The thermostable endo-chitosanase gene from the isolated strain Bacillus sp. KFB-C108 was identified on the basis of a phylogenetic analysis of the 16S rRNA gene sequence, and was cloned into plasmid pUCl8 using E. coli $DH5\alpha$ as the host strain. Positive clones carrying recombinant plasmids (pKCHO I and pKCHO II) containing chitosanase activity were selected using the direct activity staining method. Detailed physical maps showed the two plasmid inserts were identical except that the KCHO II insert (2.6 kb) was 1.8 kb smaller than that of the KCHO I. The recombinant plasmids were analyzed to determine the essential region for chitosanase activity, and a 1.3-kb fragment (KCHO-6) was subcloned into pTrc99A using the EcoRI and BamHI sites to construct pTrc99A/KCHO-6(pTrEB13). The resulting plasmid exerted high chitosanase activity upon transformation of E. coli $DH5{\alpha}cells$, overproducing about 20 times more in the cloned cells than in the wild-type cells. The cloned chitosanase protein exhibited the same molecular weight and catalytic activity similar to those of Bacillus sp. KFB-C108. The cloned enzyme was an endo-type that produced a chitosan tetramer as the major reaction product; however, it produced no monomers or dimers.
Background: Fluorescent antibody virus neutralization (FAVN) test is a standard assay for quantifying rabies virus-neutralizing antibody (VNA) in serum. However, a safer rabies virus (RABV) should be used in the FAVN assay. There is a need for a new method that is economical and time-saving by eliminating the immunostaining step. Objectives: We aimed to improve the traditional FAVN method by rescuing and characterizing a new recombinant RABV expressing green fluorescent protein (GFP). Methods: A new recombinant RABV expressing GFP designated as ERAGS-GFP was rescued using a reverse genetic system. Immuno-fluorescence assay, peroxidase-linked assay, electron microscopy and reverse transcription polymerase chain reaction were performed to confirm the recombinant ERAGS-GFP virus as a RABV expressing the GFP gene. The safety of ERAGS-GFP was evaluated in 4-week-old mice. The rabies VNA titers were measured and compared with conventional FAVN and FAVN-GFP tests using VERO cells. Results: The virus propagated in VERO cells was confirmed as RABV expressing GFP. The ERAGS-GFP showed the highest titer (108.0 TCID50/mL) in VERO cells at 5 days post-inoculation, and GFP expression persisted until passage 30. The body weight of 4-week-old mice inoculated intracranially with ERAGS-GFP continued to increase and the survival rate was 100%. In 62 dog sera, the FAVN-GFP result was significantly correlated with that of conventional FAVN (r = 0.95). Conclusions: We constructed ERAGS-GFP, which could replace the challenge virus standard-11 strain used in FAVN test.
Glycoprotein hormones have a common $\alpha$-subunit that is involved in the signaling pathway together with G protein, adenylcyclase and cAMP induction; however, it is an unclear how this common structure is related to hormonal action. To determine the biological functions of the COOH-terminal amino acids in the $\alpha$-subunit of these glycoprotein hormones, a tethered-molecule was constructed by fusing the $NH_2$-terminus of the $\alpha$-subunit to the COOH-terminus of the $\beta$-subunit of equine chorionic gonadotropin (eCG). The following deletion mutants were created by PCR; Ile was inserted at position 96 to form ${\Delta}96$, Lys was substituted at position 95 to form ${\Delta}95$, His was inserted at position 93 to form ${\Delta}93$ and Tyr was substituted at position 87 to form ${\Delta}87$. Each mutant was transfected into CHO-K1 cells. Tethered-wt eCG, and ${\Delta}96$, ${\Delta}95$, and ${\Delta}93$ mutants were efficiently secreted into the medium but the ${\Delta}87$ mutant was not secreted. Interestingly, the RT-PCR, real-time PCR, and northern blot analyses confirmed that the RNA was transcribed in the ${\Delta}87$ mutant. However, the ${\Delta}87$ mutant protein was not detected in the medium or the intracellular fraction of the cell lysates. The LH- and FSH-like activities of the recombinant proteins were assayed in terms of cAMP production using rat LH/CG and rat FSH receptors. The metabolic clearance rate (MCR) was determined by injecting rec-eCG (2 IU) into the tail vein. The ${\Delta}95$ and ${\Delta}93$ mutants were completely inactive in both the LH- and FSH-like activity assays. The ${\Delta}96$ mutant showed slight activity in the LH-like activity assay. In comparison to the wild type, the activity of the ${\Delta}96$ mutant in the FSH-like activity assay was the highest among all the mutants. The MCR assay in which rec-eCG was injected showed a peak at 10 min in all the treatment groups, which disappeared 4 h after injection. These results imply a direct interaction between the receptor and the COOH-terminal region of the a-subunit. The data also reveal a significant difference in the mechanism by which the eCG hormone interacts with the rLH and rFSH receptors. The COOH-terminal region of the $\alpha$-subunit is very important for the secretion and functioning of this hormone.
Lee, Da Young;Cho, Jae Ho;Lim, Woon Ki;Shin, Hae Ja
Journal of Life Science
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v.24
no.1
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pp.54-60
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2014
Aromatic hydrocarbons are toxic environmental pollutants that are detrimental to the ecosystem and human health. Among them, chlorotoluene and nitrotoluene are toxic to hydrobios and irritate the skin, eyes, and respiratory organs of humans. We herein report the development of recombinant microbial biosensors for cheap and rapid monitoring of chlorotoluene and nitrotoluene compounds. Plasmids were constructed by inserting the xylR regulatory gene for BTEX (benzene, toluene, ethylbenzene, and xylene) degradation into upstream of Po' (the DmpR activator promoter Po with the deletion of its own upstream activating sequences) or Pu (the cognate promoter of XylR)::lacZ (the ${\beta}$-galactosidase gene) and transformed into Escherichia coli $DH5{\alpha}$. In the presence of inducers, the biosensor cells immobilized in agarose developed a red color in 1-2 h due to the hydrolysis of chlorophenol red ${\beta}$-D-galactopyranoside (CPRG), a substrate of ${\beta}$-galactosidase that was expressed by the inducers. Among BTEX, high responses were specifically observed with o-, m-, p-chlorotoluene ($0.1{\mu}M-100 mM$) and o-, m-, p-nitrotoluene (0.1 mM-100 mM). Po' demonstrated higher responses than those with Pu. The biosensors immobilized in agarose showed good stability after 21 days' storage at $4^{\circ}C$, and responses in untreated wastewater spiked with chlorotoluene and nitrotoluene, suggesting they can be used to detect compounds in wastewater.
T4 endonuclease V (T4 endo V) [EC 3. 1. 25. 1], found in bacteriophage T4, is responsible for excision repair of damaged DNA. The enzyme possesses two activities: a cyclobutane pyrimidine dimer DNA glycosylase (CPD glycosylase) and an apyrimidic/apurinic endonuclease (AP lyase). T4 denV (414 bp cDNA) encoding T4 en do V (138 amino acid) was synthesized and expressed using either an expression vector, pTriEx-4, in E. coli or a baculovirus AcNPV vector, pBacPAK8, in insect cells. The recombinant His-Tag/T4 endo V (rHis-Tag/T4 endo V) protein expressed from bacteria was purified using one-step affinity chromatography with a HiTrap Chelating HP column and used to make rabbit anti-His-Tag/T4 endo V polyclonal antibody for detection of recombinant T4 endo V (rT4 endo V) expressed in insect cells. In the meantime, the recombinant baculovirus was obtained by cotransfection of BacPAK6 viral DNA and pBP/T4 endo V in Spodoptera frugiperda (Sf21) insect cells, and used to infect Sf21 cells to overexpress T4 endo V protein. The level of rT4 endo V protein expressed in Sf21 cells was optimized by varying the virus titers and time course of infection. The optimal expression condition was set as follows; infection of the cells at a MOI of 10 and harvest at 96 h post-infection. Under these conditions, we estimated the amount of rT4 endo V produced in the baculovirus expression vector system to be 125 mg/l. The rT4 endo V was purified to homogeneity by a rapid procedure, consisting of ion-exchange, affinity, and reversed phase chromatographies, based on FPLC. The rT4 endo V positively reacted to an antiserum made against rHis-Tag/T4 endo V and showed a residual nicking activity against CPD-containing DNA caused by UV. This is the first report to have T4 endo V expressed in an insect system to exclude the toxic effect of a bacterial expression system, retaining enzymatic activity.
Leptin is a circulating non-glycosylated protein that is mainly produced in adipocytes. Leptin acts in the brain to regulate food intake and energy expenditure. Previously we reported our success in the isolation of a partial cDNA of the long form of the leptin receptor, OB-Rb, from rat spleen, and showed that leptin might also play a role in peripheral immune organs. In the present study, for the first time, the complete coding region of OB-Rb cDNA was cloned from rat splenocytes, and its nucleotide sequence was determined. The cDNA was then further expressed in E. coli and mammalian cells, thereby confirming the functional integrity of this receptor. Prokaryotically overexpressed OB-R protein was then used as an immunizing antigen in BALE/c mice to produce leptin receptor-specific antibodies. By using them, we confirmed the cell surface expression of OB-Rb in transfected CHO cells. It is our belief that the reagents, as produced in this study, will be of great use in further studies of the biological role of rat leptin.
Park, Ae-Kyung;Shin, Youn-Jae;Moon, Jin-Ho;Kim, Young-Kwan;Hwang, Kwang-Yeon;Chi, Young-Min
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.1
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pp.59-62
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2008
The peptide methionine sulfoxide reductases (Msrs) are enzymes that catalyze the reduction of methionine sulfoxide back to methionine. Because of two enantiomers of methionine sulfoxide (S and R forms), this reduction reaction is carried out by two structurally unrelated classes of enzymes, MsrA (E.C. 1.8.4.11) and MsrB (E.C. 1.8.4.12). Whereas MsrA has been well characterized structurally and functionally, little information on MsrB is available. The recombinant MsrB from Bacillus subtilis has been purified and crystallized by the hanging-drop vapor-diffusion method, and the functional and structural features of MsrB have been elucidated. The crystals belong to the trigonal space group P3, with unit-cell parameters a=b=136.096, $c=61.918{\AA}$, and diffracted to $2.5{\AA}$ resolution using a synchrotron-radiation source at Pohang Light Source. The asymmetric unit contains six subunits of MsrB with a crystal volume per protein mass $(V_M)\;of\;3.37{\AA}^3\;Da^{-1}$ and a solvent content of 63.5%.
In Escherichia coli, DcuS/R two-component system controls fumarate import and utilization related gene expression. To understand the dynamic response of the bacterium DcuS/R two-component system with respect to fumarate concentrations, DcuS/R induced dctA promoter was integrated with GFP reporter protein. Expression monitoring study using recombinant strain showed that dctA promoter was upregulated with 1 mM of fumarate in M9 minimal medium.
Jeong Min Yoo;Ji Hoon Song;Robie Vasquez;In-Chan Hwang;Jae Seung Lee;Dae-Kyung Kang
Food Science of Animal Resources
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v.43
no.4
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pp.625-638
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2023
Among various biological agents, bacteriocins are important candidates to control Listeria monocytogenes which is a foodborne pathogen. In this study, a novel bacteriocin, named agilicin C7, was isolated from Ligilactobacillus agilis C7 showing inhibitory activity against L. monocytogenes. Agilicin C7 biosynthesis gene was characterized by bioinformatics analyses and heterologously expressed in Escherichia coli for further study. The anti-listeria activity of recombinant agilicin C7 (r-agilicin C7) was lost by proteases and α-amylase, suggesting that agilicin C7 is a glycoprotein. r-Agilicin C7 has wide pH and thermal stability and is also stable in various organic solvents. It destroyed L. monocytogenes by damaging the integrity of the cell envelope. These properties of r-agilicin C7 indicate that agilicin C7 is a novel amylase-sensitive anti-listerial Class IId bacteriocin. Physicochemical stability and inhibitory activity against L. monocytogenes of r-agilicin C7 suggest that it can be applied to control L. monocytogenes in the food industry, including dairy and meat products.
Trichomoniasis is a sexually transmitted disease induced by Trichomonas vaginalis, a parasitic protozoan. The symptoms of trichomoniasis are rarely appeared that the infections are distributed worldwide from underdeveloped to developed countries. The diagnosis of trichomoniasis is mainly taken by wet smear following microscopic examination, of which the diagnostic accuracies are poor and varies with the clinicians' experiences. Therefore, more exact and convenient diagnostic methods for T. vaginalis are required. Here, we cloned and expressed recombinant T. vaginalis adhesion protein 33 (rTvAP33) using an E. coli expression system. rTvAP33 was then immunized to rabbit and BALB/c mice for the production of anti-rTvAP33 antibodies. Sandwich ELISA using these antibodies detected T. vaginalis cultured in TYM broth supplemented with ferrous ions. Vagina-parasitizing microorganisms showed low cross-reactivities in this system. These results suggest that Tv AP33 is a good diagnostic target for the detection of TvAP33-expressing T. vaginalis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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