Park, Jong-hyeon;Song, Jae-young;Lee, Jung-bok;Hyun, Bang-hun;An, Soo-hwan;Jun, Moo-hyung
Korean Journal of Veterinary Research
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v.32
no.4
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pp.555-567
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1992
In this study gene encoding structural proteins of a CPV isolate was cloned and sequenced to elucidate the molecular genetical properties of the canine parvoviruses isolated from the field. Six recombinant plasmids of pEP3, p1471, p2070, pEP069, pEP338 and p14711p were constructed from the map positions 22 to 98 of RF DNA to clone the VP1 and VP2 genes of CPV-V20. Sequentialy the gene comprising 3780 nucleotides were sequenced by dideoxy chain termination method. When nucleotide sequence of gene encoding the structural proteins of CPV-V20 was compared with those of other strains, CPV-N, CPV-d and CPV-780929 published previously, DNA, homologies to CPV-V20 were 99.87% with CPV-N, 99.73% with CPV-d, 96.85% with CPV-780929 and 98.4% with FPLV-Carl, respectively. The DNA sequence data of CPV-V20 showed seven point mutations and also deletion of 135 nucleotides from the nucleotide position 4745 to 4879 located in the 3'-noncoding region of CPV-N.
Cationic liposome has been studied as one of the most promising non-viral gene delivery systems. In this report, we describe a new synthesized cholesterolic cationic lipid (2-aminoethylcarbamate-cholesterol) and dioleylphosphatidylethanolamine (DOPE) improve the cellular uptake properties of antisense ODNs, as well as plasmid DNA with low toxicity. This formulation of cholesterolic cationic lipid termed Chol-E, efficiently transfects ODNs and plasmids into many cell types in the presense or absence of 10% serum in the medium.
Enterotoxigenic E. coli is one of the major causative agents of the infantile diarrhea and traveler's diarrhea. The heat-stable enterotoxin(ST) is thought to be a virulence factor in the pathogenesis of the diarrhea and to be a maker for identification of the enterotoxingeic E. coli from non pathogenic E. coli. The isolate of enterotoxigenlc E. coli was isolated from swine during 1989 year(from 5 to 10 month) in the Kyong-gi and Chung-Cheong provinces, and three strains(KM-4, KM-7 and KM-12) was selected from 189 isolates of ST producing E. coli. The detection of a ST produced of the isolated E. coli was performed by the infant mouse assay(IMA). This study was designed to know optimal conditions for the production of the ST and the molecular properties of plasmids of the enterotoxigenic E. coli. Amount of ST produced were the most at initial pH 8.5~9.0 of succinate salts medium culture. The cultural time of the same medium was accumulated the highest level of ST was at the 14 to 16 hours, and then stationary phase was at the 20 hours. From this experiment the KM-7 strain was selected among ST producing strains by IMA. Partial plasmid-curing experiment was done to select plasmid encoding for ST among other plasmids and then comparing the plasmid pattern of ST producing strain(KM-7) with those of other ST non-producing strains, it is found that ST gene exists on the about 80 Kbp plasmid. Each fragment of this plasmid digested with EcoRl was ligated to vector pBR 322 and transformed into E. coli K-12. A clone producing ST(eKT 53) was selected by IMA. The EcoRl digestion pattern of the isolated plasmid(pKD 37) from the ST producing clone it is indicated that the size of the inserted fragment in eKT 53 strain is 16 Kbp. The cultured supernatant of eKT 53 strain was positive result of ST production in IMA.
To analyze the role of the C and D domains in the cyclization activity of cyclodextrin glucanotransferase (CGTase), two plasmids, pKB1ΔC300 and pKB1ΔD96, were constructed in which DNA regions encoding 100 and 32 amino acids, respectively, from the C and D domains of B. stearothermophilus NO2 CGTase were deleted. The mutated CGTase from the pKBlΔC300 produced much lower amounts of ${\alpha}$-, ${\beta}$-, and $\gamma$-cyclodextrin (CD) than the parental CGTase. However, the mutated CGTase from the pKBlΔD96 showed a similar production pattern of CDs to wild-type CGTase. The production ratios of the ${\alpha}$-, ${\beta}$- and $\gamma$-CDs were not affected by the deletions, when compared to those of parental CGTase. The optimum temperature of the mutated CGTase from the pKBlΔC300 was decreased from $60^{\circ}C$ to $55^{\circ}C$. The optimum pH of the mutated CGTase from the pKB1D96 was shifted from 6.0 to 7.0. The thermostability of the two mutant CGTases were not changed. From these results, it is suggested that the C and D domains are not related to cyclization activity directly because mutant-enzymes deleted C or D domains still possessed their activity. However, they are important for other enzymatic properties such as productivity and pH optimum as a partition of CGTase tertiary structure.
Bacillus amyloliquefaciens is an important plant disease-preventing and growth-promoting microorganism. B. amyloliquefaciens WS-8 can stimulate plant growth and has strong antifungal properties. In this study, we sequenced the complete genome of B. amyloliquefaciens WS-8 by Pacific Biosciences RSII (PacBio) Single Molecule Real-Time (SMRT) sequencing. The genome consists of one chromosome (3,929,787 bp) and no additional plasmids. The main bacteriostatic substances were determined by genome, transcriptome, and mass spectrometry data. We thereby laid a theoretical foundation for the utilization of the strain. By genomic analysis, we identified 19 putative biosynthetic gene clusters for secondary metabolites, most of which are potentially involved in the biosynthesis of numerous bioactive metabolites, including difficidin, fengycin, and surfactin. Furthermore, a potential class II lanthipeptide biosynthetic gene cluster and genes that are involved in auxin biosynthesis were found. Through the analysis of transcriptome data, we found that the key bacteriostatic genes, as predicted in the genome, exhibited different levels of mRNA expression. Through metabolite isolation, purification, and exposure experiments, we found that a variety of metabolites of WS-8 exert an inhibitory effect on the necrotrophic fungus Botrytis cinerea, which causes gray mold; by mass spectrometry, we found that the main substances are mainly iturins and fengycins. Therefore, this strain has the potential to be utilized as an antifungal agent in agriculture.
To develop a live vaccine candidate using an attenuated strain of Salmonella Typhimurium (ST), biochemical properties, plasmid profile, PFGE patterns and pathogenic analysis of the ST isolate were carried out after sequential passage of the ST isolate in porcine neutrophils. By the passage, the ability of the neutrophil-adapted isolate to utilize d-xylose was lost, while the ability of the strain to ferment trehalose was delayed after 2 or more days of the culture. Also, changes including deletion of the gene fragments were observed in PFGE analysis of the neutrophil-adapted isolates. Two plasmids, 105kb and 50kb, were cured in the strain passaged over 15 times in porcine neutrophils. The 50% of lethal dose ($LD_{50}$) of the parent strain was changed from $1{\times}10^5\;LD_{50}$ to $6{\times}10^6\;LD_{50}$ by the passage in intraperitoneal injection of the strains into mice. These results suggested that bacterial genotypic and phenotypic responses might be globally altered depending on the inside environment of neutrophils.
Cytochrome P450 3As such as 3A4 and 3A5 metabolize a wide range of pharmaceutical compounds. The vectors for the expression of fusion protein containing an N-terminal human P450 3A4 or P450 3A5 sequences and a C-terminal rat NADPH-cytochrome P450 reductase moiety were constructed. These plasmids were used to express the fusion protein in Escherichia coli DH5$\alpha$ cells. High levels of expression were achieved (100~200 nmol/liter) and the expressed fusion protein in E. coli membranes were catalytically active for nifedipine oxidation, a typical enzymatic activity of P450 3A4. The NADPH-P450 reductase activities of these fusion protein were also determined by measuring reduction of cytochrome c. To fine a specific Inhibitor of P450 3A4 from naturally occurring chemicals, a series of isothiocyanate compounds were evaluated for the inhibitory activity of P450 using the fusion proteins in E. coli membranes. Of the five isothiocyanates (phenethyl isothiocyanate, phenyl isothiocyanate, benzol isothiocyanate, benzoyl isothiocyanate and cyclohexyl isothiocyanate) tested, benzoyl isothiocyanate showed a strong inhibition of P450 3A4 with an $IC_{50}$value of 2.8 $\mu\textrm{M}$. Our results indicate that the self-sufficient fusion protein will be very useful tool to study the drug metabolism and benzyl isothiocyanate may be valuable for characterizing the enzymatic properties of P450 3A4.
Shiga toxin-producing Escherichia coli (STEC) causes various clinical signs in human and animals, and has been indicated as a global enteropathogen with zoonotic importance. In this study, the feces of healthy pigs were collected from the slaughtered pigs of Daejon abattoir during the period from December 2001 to October 2002. Of 326 specimens, 13 STEC were confirmed by culture, PCR and colony hybridization. The isolates were further studied for toxin types, pathogenic factors, plasmid profiles, and antimicrobial resistance to characterize the genetic and toxigenic properties. In PCR, all of 13 isolates were evident to have shiga toxin gene (stx). Of 13 isolates stx1 gene was detected in 4 and stx2 gene in 9. The genes of eaeA, hlyA and rfbE were not present in any isolates. In colony hybridization using shiga toxin common primer (STXc), 2 to 9 per 100 colonies subcultured from 13 isolates showed the positive reaction. In the examination for plasmid profiles of the isolates, one to eleven plasmids with varying sizes of 1.0 Kb to 100 Kb were detected, and the 13 STEC could be classified into four groups by the plasmid patterns. The antimicrobial resistance patterns of the isolates were comparably corresponded with the plasmid profile patterns.
The gene coding for alkaline amylase of alkalophilic Bacillus sp. AL-8 was cloned and expressed in Escherichia coli which was lack of amylase activity. For the cloning of the alkaline amylase gene, the chromosomal DNA and plasmid vector pBR322 were cleaved at the site of EcoRI and the gene was cloned. The selection of the transformants carrying the amylase gene was based on the their antibiotics resistance and amylase activity of the transformants. The recombinant plasmids pJW8 and pJW200 containing 5.8Kb and 3.0Kb EcoRI inserts respectively were proved to can the alkaline amylase gene. Alkaline amylase expressed in E. coli was characterized. The enzyme was proved to be stable at the range of alkaline pH.
The genes for cellulases of Pseudomonas sp. LBC505 and CYC10, potent cellulase complex-producing strains, were cloned in Escherichia coli with pUC19. Recombinant plasmids pLCl and pLC2 were isolated from transformants producing cellulase by Congo red staining, and their genes cloned were 0.7 kb and 4.6 kb HindIII fragments, respectively. The inserts of pLCl and pLC2 were hybridized to chromosomal DNAs digested with HindIII from Pseudomona~ sp. LBC505 and CYC10, respectively. Immunodiffusion assays revealed that pLC1-and pLC2-encoded cellulase showed similarity with that of host strains. About 24% of cellulase activity was observed in the extracellular fraction of E. coli carrying pLC1, and its activity was higher about 1.4 times than that of LBC505. The enzymatic properties of pLC1 and pLC2 encoded cellulase were the same as those of cellulase from host strains. HPLC analysis and substrate specificity showed that cellulases were the same as those of cellulase from host strains. HPLC analysis and substrate specificity showed that cellulases cloned were endocellulase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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