Park, Kap-Ju;Lee, Keun-Kwang;Kang, Bong-Ju;Cha, Sung-Chul;Lee, Hyung-Hoan
대한바이러스학회지
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제28권2호
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pp.129-138
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1998
Bovine growth hormone (bGH) gene was expressed in an insect Spodoptera frugiperda cell line using a Baculovirus, Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV). The bGH gene in pbGH plasmid was sequenced and amplified by PCR technique with two primers containing NcoI sites. The bGH gene consisted of 654 bp (217 amino acid residues), the 5'-untranslated region of the cloned bGH cDNA contains 56 bp, and the 3'-untranslated region contains 145 bp and two pallindromic regions. The amplified bGH gene DNA fragment (654 bp) was inserted into the NcoI site of the pHcEVII vector, which was named pHcbGH. The pHcbGH transfer vector DNA and the wild type HcNPV DNA were cotransfected into S. frugiperda cells to construct a recombinant virus. Eight recombinant viruses were selected and named HcbGH. One clone, HcbGH-4-1 showed largest plaque size, therefore the recombinant virus was further studied. The multiplication pattern of the recombinant HcbGH-4-1 was similar to that of the wild type HcNPV. The bGH gene DNA in the HcbGH-4-1 recombinant was confirmed by Southern blot hybridization. The amount of the bGH (217 amino acid residues, 21 kDa) produced in S. frugiperda cells infected with the HcbGH-4-1 recombinant was approximately 5.5 ng per ml ($10^6$ cells) by radioimmunoassay.
Kim, Ki-Yong;Jang, Yo-Soon;Cha, Joon-Yung;Son, Daeyoung;Choi, Gi Jun;Seo, Sung;Lee, Sang Jin
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제21권5호
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pp.657-662
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2008
To develop transgenic orchardgrass (Dactylis glomerata L.) resistant to high temperature, the recombinant DgHSP17.2 gene was introduced into orchardgrass plants using the Agrobacterium-mediated transformation method and expressed constitutively under the control of the CaMV 35S promoter. The results of genomic DNA PCR and Southern analysis showed a DNA band and hybridization signal on agarose gel and X-ray film in transgenic orchardgrass plants harboring the recombinant DgHSP17.2 gene, but a DNA band and hybridization signal were not observed in the wild type and empty vector control plants. The same result was also obtained in RT-PCR and Southern blot analysis, and these transgenic orchardgrass plants did not show any morphological aberration both in the culture bottle and soil mixture. When leaf discs cut from transgenic orchardgrass plants with recombinant DgHsp17.2 gene were exposed to lethal temperature (heat treatment at $60^{\circ}C$ for 50 min), 60-80% of the leaf discs showed only damage symptoms, but non-transgenic leaf discs showed a lethal condition. These results indicate that the DgHsp17.2 gene may act as a protector from heat stress in plants.
장염비브리오균의 숙주 내 감염을 일으키는 기작을 이해하기 위하여 세포외 효소 중의 하나인 콜라겐분해효소의 유전자가 불활성화된 돌연변이체를 제작하였다. 콜라겐분해효소의 유전자인 vppC 유전자에 항생제 내성 유전자인 nptII를 삽입하여 제작된 재조합 DNA를 suicide vector인 pDMS197에 클로닝하여 pVCM03이라 명명하였다. 재조합 suicide 플라스미드 pVCM03을 E. coli 7213에 형질전환하여 접합을 통하여 원 균주인 V. varahaemolyticus 04에 전달하였다. 전달된 pVCM03 유래의 재조합 vvpC::npfII DNA는 homologous recombination에 의해 wild-type allele와 교환되어 돌연변이체를 형성하게 되고, 돌연변이체는 10% sucrose가 함유된 TCBS 배지에서 선별되었다. Allele exchange는 PCR에 의한 증폭된 DNA의 크기 비교로 확인하였다. 돌연변이체인 V. parahaemolyticus CM은 원 균주와 비교하였을 때 약 4배정도 낮은 콜라겐 분해 활성을 나타내었고, vero cell을 이용한 MTT assay에서도 원 균주에 비하여 낮은 세포독성을 보였다.
The secretion vector with promoter and signal sequence region of neutral protease gene (npr) from Bacillus amyloliquefaciens was constructed by the technique of polymerase chain reaction (PCR). A unique restriction iste was introduced into the 3' of the signal coding region by the synthesis of PCR primer. To demonstrate the function of cloned promoter and signal sequence, we used the E. coli .betha.-lactamase structural gene as a foreign gene. The signal sequence of .betha.-lactamase gene was deleted by Bal31 exonuclease and only mature region was introduced into the secretion vector. Bacillus subtilis cells transformed by the recombinant vector synthesized the fusion protein and were also capable of removing the signal peptide from the original fusion protein, as judged by the assay of .betha.-lactamase activity and secretion into the growth medium by western blotting.
Metallothionein은 세포내의 중금속의 농도을 조절하는 주요한 단백질로서 bacteria에서 척추동물에 이르기까지 모든 생명체에서 나타나는 공통된 단백질이다. 비록 metallothionein의 정확한 기능은 알려져 있지 않으나 독성을 나타내는 중금속에 대하여 세포내 방어기작에 관여할 뿐만 아니라 여러다른 유전자의 총괄적 조절기작 및 matalloprotein의 발현에 관여할 것으로 보고있다. 본 연구에서는 Channel Catfish의 metallothionein cDNA 유전자를 poly(A)를 갖는 mRNA로 부터 Reverse Transcriptase-Polymerase Chain Reaction(RT-PCR)에 의하여 cloning하였다. 증폭된 PCR products는 pBluescript SK+의 EcoRV site 및 pUC19의 Smal site에 dT tailing을 하여 cloning하였으며, PCR products는 multicloning site에 있는 EcoRI 및 HindIII 로 절단하여 확인하거나 신속한 PCR screening에 의하여 확인하였다. 여러 PCR clone 중 하나인 pMT150에 대한 DNA 염기서열을 조사한 결과 다른 어류의 metallothionein cDNA 유전자와 높은 유사성을 보였다.
Nocardioides sp. J-326TK의 adenosine deaminase gene을 분리하기 위하여 genomic DNA를 제한효소로 무작위적으로 절단하여 pBluscript KS에 ligation시켰다. 또한 hu-man과 mouse, E. cali 등의 adenosine deaminase gene의 보존적인 부위를 primer로 합성을 하여 PCR reaction을 행하였다. Genomic DNA를 cloning시킨 pKSN60은 5kb정도의 DNA를 포함하고 있으며 sourthern hybridization 등의 여러 확인 실험을 통하여 adenosine deaminase gene을 포함하고 있다는 알았다. PCR product를 cloning시켜 형성된 recombinant plasmid를 PCR reaction의 primer로서 pTBN20를 sequencing을 행하였다. 그 결과를 다른 ade-nosine deaminase gene의 서열과 비교를 하였는데 미생물인 E. coli와는 nucleotide sequence는 99.5%, amino acid sequence는 98.9%의 homology를 나타내고 human과는 각각 59.5%, 46.8%의 homolosy를 나타내었다.
In order to transform pokeweed antiviral protein cDNA to tobacco plant, total RNA was extracted from Phytolacca americana. PAP-II cDNA was synthesized from purified total RNA via RT-PCR and subcloned to recombinant vector pBluescript II SK-. 10 deletion mutant PAP-II cDNA fragments which were sequentially deleted from N-terminal by 90bp were synthesized from PAP-II cDNA except leading frame by PCR with primers designed in our laboratory. To select non-cytotoxic clone, pAc55M was constructed with yeast expression vector pAc55 and multicloning site(MCS). Sequentially deleted mutant PAP-II cDNAs were cloned on downstream of gall promoter of pAc55M. 6 non-cytotoxic deletion mutant PAP-II cDNA were selected. Selected cDNAs were cloned into plant expression vector pKGT101BH for transformation of these clones to plant through Agrobacterium tumefacience. After cloning, recombinant pKGT101BH carrying deleted mutant PAP-IIcDNA were transformed to Nicotiana tabacum cv. NC567. Transformed tobacco plants cultured on shooting and rooting media were transfered to green-house. About four weeks later, these plants were infected with physically infection using carborandum with PVY-VN strain. After 4 weeks, plants resistant to virus were selected , and seeds of these plants were gathered. Southern blot hybridization showed deleted fragments by 220bp and 420bp, so resistant ability of these plants is due to mutant PAP-II cDNA.
The purpose of this study was to conduct diagnosis of bovine paratuberculosis in Kangwon area. Blood samples were collected from 2,261 dairy cows of 162 herds, and the ELISA and immunoblotting using recombinant 34KDa protein of M. paratuberculosis were conducted. The feces collected from dairy cows were cultured on HEY medium with mycobactin-J and PCR was conducted with washing solution of medium 4 weeks after culture. The ELISA had sensitivity of 83.3% and specificity of 96.7%. And the immunoblotting had sensitivity of 83.3% and specificity of 100%. Of the 2,261 dairy cows, 371 cows(16.4%) were positive in ELISA and 75 cows(3.3%) were positive in immunoblotting. And of the 162 herds, 109 herds(67.3%) had an apparent paratuberculosis prevalence by ELISA and 40 herds(24.7%) by immunoblotting. The geographic distribution of herds with paratuberculosis was not uniform. Of the 241 feces samples including 110 feces from ELISA positive cow, 9 feces were positive in culture and PCR. PCR was able to detect the growth of M. paratuberculosis as early as 4 weeks of culture.
Yasser, Norhan;Salem, Reda;Alkhazindar, Maha;Abdelhamid, Ismail A.;Ghozlan, Said A.S.;Elmenofy, Wael
한국미생물·생명공학회지
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제49권3호
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pp.305-315
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2021
The cotton leafworm, Spodoptera littoralis, is a major pest in Egypt and many countries worldwide, and causes heavy economic losses. As a result, management measures to control the spread of the worm are required. S. littoralis nucleopolyhedrovirus (SpliNPV) is one of the most promising bioagents for the efficient control of insect pests. In this study, a chitinase gene (chitA) of a 1.8 kb DNA fragment was cloned and fully characterized from SpliNPV-EG1, an Egyptian isolate. A sequence of 601 amino acids was deduced when the gene was completely sequenced with a predicted molecular mass of 67 kDa for the preprotein. Transcriptional analyses using reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) revealed that chitA transcripts were detected first at 12 h post infection (hpi) and remained detectable until 168 hpi, suggesting their transcriptional regulation from a putative late promoter motif. In addition, quantitative analysis using quantitative RT-PCR showed a steady increase of 7.86-fold at 12 hpi in chitA transcription levels, which increased up to 71.4-fold at 120 hpi. An approximately 50 kDa protein fragment with chitinolytic activity was purified from ChitA-induced bacterial culture and detected by western blotting with an anti-recombinant SpliNPV chitinase antibody. Moreover, purification of the expressed ChitA recombinant protein showed in vitro growth inhibition of two different fungi species, Fusarium solani and F. oxysporum, confirming that the enzyme assembly and activity was correct. The results supported the potential role and application of the SpliNPV-ChitA protein as a synergistic agent in agricultural fungal and pest control programs.
Jung-Hyun Park;Yun-Jung Lee;Shin-Young Na;Kil Lyong Kim
대한의생명과학회지
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제6권1호
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pp.73-82
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2000
양끝이 같은 형태로 이루어진 DNA조각들은 벡터에 두 가지 방향으로 삽입될 수 있다. 기존의 방법으로는 이들의 방향성을 알아내기 위하여 제한효소의 처리 혹은 DNA염기서열 분석법이 수행되어졌는데, 이들은 적절한 제한효소 인식 부위의 부재 혹은 높은 가격과 많은 샘플수 등으로 그 이용범위가 어느 정도 제한되어 있었다. 본 연구에서는, 벡터에 클로닝 된 DNA조각의 방향성을 결정하기 위한 새로운 실험기법과 이에 따르는 구체적인 방법을 기술하고 이의 직접적인 이용을 보고하고 있다. 통상적인 염기서열 분석용 oligonucleotide primer와 중합효소 연쇄반응용 (PCR) primer를 이용한 PCR에 기초한 이 방법은, 여러 후보 클론의 플라스미드 DNA를 주형으로 하여 한 차례의 반응으로, 원하는 방향으로의 DNA조각이 삽입된 클론을 찾아낼 수 있게 한다. 이 실험기법의 용이함과 정확성은 최근에 보고된 바 있는 랫트의 신경 펩타이드인 urocortin의 cDNA를 재조합 발현 벡터상에 클로닝하고 분석하는 것으로 증명할 수 있었다. 이 같은 방법으로 찾아진 유전자 재조합 클론들은 추가적인 실험을 통하여 CHO 세포주에 transfection 되었는데, 이들이 실제로 urocortin을 발현함은 면역효소 측정법으로 검증될 수 있었고, 이를 통하여 최초로 이 40개의 아미노산으로 이루어진 짧은 펩타이드를 진핵 세포상에서 재조합 단백질의 형태로 발현시키는 데 성공하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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