The saccharomyces cerevisiae Rad27, a structure-specific endonuclease for the okazaski fragment maturation has been known to interact genetically and biochemically with Dna2, an essential enzyme for DNA replication. In an attempt to define the significance of the interaction between the two enzymes, we expressed and purified both Dna2 and Rad27 proteins. In this report, Rad27 could not form a complex with Dna2 in the three different analyses. The analyses included glycerol gradient sedimentation, protein-column chromatography, and coinfection of baculoviruses followed by affinity purification. This is in striking contrast to the previous results that used crude extracts. These results suggest that the interaction between the two proteins is not sufficiently stable or indirect, and thus requires an additional protein(s) in order for Rad27 and Dna2 to form a stable physical complex. This result is consistent with our genetic findings that Schizosaccharomyces pombe Dna2 is capable of interacting with several proteins that include two subunits of polymerase $\delta$, DNA ligase I, as well as Fen-1. In addition, we found that the N-terminal modification of Rad27 abolished its enzymatic activity. Thus, as suspected, we found that on the basis of the structure determination, N-terminal methionine indeed plays an important role in the nucleolytic cleavage reaction.
Magnetic nanoparticles prepared from an alkaline solution of divalent and trivalent iron ions could covalently bind protein via the activation of Nethyl-N-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC). Trypsin and avidin were taken as the model proteins for the formation of protein-nanoparticle conjugates. The immobilized yield of protein increased with molar ratio of EDC/nanoparticie. Higher concentrations of added protein could yield higher immobilized protein densities on the particles. In contrast to EDC, the yields of protein immobilization via the a ctivation of cyanamide were relatively lower. Nanoparticles bound with avidin could attach a single-stranded DNA through the avidin-biotin interaction and hybridize with a DNA probe. The DNA hybridization was confirmed by fluorescence microscopy observations. Immobilized DNA on nanoparticles by this technique may have widespread applicability to the detection of specific nucleic acid sequence and targeting of DNA to particular cells.
Park, Jong-Hwa;Back, Jung-Ho;Hahm, Soo-Hyun;Shim, Hye-Young;Park, Min-Ju;Ko, Sung-Il;Han, Ye-Sun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권10호
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pp.1607-1615
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2007
We investigated the applicability of the TEM-l ${\beta}$-lactamase fragment complementation (BFC) system to develop a strategy for the screening of protein-protein interactions in bacteria. A BFC system containing a human Fas-associated death domain (hFADD) and human Fas death domain (hFasDD) was generated. The hFADD-hFasDD interaction was verified by cell survivability in ampicillin-containing medium and the colorimetric change of nitrocefin. It was also confirmed by His pull-down assay using cell lysates obtained in selection steps. A coiled-coil helix coiled-coil domain-containing protein 5 (CHCH5) was identified as an interacting protein of human uracil DNA glycosylase (hUNG) from the bacterial BFC cDNA library strategy. The interaction between hUNG and CHCH5 was further confirmed with immunoprecipitation using a mammalian expression system. CHCH5 enhanced the DNA glycosylase activity of hUNG to remove uracil from DNA duplexes containing a U/G mismatch pair. These results suggest that the bacterial BFC cDNA library strategy can be effectively used to identify interacting protein pairs.
생명현상 발현에 중요한 역할을 하는 생체 분자간 특이적 상호작용을 단분자 수준에서 이해하려는 연구는 매우 중요한 일이다. 나노 바이오 측정기술을 이용하여 여러 복잡한 생명현상을 그 기본 단위인 단일 세포 차원에서 직접 측정하여 응용하려는 시도가 이루어지고 있다. 이런 시도로써, 원자힘 현미경을 이용한 생체분자간의 결합력 측정은 생명현상과 가장 유사한 환경에서 단일 생체 분자간 또는 분자 내 힘을 직접 측정함으로써, 단일 생체분자의 현상을 관찰 할 수 있다는 장점을 가지고 있다. 특히 단분자 힘 분광학을 이용한 단일 생체분자내의 세부 단위체간 상호작용에 대한 연구와 단백질-단백질, 단백질-리간드, DNA-DNA의 분자인지 상호작용에 대한 연구는 많은 생명과학 분야 연구자들의 관심을 끌고 있을 뿐만 아니라 더 나아가 새로운 관련 기술의 개발을 촉진시키고 있다.
FANCJ is a DNA helicase which contributes genome stability by resolving G-quadruplex DNA from 5' to 3' direction. In addition to main ATPase helicase core, FANCJ has the protein binding region at its C-terminal part. BRCA1 and BLM are the binding partner of FANCJ and these protein-protein interactions contribute genomic stability and the proper response to replication stress. As the first attempt for studying FANCJ-BLM interaction, we prepared BLM binding region of FANCJ and characterized with CD and NMR spectroscopy. FANCJ (881-941) with N-ter 6xHis was purified as the oligomer. Secondary structure prediction based on CD data revealed that FANCJ (881-941) composed with ${\beta}$ sheet, turn and coils.$^1H-^{15}N$ HSQC spectra showed nonhomogeneous peak intensities with less number of peaks comparing than the number of amino acids in the construct. It indicated that optimization should be necessary for detailed further structural studies.
Homeodomain (HD) is a highly conserved DNA-binding domain composed of helix-turn-helix motif. Drosophila Vnd (Ventral nervous system defective) containing HD acts as a regulator to either enhance or suppress gene expression upon binding to its target sequence. In this study, kinetic analysis of Vnd binding to DNA was performed. The result demonstrates that DNA-binding affinity of the recombinant protein containing HD and NK2-specific domain (NK2-SD) was higher than that of the full-length Vnd. To access whether phosphorylation sites within HD and NK2-SD affect the interaction of the protein with the target sequence, alanine substitutions were introduced. The result shows that S631A mutation within NK2-SD does not contribute significantly to the DNA-binding affinity. However, S571A and T600A mutations within HD showed lower affinity for DNA binding. In addition, DNA-binding analysis using embryonic nuclear protein also demonstrates that Vnd interacts with other nuclear proteins, suggesting the existence of Vnd as a complex.
Formation of adduct was studied in benzo(a)pyrene(BP)- and doxorubicin(Dx)-treated human NC-37 cells and isolated nuclei. Major adducts formed were determined by fluorescence absorption spectrophotometery and DNA-lin-ked protein assay. When isolated nuclei were exposed to carcinogens BP and DMBA, and anticancer drugs m-AMSA, ellipticine and Dx, varying degrees of adduct formation occured between DNA-protein complex and these drugs. When the mixture was centrifuged 1.7 M sucrose solution, binding BP and DMBA appeared to be similar between the sediment and the supernatant. When the sediment was centrifuged again with 0.35% polymin-P, the amount of BP bound was 2-fold greater in the protein(1077$\pm$55cpm) than in DNA fraction (470$\pm$20cpm), whereas that of DMBA was 1.6-fold greater in the DNA than in protein fraction. In the case of m-AMSA, ellipticine and Dx, the amount of binding was slightly greater in supernatant than in sediment in centrifugation with 1.7 M sucrose, and more than 3 times greater in the DNA- than in protein- fraction in centrifugation with 0.35% polymin P. DNA fractions which associated with a subset of nonhistone chromosomal protein were isolated from NC-37 cells exposed to $^{3}$H-BP and $^{14}$C-Dx. They were separated into two distince components DNA-S and DNA-P by centrifugation with 2M Nacl chromatin extraction. The results indicated that the amount of $^{3}$H-BP bound was 6.0-fold greater in DNA-P as compared with DNA-S, while that of $^{14}$C-Dx binding appreaed to be 6.2-fold greater in DNA-S than in DNA-P fraction. When $^{3}$H-BP binding wasdetermined in the presence of cold Dx, the amount of binding was reduced only in the DNA-P fraction, indicating that the interaction between DNA and protein is decreased. Gene expression by these drugs, BP treated cells were increased to compare with nomal cells but reduced by treatment with BP-Dx. These results suggest that the protein moiety which tightly bound to DNA-P fraction may play an important role in the regulation of gene expression.
In order to find the cellular interaction factors of the Heliothis armigera nuclear polyhedrosis virus capsid protein VP39, a Heliothis armigera cell cDNA library was constructed. Then VP39 was used as bait. The host actin gene was isolated from the cDNA library with the yeast two-hybrid system. This demonstrated that VP39 could interact with its host actin in yeast. In order to corroborate this interaction in vivo, the vp39 gene was fused with the green fluorescent protein gene in plasmid pEGFP39. The fusion protein was expressed in the Hz-AM1 cells under the control of the Autographa californica multiple nucleopolyhedrovirus immediate early gene promoter. The host actin was labeled specifically by the red fluorescence substance, tetramethy rhodamine isothicyanete-phalloidin. Observation under a fluorescence microscopy showed that VP39, which was indicated by green fluorescence, began to appear in the cells 6 h after being transfected with pEGFP39. Red actin cables were also formed in the cytoplasm at the same time. Actin was aggregated in the nucleus 9 h after the transfection. The green and red fluorescence always appeared in the same location of the cells, which demonstrated that VP39 could combine with the host actin. Such a combination would result in the actin skeleton rearrangement.
Label-free optical methods for the monitoring of interactions between biological molecules have become increasingly popular within the last decade. A rising number of publications have demonstrated the benefits of direct biomolecular interaction analysis(BIA) for biology and biochemistry, such as antigen-antibody Interactions, receptor-ligand interactions, protein-DNA, DNA- intercalator, and DNA-DNA interactions. This article gives an overview of the historical development, principle and application of label-free optical biosensor to examine the functional characteristics of biospecific interaction, such as kinetics, affinity, and binding position of biomolecular between an immobilized species at the transducer surface and its dissolved binding partner.
DNA double-strand break (DSB) is a serious treat for the cells including mutations, chromosome rearrangements, and even cell death if not repaired or misrepaired. Ku heterodimer regulatory DNA binding subunits (Ku70/Ku80) bound to double strand DNA breaks are able to interact with 470-kDa DNA-dependent protein kinase catalytic subunit (DNA-PKcs), and the interaction is essential for DNA-dependent protein kinase (DNA-PK) activity. The Ku80 mutants were designed to bind Ku70 but not DNA end binding activity and the peptides were treated in breast cancer cells for co-therapy strategy to see whether the targeted inhibition of DNA-dependent protein kinase (DNA-PK) activity sensitized breast cancer cells to ionizing irradiation or chemotherapy drug to develop a treatment of breast tumors by targeting proteins involved in damage-signaling pathway and/or DNA repair. We designed domains of Ku80 mutants, 26 residues of amino acids (HN-26) as a control peptide or 38 (HNI-38) residues of amino acids which contain domains of the membrane-translocation hydrophobic signal sequence and the nuclear localization sequence, but HNI-38 has additional twelve residues of peptide inhibitor region. We observed that the synthesized peptide (HNI-38) prevented DNA-PKcs from binding to Ku70/Ku80, resulting in inactivation of DNA-PK complex activity in breast cancer cells (MDA-465 and MDA-468). Consequently, the peptide treated cells exhibited poor to no DNA repair, and became highly sensitive to irradiation or chemotherapy drugs. The growth of breast cancer cells was also inhibited. These results demonstrate the possibility of synthetic peptide to apply breast cancer therapy to induce apoptosis of cancer cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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