1. Objectives This study was performed to find the activities and characteristics of purified thrombolytic enzymes from Holotrichia extracts. 2. Methods In the first time, a coarse enzyme fluid was made by using the freedried Holotrichia extracts. After manufacturing total soluble proteins and purifing enzymes, it was evauluated the activities and characteristics of this enzyme's dissolving capability to fibrin and thrombus. This study was taken using azocasein assay, fibrin-plate method, native-PAGE and fibrin zymography. 3. Results A soluble proteins were efficiently extracted form freezedried Holotrichia extracts. And, this purified enzyme had a ten times fibrinolytic capability compare with ustulation Holotrichia sample. In native PAGE and fibrin zymography, Holotrichia extracts showed the respectable fibrinolytic activity. Also, It had higher thrombolytic activities compared with general thrombolytic enzyme 'plasmin'. In experiment of various protease inhibitors of the purified enzyme from Holotrichia extracts on the azocaseinolytic activity, the enzyme was strongly inhibited by EDTA ${\cdot}$ EGTA, and weakly by APMSF ${\cdot}$ PMSF ${\cdot}$ TPCK. 4. Conclusion Holotrichia extracts has the thrombolytic activities, and it will operate directly th fibrin-clot and thrombus.
Moon-Jo Lee;June-Ki Kim;Kyung-Soo Nam;Jin-Woo Park;Cher-Won Hwang;Dong-Soo Kim;Cheorl-Ho Kim
Journal of Life Science
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제9권1호
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pp.26-34
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1999
A thermostable pullulanase has been isolated and purified from Thermus caldophilus GK-24 to a homogeneity by gel-filtration and ion-exchange chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 431-fold increase from the crude culture broth with a recovery of 11.4%. The purified enzyme showed $M_{r}$ of 65 kDa on denaturated and natural conditions. The pI of the enzyme was 6.1 and Schiff staining was negative, suggesting that the enzyme is not a glycoprotein. The enzyme was most active at pH 5.5. The activity was maximal at $75^{\cire}C$ and stable up to $95^{\cire}C$ for 30 min at pH 5.5. The enzyme was stable to incubation from pH 3.5 to pH 8.0 at $4^{\cire}C$ for 24hr. The presence of pullulan protected the enzyme from heat inactivation, the extent depending upon the substrate concentration. The activity of the enzyme was simulated by $Mn^{2+}$ ion, }$Ni^{2+}$, $Ca^{2+}$, $Co^{2+}$ ions. The enzyme hydrolyzed the ${\alpha}$-1,6-linkages of amylopectin, glycogens, ${\alpha}$, ${\beta}$-limited dextrin, and pullulan. The enzyme caused the complete hydrolysis of pullulan to maltotriose and the activity was inhibited by $\alpha$, $\beta$, or $\gamma$-cyclodextrins. The $NH_{2}$-terminal amino acid sequence [(Ala-Pro-Gln-(Asp of Tyr)-Asn-Leu-Leu-Xaa-ILe-Gly-Ala(Ser)] was compared with known sequences of various sources and that was compared with known sequences of various sources and that was different from those of bacterial and plant enzymes, suggesting that the enzymes are structurally different.
황산암모늄분획 침전, 이온교환컬럼 크로마토그래프를 이용하여 감자로부터 2개의 Lipoxygenase isozyme(F-I 및 F-II)을 분리정제하고 각각의 isozyme에 대하여 열불활성화 실험을 행하였다. 분리된 isozyme은 polyacrylamide gel 전기 영동상에서 단일밴드를 보였으며 두 isozyme의 최적 pH는 $5.5{\sim}6.0$으로 비슷하였다. 열불활성화 온동 범위인 $50{\sim}60^{\circ}C$에서 F-I 및 F-II의 $D_{65}$값은 각각 13.3min 및 4.3min이었으며 Z 값은 $11.8^{\circ}C$ 및 $10.3^{\circ}C$ 이었다. 또한 각 isozyme의 열역학적인 상수를 절대반응속도식에 따라 구하였다.
Kluyveromyces marxianus로 부터 inulase를 생산하고 정제하며 intra 및 extracellular inulase의 성질을 조사하였다. 본 균주는 stationary phase인 24시간째 intra 및 extracelullar enzyme의 생산이 최고에 달했으며 유기 질소원으로 YNB를 사용하고 배양 중 pH를 조절해 줌으로써 효소 생산을 향상시킬 수 있었다. 조효소는 DEAE-cellulose에 의해 intra 및 extracellular inulase 모두 2개의 fraction으로 분리되었고 각 fraction의 전기영동 양상은 비슷하여 주 band를 비롯 모두 3개의 glycoprotein band가 관찰되었으며 이중 주 band만 inulase 및 invertase activity를 보유하고 있었다. 정제 효소의 inulase 및 invertase의 최적 pH는 각각 5.0과 4.5였고 intra가 extracellular enzyme 에 비해 다소 넓은 범위의 pH에서 높은 활성을 나타내었다. 모든 fraction의 최적 온도는 inulase가 $40^{\circ}C$, invertase가 $50^{\circ}C$였으며 intracellular enzyme이 더 넓은 범위의 온도에서 안정하였고 열에 대한 안정성도 intracellular inulase가 extracellular inulase보다 높게 나타났다. Km value는 intra가 $16{\sim}19mM$, extracellular inulase가 $9{\sim}11mM$로써 extracellular inulase가 inulin에 대한 친화력이 더 높았으나 모두 exo-type의 inulase로 판명되었다.
본 연구에서는 Aspergillus niger KG79에서 두종류의 D-xylanase를 분리.정제하여 그 특성을 규명하였다. 이 두 종류의 D-xylanase의 물리화학적 및 동력학적 특성은 큰 차이가 없었다. 이들 Xylanase는 D-Xylan으로부터 Xylose, Xylobiose와 Xylotriose를 분해 생성하였다. 그러나 보리짚 Xylan을 기질로 사용했을 경우에는 Xylanase I 은 II보다 측쇄 arabinose를 상당히 빨리 분해하였다. 이들 효소에 의한 Xylan의 분해도는 기질의 종류에 따라 차이가 나서 보리짚 Xylan과 larchwood Xylan의 분해도는 각각 10%와 25%(환원당량) 정도로 나타났다. 순수정제된 Xylanase와 $\beta$-Xylosidase를 사용하여 재조합한 Xylanase계의 기질분해력을 비교한 결과 최적조건에서 보리짚과 larchwood Xylan은 각각 28%와 54%씩 분해 전환되었다. 이러한 결과는 Xylan의 효소분해도의 제한요소는 기질의 물리적 특성의 차이에 기인함을 추정할 수 있었다.
Some characteristics of two forms of glucoamylase (glucan 1 A-$\alpha$-glucosidase, EC 3. 2. I. 3) purified from Aspergillus coreanus NR 15-1 were investigated. The enzymes were produced on a solid, uncooked wheat bran medium of A. coreanus NR 15-1 isolated from traditional Korean Nuruk. Two forms of glucoamylase, GA-I and GA-II, were purified to homogenity after 5.8-fold and 9.6-fold purification, respectively, judged by disc- and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular mass of GA-I and GA-II were estimated to be 62 kDa and 90 kDa by Sephadex G-1OO gel filtration, and 64 kDa and 91 kDa by SDS-polyacrylarnide gel electrophoresis, respectively. The optimum temperatures of GA-I and GA-II were 60$^circ$C and 65$^circ$C, respectively, and the optimum pH was 4.0. The activation energy (Ea value) of GA-I and GA-II was 11.66 kcal/mol and 12.09 kcal/mol, respectively, and the apparent Michaelis constants (K_{m}) of GA-I and GA-II for soluble starch were found to be 3.57 mg/ml and 6.25 mg/ml, respectively. Both enzymes were activated by 1 mM Mn^{2+} and Cu^{2+}, but were completely inhibited by 1 mM Nbromosuccinimide. The GA-II was weakly inhibited by 1 mM p-CMB, dithiothreitol, EDTA, and pyridoxal 5-phosphate, but GA-I was not inhibited by those compounds. Both enzymes had significant ability to digest raw wheat starch and raw rice starch, and hydrolysis rates of raw wheat starch by GA-I and GA-II were 7.8- and 7.3-fold higher than with soluble starch, respectively.
대장균의 RNase P의 RNA 성분인 M1 RNA는 대장균 rnpB 유전자의 주요한 일차전사물인 선구-M1 RNA로부터 3'가공으로 생성된다. 이 가공 활성을 가지고 있는 효소 분획을 부분 정제하고 그 특성을 조사하였다. 이 활성 분획을 높은 염농도에 노출시키면 가공 활성이 불활성화하는 것으로 보아, 가공효소는 여러 효소로 이루어진 효소 복합체인 것으로 추정된다. 이 효소 분획은 화학적 핵산 가수분해효소인 납(II) 이온으로 처리하면 효소 활성을 잃지만, 효소 분획 자체에서 추출한 RNA를 가하면 효소 활성을 되찾는다. 이 결과는 효소 활성에는 RNA 분자가 필요하다는 것을 시사한다. 부분 정제한 효소로 형성되는 절단자리들의 분석 결과도, 3'가공과정이 여러 효소에 의하여 일어나고, 적어도 두 가지 다른 경로로 일어난다는 것을 암시한다.
Choi Yong Un;Kang Ji Hee;Lee Myung Suk;Lee Won Jae
Fisheries and Aquatic Sciences
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제6권1호
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pp.7-12
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2003
Chitinase and chitobiase produced by Aeromonas sp. J-5003 were purified and characterized. The chitinase was purified to 19.4 folds by gel chromatography and ion-exchange chromatography with the overall yield of $2.2\%$ and the specific activity of 93.1 unit/mg. The purified enzyme showed a single band on SDS-PAGE with MW 54kDa. The optimum pH and temperature of the purified chitinase were 7.0 and $37^{\circ}C$, respectively, and this enzyme stable in the range of pH 6.0 to 10.0 below $37^{\circ}C$. $Mg^{2+},\;Ca^{2+}\;and\;Na^+$ slightly stimulated the chitinase activity. However, $Hg^{2+}\;and\;Fe^{3+}$ inhibited chitinase activity. The chitobiase was purified by Sephacryl HR-l00 gel chromatography and DEAE-Sephadex A-50 ion-exchange chromatography with 33.5 purification folds and $4.3\%$ yield. The purified enzyme showed a single band with MW 63 kDa. The optimum pH and temperature of the purified chitobiase were 7.0 and $37^{\circ}C$, respectively. And this enzyme was stable in the range of pH 6.0 to 9.0 and at the temperature below $37^{\circ}C$. The enzyme activity was increased by $Mn^{2+}$, but it was inhibited by $Ag^+$.
Chitinase, a potential pathogensis- related portein, was induced in the leaves of 30 day - old bean( phaseolus vulgaris ) plant with the treatment of 10 $\mu $ /mℓ ethylen for 30hrs. Chitinase was purified from the mature tissue of bean leaves( phaseolus vulgaris ) by ammonium sulfate precipitation followed by affinity chromatography on a regenerated chitin and sephadex G-75 chromatography. The purified chitinase gave a single band SDS- PAGE to be 32,000 Dalton. In order to elucidate the three- dimensional structure of chitinase and to shed light on the functional mechanism of this class of enzymes, the enzyme was tried to crystallize( Sitting Drop Method). Crystals grew at room temperature to their final size within two weeks(0.2mm $\times $0.2mm $\times $ 0.1 mm ), This enzyme are still continuing to crystallize for the study of X- ray.
Our works performed for preparation of oligosaccharides from carrageenan, seaweed polysaccharide, and one active strain for carrageenan was isolated from sea water and identified to Pseudomonas alcaligenes. Carrageenan degrading enzyme was purified from the culture fluid of isolated strain-Pseudomonas alcaligenes JCL-43, by DEAE-Cellulose, Sephadex G-100, Q-Sepharose and CM Sepharose CL-6B column chromatography. Two enzyme-F-I, F-II- was identified this purifying process, and the molecular weight of the purified carrageenase were estimated to be 23.6kDa and 30.2kDa, respectively. The optimum pH and temperature for two carrageenase activity were 7.0 and 4$0^{\circ}C$. These enzymes were stable in the pH range of 6.0~7.5 and lower than 5$0^{\circ}C$, and required 1.5% NaCl for optimum activity. And these carragennase were inhibited by metal ions such as Cu2+, Zn2+, Hg2+, but increased by Ba2+ and Ca2+, and showed specificity on -carrageenan.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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