RecA protein can promote strand assimilation, homologous pairing, and strand exchange. All these reactions require DNA-dependent ATP hydrolysis by recA protein, and the activities of recA protein are affected by the ionic environment. In this experiment, DNA-dependent ATPase activity showed different sensitivity to anionic species. ATP hydrolysis and strand exchange were relatively sensitive to salt in the reactions with NaCl, strongly inhibited at 100 mM NaCl. However, the inhibition by sodium acetate or sodium glutamate was not observed at 50∼100 mM concentration. Addition of sodium glutamate to the standard reaction condition increased the apparent efficiency of ATP hydrolysis during strand exchange. The condition including 50∼100 mM sodium-glutamate might be similar to the physiological condition.
Angiotensin I converting enzyme inhibitory activities of shelled krill (Euphausia superba) hydrolysates by autolysis and by hydrolysis with commercial proteases were analyzed. Among the proteases, Alcalase was the most effective protease for the hydrolysis of krill considering the degree of hydrolysis $(87.5\%)$ and the ACE inhibitory activity $(60\%)$. Four hour hydrolysis suggested as the most suitable and economic. In order to establish the optimum hydrolysis condition of krill, degree of hydrolysis and ACE inhibitory activity as affected by Alcalase concentration and water amount added were statistically analyzed by response surface methodology (RSM). The optimum hydrolysis condition was $2.0\%$ Alcalase hydrolysis in 2 volumes (v/w) of water at $55\% for 4 hr. The hydrolysate prepared from the optimum hydrolysis condition was fractionated by molecular weight. The lower molecular weight fraction showed the higher ACE inhibitory activity. $IC_{50}$ of the fraction under 500 Da was 0.57mg protein/mL.
The objective of this study was to investigate technical methods for extraction of mucopolysachharide-protein containing chondroitin sulfate from keel cartilage of chickens. The chemical composition of chicken keel cartilage was determined. For the preparation of mucopolysaccharide-protein from lyophilized chicken keel cartilage, hot water extraction and alcalase hydrolysis methods were examined. Results showed that the optimum condition of hot water extraction was incubation for 120 min with a yield of 40.09% and chondroitin sulfate content of 28.46%. For alcalase hydrolysis, the most effective condition was 2% alcalase in 10 volumes of distilled water for 120 min. The yield of hydrolysate was 75.87%, and chondroitin sulfate content was 26.61%. For further separation of chondroitin sulfate from the alcalase hydrolysate, which has a higher yield than that of hot water, 60% ethanol precipitation was performed. The yield of the ethanol precipitate was 21.41% and its chondroitin sulfate content was 46.31%. The hot water extract, alcalase hydrolysate and ethanol precipitate showed similar electrophoretic migration with standard chondroitin sulfate (chondroitin sulfate A), using cellulose acetate membrane electrophoresis. These results indicated that a significant amount of mucopolysaccharide-protein containing chondroitin sulfate could be acquired form chicken keel cartilage. Therefore, keel cartilage in chicken may provide an inexpensive source of chondroitin sulfate for commercial purposes.
Amino acid composition of proteins in Italian millet, Common millet and sorghum were invstigated by HCI hydrolysis method. The optimum condition was obtained by hydrolysis at 110$\^{C}$ for 24hr. As major amino acids from protein hydrolyzate, the content of tyosine, arginine and phebylalanine were 7.06%, 6.79% and 6.44%, respectively. The content of glutamic acid in Common millet, Italian millet and Sorghum were 5.73%, 5.64% and 5.46%, respectively. Glycine content was about 2.93% in three samples. Contents of crude protein and pure protein in Italian millet, Common millet and sorghum were determined by micro-kjeldahl method. Crude protein contents were slightly higher than that of pure protein. Protein content of sorghum was higher than those of Italian millet and Common millet. For SDS-PAGE analysis, Italian millet showed more soluble proteins including 50kDa, 30kDa and smaller proteins than other cereals. In particular, Common millet and Sorghum only solubilized proteins less than 15kDa.
Escherichia coli transcription termination factor Rho catalyzes the unwinding of RNA/DNA duplex in reactions that are coupled to ATP binding and hydrolysis. We report here the kinetic mechanism of presteady state ATP binding and hydrolysis by the Rho-RNA complex. Presteady state chemical quenched-flow technique under multiple turnover condition was used to probe the kinetics of ATP binding and hydrolysis by the Rho-RNA complex. The quenched-flow presteady state kinetics of ATP hydrolysis studies show that three ATPs are bound to the Rho-RNA complex with a rate of $4.4\;{\times}\;10^5M^{-1}s^{-1}$, which are subsequently hydrolyzed at a rate of $88s^{-1}$ and released during the initiation process. Global fit of the presteady state ATP hydrolysis kinetic data suggests that a rapid-equilibrium binding of ATP to Rho-RNA complex occurs prior to the first turnover and the chemistry step is not reversible. The initial burst of three ATPs hydrolysis was proposed to be involved in the initialization step that accompanies proper complex formation of Rho-RNA. Based on these results a kinetic model for initiation process for Rho-RNA complex was proposed relating the mechanism of ATP binding and hydrolysis by Rho to the structural transitions of Rho-RNA complex to reach the steady state phase, which is implicated during translocation along the RNA.
Optimum conditions for the enzymatic hydrolysis of isolated sesame meal protein were investigated. Optimum conditions by papain were $60^{\circ}C$, pH 6.0, 3% enzyme concentration to substrate and 1.5% substrate concentration, respectively. The optimum operating conditions using pepsin were $55^{\circ}C$, pH 9.0, 3% enzyme concentration to substrate and 1% substrate concentration. The optimum operating conditions using trypsin were $60^{\circ}C$, pH 9.0, 1% enzyme concentration to substrate and 1% substrate concentration.
Quality of rice grain changes during dry storage with internal physiological changes and external injury by organism. Storage rice changes by condition with respiration via variable temperature, hydrolysis enzyme reaction, lipid peroxidation occurs with change of palatability. During dry storage, physiological change with protein variation pattern was examined by image analysis on proteomic technology. Analysis revealed that protein activity had no change store at room temperature and store at $40^{\circ}C$, but decreased store at $60^{\circ}C$. Analysis of variable hydrophobic protein pattern revealed that protein activity of beta-tubulin, protein disulfide isomerase, vacuolar ATPase b subunit, globulin was not significantly decreased all dry and store condition. However, heat shock protein 70, and glutathione transferase was significantly decreased when rice dried at $60^{\circ}C$ compared with room temperature and $40^{\circ}C$ dry condition.
Kim, Kyoung-Myo;Lee, Da-Sun;Nam, Min-Hee;Yoo, Hong-Seok;Kim, Seon-Bong;Chun, Byung-Soo;Lee, Yang-Bong
Preventive Nutrition and Food Science
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v.15
no.4
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pp.316-321
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2010
Krill byproduct was hydrolyzed with Alcalase 2.4L to produce functional ingredients for high antioxidative activities against 1,1-dimethyl-2-picryl-hydrazyl (DPPH) radical and Fe. The objective of this study was to investigate the optimum condition for degree of hydrolysis and antioxidative activity of enzymatic hydrolysate produced with the commercial Alcalase using response surface methodology (RSM) with a central composite rotatable design (CCRD). The ranges of independent variables were pH 7.6~10.4 for initial pH and $50.9{\sim}79.1^{\circ}C$ for hydrolysis temperature and their dependent variables were degree of hydrolysis, Brix, amount of phenolic compounds, DPPH-scavenging activity and Fe-chelating activity. RSM with CCRD was well designed to investigate the optimum condition for functional ingredients with high antioxidative activities using Alcalase 2.4L because of their high $R^2$ values of the range of 0.93~0.99 except the $R^2$ value of 0.50 for the amount of total phenolic compounds. The optimum hydrolysis conditions were pH 9.5 and $62^{\circ}C$ for degree of hydrolysis (DH) and pH 9.1 and $64^{\circ}C$ for DPPH-scavenging activity by response surface methodology. The yield of DH and DPPH-scavenging activity were $14.1{\pm}0.5%$ and $10.5{\pm}0.2%$, respectively. It is advantageous to determine the optimum hydrolysis conditions of krill and its by-products for the creation of different kinds of food products, as well as to increase the usage of marine protein sources.
The aim of this study was to investigate physicochemical properties of porcine blood hydrolyzed by proteases under various conditions for utilization as a food source. Five kinds of proteases (Alcalase, Neutrase, Protex-40L, PTPF-1430, and KMFP-15) were tested at different concentrations (0.1, 0.2, and 0.3%, w/v) during hydrolysis at 55 for 4 hr. Hydrolysis with $^{\circ}C$ KMFP-15 showed the lowest pH by 7.3. The highest soluble solid ($24.3^{\circ}Brix$) and free amino acid (4,944 mg%) contents were obtained by hydrolysis with KMFP-15 (w/v) at 0.2% addition level, which was not significantly different from the sample hydrolyzed at 0.3% level. Under the optimal condition of KMFP-15 at 0.2%, porcine blood was hydrolyzed at 60 up to 8 hr. The $^{\circ}C$ free amino acid content reached the highest at 4 hr, and then decreased with longer hydrolysis time. Under the optimal hydrolysis conditions, porcine blood hydrolysis powder had plenty of crude proteins, amino acids, and minerals, including iron, potassium, and zinc. The results showed that porcine blood could be utilized as an useful source of food supplement. The optimum conditions of hydrolyzing porcine blood, using 0.2 KMFP at $60^{\circ}C$ for 4 hr, can be used in the commercial production of protein supplements, amino acid sources, and iron fortifying agents.
Dry corn gluten meal of 70% protein content was enzymatically hydrolyzed by alkaline protease in a pH-state reactor. Such process variables as temperature, pH, and enzyme-to-substrate ratio were varied, and at each condition degree of hydrolysis was monitored and calculated. The ultimate degree of hydrolysis, which ranged between 25 and 28% based on gluten protein mass, was not significantly affected by the process variables. However, $50^{\circ}C$ and pH 9-10 appeared optimum. Kinetic analysis indicated enzyme deactivation was negligible during the hydrolysis, and the experimental data were near perfectly fitted to the model kinetic equation which was modified after neglecting enzyme deactivation term. The enzyme reaction was 1$100\times$ scaled up and basically the same hydrolysis performance was resulted. Amino acid analysis showed the hydrolyzate was relatively rich in glutamine/glutamic acid, leucine, and alanine at 19.6, 16.1, and 12.3 mole %, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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