Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.26
no.6
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pp.1116-1121
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1997
Effects of gamma irradiation onf the activity and the properties(amino acid compositions, in vitro digestibility and SDS-PAGE pattern) of proteolytic enzymes were investigated. The proteolytic activity of soluble human serine protease, enzyme in kiwi and pineapple decreased 10% and 30~65% by 5 kGy and 30 kGy, respectively. In dried pancreatin and lysozyme, the proteolytic and antimicrobial activities decreased 6~14% and 10~20% by 5kGy and 40kGy, respectively. The analysis of above 10kGy-irradiated soluble human serine protease by SDS-PAGE revealed radiolysis of the enzyme into protein or peptides of lower molecular weights. The irradiation of skim milk, hammastein casein, and lysozyme up to 40kGy had no deleterious effect on either the in vitro digestibility or amino acid compositions.
The solubilization and proteolytic process of $\delta $-endotoxin was analvsed to compare the biochemical property of the toxin isolated from B. thuringiensis subsp. sotto. The purified crystals were dissolved in 50 mM carbonate buffer containing 10 mM dithiothreitol at pH 10 for various times. The electrophoretic pattern showed that a rapid disappearance of 138 kDa protein band. This disappearance of protein with high molecular weight was accompanied by the appearance of new protein fragment with 104 kDa, 60 kDa, and 25 kDa. For proteolvtic processing, the soluble crystals were digested with trypsin for various times. The soluble crystal protein of 104 kDa was completely disappeared. However, the protein fragment of 60 kDa and 25 kDa still remained after complete proteolysis. The comparative immunoblot analysis showed that the antiserum against intact crystals showed strong immunoreactivity to the homologous inclusion protein of 138 kDa, 104 kDa, and 25 kDa, and to the intact spores of 221 kDa and 138 kDa, but not to the vegetative cell homogenate. The sera against crystals and spores had no immunoreactivity to the vegetative cell homogenate.
Three zymographic techniques using casein, fibrin, and gelatin as substrates in SDS-PAGE were compared based on three aspects: (1) The proteolytic pattern of extracellular enzymes from the three bacterial strains, Bacillus sp. DJ-1, DJ-2, and DJ-3. (2) The enzymatic sensitivity of their activity on zymogram gels. (3) The stability of stained zymogram gels with Coomassie brilliant blue in the destaining solution. There was no significant difference on the pattern of extracellular enzymes from the three strains. The bands in the fibrin gel were clearer and more distinct from the extensive destaining process. It was also shown that the gelatin gel revealed the highest enzymatic sensitivity among the three gels, based on the densitometric analysis. In the casein gel, a trace that could be mistaken as a proteolytic band appeared around 40-50 kDa.
Candida lipolytica(C. lipolytica) FM5 was selected as one of the strong saprophytic yeasts isolated from mackerel (Scomber japonicus). The selected strain could produce extracellular proteolytic enzyme. The effective medium for production of proteolytic enzyme by C. lipolytica FM5 was TPPY broth containing Bacto-tryptone $0.5\%$, proteose peptone $0.5\%$, yeast extract $0.25\%$, NaCl $0.5\%$ and $CaCl_2\;0.2\%$. The pattern of proteolytic enzyme production by C. lipolytica FM5 was the almost same as that of growth curve of the strain. Namely, the enzyme production was begun from the early stage of exponential phase and it was reached the highest at the begining of the stationary phase of the yeast growth. The optimum toeperature of the produced proteolytic enzyme was $35^{\circ}C$ and its activity was not significantly changed by pH between 6.5$\~$9.0 and also it was not significantly affected by several kinds of cations such as $Ca^{2+},\;Cu^{2+},\;Fe^{2+}$ and $Mg^{2+}$ but it was affected negatively by some cations such as $Zn^{2+},\;Mn^{2+}$ and $K^+$.
Siuda, Waldemar;Kiersztyn, Bartosz;Chrost, Ryszard J.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.6
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pp.897-904
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2007
The aim of this paper is to discuss the methodology of our investigation of the dynamics of protein degradation and the total in situ protealytic activity in meso/eutrophic, eutrophic, and hypereutrophic freshwater environments. Analysis of the kinetics and rates of enzymatic release of amino acids in water samples preserved with sodium azide allows determination of the concentrations of labile proteins $(C_{LAB})$, and their half-life time $(T_{1/2})$. Moreover, it gives more realistic information on resultant activity in situ $(V_{T1/2})$ of ecto- and extracellular proteases that are responsible for the biological degradation of these compounds. Although the results provided by the proposed method are general y well correlated with those obtained by classical procedures, they better characterize the dynamics of protein degradation processes, especially in eutrophic or hypereutrophic lakes. In these environments, processes of protein decomposition occur mainly on the particles and depend primarily on a metabolic activity of seston-attached bacteria. The method was tested in three lakes. The different degree of eutrophication of these lakes was clearly demonstrated by the measured real proteolytic pattern and confirmed by conventional trophic state determinants.
Renchinkhand, Renchinkhand;Bae, Hyoung Churl;Jeong, Seok Geun;Nam, Myoung Soo
Korean Journal of Agricultural Science
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v.39
no.4
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pp.561-568
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2012
The aim of this study was to introduce a simple method for isolation of ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin from cow's milk, and peptides produced by enzymatic hydrolysis of ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin with alcalase. Whey protein were precipitated from whey by ammonium sulfate and, ${\alpha}$-lactalbumin and ${\beta}$-lactoglobulin were isolated using Hi Prep 26/60 Sephacryl S-100 column gel filtration chromatography. Bovine serum albumin and ${\beta}$-lactoglobulin were isolated by Mono-Q 5/50 GL column anion exchange chromatography of the 50% Ammonium Sulfate-supernatant. Isolated whey proteins were hydrolyzed by proteolytic alcalase. Tricine SDS-PAGE and reverse-phase HPLC analyses revealed that almost hydrolyzed all the ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin with alcalase. Molecular weight of various peptides derived from alcalase hydrolysate were small molecular weight than 3.5 kDa.
Heedong Woo;Gyeong A Jeong;Hyunwook Choi;Chang Joo Lee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.5
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pp.656-661
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2023
The aims of this study were to optimize the preparation of low-molecular-weight collagen using a proteolytic enzyme (alcalase) derived from the feet of Korean native chickens, and to characterize the process of collagen hydrolysis. Foreign bodies from chicken feet were removed using ultrasonication at 28 kHz with 1.36 kW for more than 25 min. The hydrolytic pattern and molecular weight distribution of enzyme-treated collagen from chicken feet were analyzed using sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and high-performance liquid chromatography, respectively. Ideally, chicken feet should be treated at 100℃ for 8 h to obtain a high collagen content using hot water extraction. The collagen content of the chicken foot extract was 13.9 g/100 g, and the proportion of low-molecular-weight collagen increased with increasing proteolytic enzyme concentration and reaction time. When treated with 1% alcalase, the average molecular weight of collagen decreased rapidly to 4,929 Da within 5 h and thereafter decreased at a slower rate, reaching 4,916 Da after 7 h. Size exclusion chromatography revealed that low-molecular-weight collagen peptides of approximately 1,000-5,000 Da were obtained after hydrolysis with 1% alcalase for 1 h.
The number of sites at which a protein can be readily cleaved by a proteolytic enzyme is greatly influenced by its three-dimensional structure. For native, properly-folded proteins both the rate of cleavage and number of sites at which cleavage takes place are usually much less than for the denatured protein. In order to compare the tertiary structure of recombinant HepG2 type glucose transporter with that of its native counterpart in the erythrocyte, the pattern of tryptic cleavage of the protein expressed in insect cell membranes was therefore examined. After 30 minutes digestion, a fragment of approximate Mr 19,000-21,000 was generated. In addition to this, there were two less intensely stained fragments of apparent Mr 28,000 and 17,000. The pattern of labelling was similar up to 2 hours of digestion. However, the fragments of Mr 19,000-21,000 and Mr 17,000 were no longer detectable after 4 hours digestion. The observation of a very similar pattern of fragments yielded by tryptic digestion of the HepG2 type transporter expressed in insect cells suggests that the recombinant protein exhibits a tertiary structure similar if not identical to that of its human counterpart. Also, the endogenous sugar transporter(s) present in Sf21 cells did not bind cytochalasin B, the potent transporter inhibitor. Therefore, the baculovirus/Spodoptera frugiperda (Sf) cell expression system could be very useful for production of large amounts of human glucose transporters, heterologously.
Myostatin (MSTN; also known as GDF8) is a member of the transforming growth factor ${\beta}-superfamily$ of proteins. MSTN negatively regulates mammalian skeletal muscle growth and development by inhibiting myoblast proliferation. Mice and cattle possessing mutant MSTN alleles display a 'double muscling' phenotype characterized by extreme skeletal muscle hypertrophy and/or hyperplasia. We isolated the full-length cDNA of a novel MSTN gene from S. schlegeli muscle tissue and examined its expression pattern in various tissues. The full-length gene (GenBank DQ423474) consists of 1941bp with an open reading frame of 1134 bp, encoding 377 amino acids that show 62-92% amino acid similarity to other vertebrate MSTNs. The predicted protein contains a conserved proteolytic cleavage site (RXRR) and nine conserved cysteine residues at the C terminus. RT-PCR revealed that the unprocessed and prodomain myostatin mRNAs were predominantly present in muscle, with limited expression in other tissues. However, the mature myostatin mRNA was highly expressed in brain and muscle, intermediately expressed in the gills, intestine, heart, and kidney, and weakly expressed in the liver and spleen.
In an attempt to develop a probiotic formulation for poultry feed, a number of lactic acid bacteria (LAB) were isolated from chicken intestinal specimens and a series of in vitro experiments were performed to evaluate their efficacy as a potential probiotic candidate. A total of 650 LAB strains were isolated and screened for their antagonistic potential against each other. Among all the isolates only three isolates (TMU121, 094 and 457) demonstrated a wide spectrum of inhibition and were thus selected for detailed investigations. All three selected isolates were able to inhibit the growth of E. coli and Salmonella species, although to variable extent. The nature of the inhibitory substance produced by the isolates TMU121 and 094 appeared to be associated with bacteriocin, as their activity was completely lost after treatment with proteolytic enzymes, while pH neutralization and catalase enzyme had no effect on the residual activity. In contrast, isolate TMU457 was able to resist the effect of proteolytic enzymes while pH neutralization completely destroyed its activity. Attempts were made to study the acid, bile tolerance and cell surface hydrophobicity of these isolates. TMU121 showed high bile salt tolerance (0.3%) and high cell surface hydrophobicity compared to the other two strains studied, while TMU094 appeared the most pH resistant strain. Based on these results, the three selected LAB isolates were considered as potential ingredients for a chicken probiotic feed formulation and were identified to species level based on their carbohydrate fermentation pattern by using API 50CH test kits. The three strains were identified as Lactobacillus fermentum TMU121, Lactobacillus rhamnosus TMU094, and Pediococcus pentosaceous TMU457.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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