Hosts and Diseases
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v.52
no.2
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pp.137-142
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2014
Serologic tests are widely accepted for diagnosing Toxoplasma gondii but purification and standardization of antigen needs to be improved. Recently, surface tachyzoite and bradyzoite antigens have become more attractive for this purpose. In this study, diagnostic usefulness of 3 recombinant antigens (SAG1, SAG2, and SAG3) were evaluated, and their efficacy was compared with the available commercial ELISA. The recombinant plasmids were transformed to JM109 strain of Escherichia coli, and the recombinants were expressed and purified. Recombinant SAG1, SAG2, and SAG3 antigens were evaluated using different groups of sera in an ELISA system, and the results were compared to those of a commercial IgG and IgM ELISA kit. The sensitivity and specificity of recombinant surface antigens for detection of anti-Toxoplasma IgG in comparison with commercially available ELISA were as follows: SAG1 (93.6% and 92.9%), SAG2 (100.0% and 89.4%), and SAG3 (95.4% and 91.2%), respectively. A high degree of agreement (96.9%) was observed between recombinant SAG2 and commercial ELISA in terms of detecting IgG anti-Toxoplasma antibodies. P22 had the best performance in detecting anti-Toxoplasma IgM in comparison with the other 2 recombinant antigens. Recombinant SAG1, SAG2, and SAG3 could all be used for diagnosis of IgG-specific antibodies against T. gondii.
The identification of tumor antigens is essential for the development of anticancer therapeutic vaccines and clinical diagnosis of cancer. SEREX (serological analysis of recombinant cDNA expression libraries) has been used to identify such tumor antigens by screening sera of patients with cDNA expression libraries. SEREX-defined antigens provide markers for the diagnosis of cancers. Potential diagnostic values of these SEREX-defined antigens have been evaluated. SEREX is also a powerful method for the development of anticancer therapeutics. The development of anticancer vaccines requires that tumor antigens can elicit antigen-specific antibodies or T lymphocytes. More than 2,000 antigens have been discovered by SEFEX. Peptides derived from some of these antigens have been evaluated in clinical trials. This review provides information on the application of SEREX for identification of tumor-associated antigens (TAA) for the development of cancer diagnostics and anticancer therapeutics.
CHO Jung-Hwa;CHUNG Woo-Suk;SONG Kyoung-Ju;NA Byoung-Kuk;KANG Seung-Won;SONG Chul-Yong;KIM Tong-Soo
Parasites, Hosts and Diseases
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v.43
no.1
s.133
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pp.19-25
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2005
Protective efficacy of vaccination with Neospora caninum multiple recombinant antigens against N. caninum infection was evaluated in vitro and in vivo. Two major immunodominant surface antigens (NcSAG1 and NcSRS2) and two dense granule proteins (NcDG1 and NcDG2) of N. caninum tachyzoites were expressed in E. coli, respectively. An in vitro neutralization assay using polyclonal antisera raised against each recombinant antigen showed inhibitory effects on the invasion of N. caninum tachyzoites into host cells. Separate groups of gerbils were immunized with the purified recombinant proteins singly or in combinations and animals were then challenged with N. caninum. Following these experimental challenges, the protective efficacy of each vaccination was determined by assessing animal survival rate. All experimental groups showed protective effects of different degrees against experimental infection. The highest protection efficacy was observed for combined vaccination with NcSRS2 and NcDG1. Our results indicate that combined vaccination with the N. caninum recombinant antigens, NcSRS2 and NcDG1, induces the highest protective effect against N. caninum infection in vitro and in vivo.
The identification of tumor antigens is essential for the development of anticancer therapeutic vaccines and clinical diagnosis of cancer. SEREX (serological analysis of recombinant cDNA expression library)has been used to identify such tumor antigens by screening sera of cancer patients with cDNA ex-pression libraries. SEREX-defined antigens provide markers for the diagnosis of cancers. SEREX is also a powerful method for the development of anticancer therapeutics. The development of anticancer vaccines requires that tumor antigens can elicit antigen-specific antibodies or T lymphocytes. This re-view provides information on the application of SEREX for discovery of tumor antigens.
Kim, Min-Soo;Choi, Hye-Young;Choi, Yong-Soo;Kim, Jhin-Gook;Kim, Yong-Sung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.6
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pp.993-1001
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2007
The technique of serological analysis of antigens by recombinant cDNA expression library (SEREX) uses autologous patient sera as a screening probe to isolate tumor-associated antigens for various tumor types. Isolation of tumor-associated antigens that are specifically reactive with patient sera, but not with normal sera, is important to avoid false-positive and autoimmunogenic antigens for the cancer immunotherapy. Here, we describe a selection methodology to isolate patient sera-specific antigens from a yeast surface-expressed cDNA library constructed from 15 patient lung tissues with non-small cell lung cancer (NSCLC). Several rounds of positive selection using patient sera alone as a screening probe isolated clones exhibiting comparable reactivity with both patient and normal sera. However, the combination of negative selection with allogeneic normal sera to remove antigens reactive with normal sera and subsequent positive selection with patient sera efficiently enriched patient sera-specific antigens. Using the selection methodology described here, we isolated 3 known and 5 unknown proteins, which have not been isolated previously, but and potentially associated with NSCLC.
Hyun-Il Cho;Soon-Young Pail;Il-Hoan OH;Kyun-Jung Ahn;Dong-Wook Kim
Journal of Microbiology
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v.39
no.4
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pp.300-304
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2001
Epstein-Barr Virus(EBV)-transformed lymphoblastoid B cell lines, BLCL which expresse antigens, are potential antigen-presenting cells(APCs) for the induction of CTL in vitro. However transfection of BLCLs with subsequent selection by antibiotics is notoriously difficult because plating efficiencies of BLCLsare reported to be 1% or less. To generated stable transfectants of BLCLs we produced high titers of retroviruess encoding pp 65 antigen of human cytomegalovirus of foreign antigens and trans-duced them of BLCLs. The pp 65 gene was cloned into the retroviral vector pLXSN. The recombinant retroviral vector was transfected to ecotropic packaging cell line, CP&E86, and this polyclonal recom-binant retrovirus was transduced to PA317 that is amphotropic pakaging cell line. The titers of colned PA317 amphotropic retroviruses ranged from 5 to $\times$10$^{6}$ colony forming units (CFU)per ml (CFU/ml) We performed three rounds of consecutive transductions to BLCLs in order to improve the clon-ing effieiencies. The expression of recombinant HCMV-pp65 antigen was more than 20% after the final transduction. THe third-transduced BLCLs were easily selected in optimal concentration of G418. BLCLs expressing foreign antigens could be used as target cells for CTL assay and/or as APCs for induction of in vitro CTL responses specific for viral and tumor antigens.
Selecting an appropriate antigen with optimal immunogenicity and physicochemical properties is a pivotal factor to develop a protein based subunit vaccine. Despite rapid progress in modern molecular cloning and recombinant protein technology, there remains a huge challenge for purifying and using protein antigens rich in hydrophobic domains, such as membrane associated proteins. To overcome current limitations using hydrophobic proteins as vaccine antigens, we adopted in silico analyses which included bioinformatic prediction and sequence-based protein 3D structure modeling, to develop a novel periodontitis subunit vaccine against the outer membrane protein FomA of Fusobacterium nucleatum. To generate an optimal antigen candidate, we predicted hydrophilicity and B cell epitope parameter by querying to web-based databases, and designed a truncated FomA (tFomA) candidate with better solubility and preserved B cell epitopes. The truncated recombinant protein was engineered to expose epitopes on the surface through simulating amino acid sequence-based 3D folding in aqueous environment. The recombinant tFomA was further expressed and purified, and its immunological properties were evaluated. In the mice intranasal vaccination study, tFomA significantly induced antigen-specific IgG and sIgA responses in both systemic and oral-mucosal compartments, respectively. Our results testify that intelligent in silico designing of antigens provide amenable vaccine epitopes from hard-to-manufacture hydrophobic domain rich microbial antigens.
An ELISA was developed for the diagnosis of vivax malaria using multiple stage-specific recombinant antigens of Plasmodium vivax. The DNA from the whole blood of a malaria patient was used as template to amplify the coding regions for the antigenic domains of circumsporozoite protein (CSP-1), merozoite surface protein (MSP-1), apical merozoite antigen (AMA-1), serine repeat antigen (SERA), and exported antigen (EXP-1). Each amplified DNA fragment was inserted into pQE30 plasmid to induce the expression of His-tagged protein in Escherichia coli (M15 strain) by IPTG. His-tagged proteins were purified by Ni-NTA metal-affinity chromatography and used as antigens for ELISA with patient sera that were confirmed previously by blood smear examinations. When applied to patient sera, 122 (80.3%) out of 152 vivax malaria cases reacted to at least one antigen, while no reactions were observed with 128 uninfected serum samples. We applied this ELISA to the screening of 3,262 civilian residents in endemic regions near the DMZ, which resulted in 236 positively detected (7.2%) cases. This method can be applied to serological diagnosis and mass screening in endemic regions, or can be used as a safety test for transfusion blood in endemic areas.
Western blot analysis was performed to diagnose vivax malaria using stage-specific recombinant antigens. Genomic DNA from the whole blood of a malaria patient was used as templates to amplify the coding regions for the antigenic domains of circumsporozoite protein (CSP-1), meroxoite surface protein (MSP-1), apical merozoite antigen (AMA- 1), serine repeat antigen (SERA), and exported antigen (EXP- 1) of Plasmodium vivax. Each amplified DNA fragment was inserted into a pGEX-4T plasmid to induce the expression of GST fusion protein in Escherichia coli by IPTG. The bacterial cell extracts were separated on 10% SDS-PAGE followed by western blot analysis with patient sera which was confirmed by blood smear examination. When applied with patient sera, 147 (91.9%) out of 160 vivax malaria, 12 (92.3%) out of 13 falciparum malaria, and all 9 vivax/falciparum mixed malaria reacted with at least one antigen, while no reactions occurred with 20 normal uninfected sera. In the case of vivax malaria, CSP-1 reacted with 128 (80.0%) sera, MSP-1 with 102 (63.8%), AMA-1 with 128 (80.0%), SERA with 115 (71.9%), and EXP-1 with 89 (55.6%), respectively. We obtained higher detection rates when using S antigens (91.9%) rather than using each antigen solely (55.6 - 80%), a combination of 2 (76.3 - 87.5%), 3 (85.6 - 90.6%), or 4 antigens (89.4 - 91.3%). This method can be applied to serological diagnosis, mass screening in endemic regions, or safety test in transfusion of prevalent vivax malaria.
Snakehead rhabdovirus (SHRV) is different from other fish novirhabdoviruses such as viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV), and hirame rhabdovirus (HIRRV) in that it replicates at high temperatures. Therefore, the delivery of foreign proteins to fish living at high water temperature would be possible by using recombinant SHRVs. In the present study, to evaluate the possible use of SHRV as a vehicle for foreign proteins delivery, we generated a recombinant SHRV that contains an enhanced-GFP (eGFP) gene between nucleoprotein (N) and phosphoprotein (P) genes (rSHRV-A-eGFP), and another recombinant SHRV expressing two heterologous genes by inserting an eGFP gene between N and P genes, and mCherry gene between P and M genes (rSHRV-AeGFP-BmCherry). Epithelioma papulosum cyprini (EPC) cells infected with the recombinant SHRVs showed strong fluorescence(s), suggesting the possible availability of recombinant SHRVs for the development of combined vaccines by expressing multiple foreign antigens.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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