A modification of the Hodgkin-Huxley equations was done with the changes of the binding sitea for the sodium and potassium channels. The computer simulation results agree well with the currant experiments. Thus, the contradictory problems that Suh had indicated previously can be solved. And also, the results show that the sodium and potassium channels play an important role in the firing and the leakage channel does not.
The present study was attempted to investigate the effect of quinine on secretion of catecholamines (CA) etroked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of quinine (15-150${\mu}$M) into an adrenal vein for 60 min produced dose- and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh ($5.32{\times}10^{-3}M$), high $K^{+}5.6{\times}10^{-2}M$, DMPP ($10^{-4}M$ for 2 min), McN-A-343 ($10^{-4}M$ for 2 min), cyclopiazonic acid ($10^{-5}$ for 4 min) and Bay-K-8644 ($10^{-5}$ M for 4 min). Also, under the presence of pinacidil ($10^{-4}$ M), which is also known to be a selective potassium channel activator, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also greatly reduced. When preloaded along with quinine ($5{\times}10^{-5}M$) and glibenclamide ($10^{-6}$ M), a specific blocker of ATP-regulated potassium channels, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered as compared to those of quinine-treatment only. taken together, these results demonstrate that quinine inhibits CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization through inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenmodullary chromaffin cells. These findings suggest that activation of potassium channels may be involved at least in inhibitory action of quinine on CA secretion from the rat adrenal gland.
Hyang Mi Lee;Seong Han Yoon;Min-Gul Kim;Sang June Hahn;Bok Hee Choi
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제27권1호
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pp.95-103
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2023
Rosiglitazone is a thiazolidinedione-class antidiabetic drug that reduces blood glucose and glycated hemoglobin levels. We here investigated the interaction of rosiglitazone with Kv3.1 expressed in Chinese hamster ovary cells using the wholecell patch-clamp technique. Rosiglitazone rapidly and reversibly inhibited Kv3.1 currents in a concentration-dependent manner (IC50 = 29.8 µM) and accelerated the decay of Kv3.1 currents without modifying the activation kinetics. The rosiglitazonemediated inhibition of Kv3.1 channels increased steeply in a sigmoidal pattern over the voltage range of -20 to +30 mV, whereas it was voltage-independent in the voltage range above +30 mV, where the channels were fully activated. The deactivation of Kv3.1 current, measured along with tail currents, was also slowed by the drug. In addition, the steady-state inactivation curve of Kv3.1 by rosiglitazone shifts to a negative potential without significant change in the slope value. All the results with the use dependence of the rosiglitazone-mediated blockade suggest that rosiglitazone acts on Kv3.1 channels as an open channel blocker.
To swimming motor neurons (SMNs) of Polyorchis penicillatus, a hydrozoan medusae, dopamine (DA) acts as an inhibitory neurotransmitter by hyperpolarizing its membrane potential and decreasing its firing rate as well. Such an inhibitory action of DA is caused by an increased permeability to potassium (K) ions. To investigate whether voltage-gated K channels are directly responsible for the membrane hyperpolarization induced by DA, we employed whole-cell voltage clamp configuration. One ${\mu}M$ DA applied to SMNs increased the peak and rear values of voltage-gated K currents by 37 and 54%, respectively, in a reversible manner. Combined with subtraction analysis, this result suggests that the outflux of K ions by DA in SMNs occurs mainly through rectifier-like K channels.
Interstitial cells of Cajal (ICCs) are the pacemaker cells that generate slow waves in the gastrointestinal (GI) tract. In the present study, we investigated the effect of mitochondrial ATP-sensitive potassium (mitoKATP) channel on pacemaking activity in cultured ICCs from murine small intestine by using whole-cell patch clamp techniques. Under current clamp mode, at 10μM glibenclamide, there was no change in pacemaking activity of ICCs. At $30{\mu}M$ glibenclamide, an inhibitor of the ATP sensitive $K^+$ channels, we could find two examples. If pacemaking activity of ICCs was irregulating, pacemaking activity of ICCs was changed into regulating and if in normal conditions, membrane potential amplitude was increased. At $50{\mu}M$ glibenclamide, the resting membrane potential was depolarized. At 3mM 5-HDA, an inhibitor of the mitoKATP channels, inhibited the pacemaking activity of ICCs. Both the amplitude and the frequency were decreased. At 5 mM 5-HDA, both the amplitude and the frequency were completely abolished. Diazoxide, an opener of the mitoKATP channels, was applied to examine its effect on pacemaking activity of ICCs. At $50{\mu}M$ concentration, the pacemaking activity of ICCs was inhibited. Both the amplitude and the frequency were decreased. At 1 mM concentration, both the amplitude and the frequency were completely abolished and the resting membrane potential was shaked.These results indicate that mitoKATP channel has an important role in pacemaking activity of ICCs.
한국응용약물학회 1998년도 Proceedings of UNESCO-internetwork Cooperative Regional Seminar and Workshop on Bioassay Guided Isolation of Bioactive Substances from Natural Products and Microbial Products
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pp.148-149
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1998
It has been known that potassium channel openers are a new class of molecules that have attracted general interest because of their potent antihypertensive activity in vivo and vasorelaxant activity in vitro (Hamilton and Weston, 1989). In the present study, it was attempted to examine the effect of the potassium channel opener on catecholamine (CA) secretion evoked by cholinergic stimulation, membrane depolarization and calcium mobilization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of pinacidil (30-300 uM) into an adrenal vein for 20 min produced relatively dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), high $K^{+}$ (56 mM), DMPP (100 uM for 2 min), McN-A-343 (100 uM for 2 min), cyclopiazonic acid (10 uM for 4 min) and Bay-K-8644 (10 uM for 4 min). Also, under the presence of minoxidil (100 uM), which is also known to be a potassium channel activator, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly depressed. However, in adrenal glands preloaded with pinacidil (100 uM) under the presence of glibenclamide (1 uM), an antidiabetic sulfonylurea that has been shown to be a specific blocker of ATP-regulated potassium channels (for 20 min), CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were considerably recovered to a considerable extent of the normal release as compared to that of pinacidil only. These results, taken together, suggest that pinacidil cause the marked inhibition of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization, indicating strongly that this effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells. Furthermore, these findings suggest strongly that these potassium channel openers-sensitive membrane potassium channels also play an important role in regulating CA secretion.
Small conductance calcium-activated potassium channels (or SKCa channels) are potassium selective, voltage-independent, and activated by intracellular calcium concentration. These channels play important roles in excitable cells such as neuron in the central nervous system (Vergara et al., 1998). The activity of SKCa channels underlies the slow afterhyperpolarization that inhibits neuronal cell firing (Hille, 1991; Vergara et al.,1998). Until now, N-terminal region of rSK2 isn't characterized. To study the role of N-terminus, we constructed the N-terminal deletion mutant and characterized by electrophysiological means. Interestingly, N-terminal deletion mutant be trafficked to membrane couldn't evoke any ionic currents. Thus, N-terminal region has a role in functional rSK2 channel formation. To elucidate the function of N-terminal region, (His)6-conjugated protein was purified and filtrated by affinity column chromatography. Surprisingly, N-terminal region was shown in tetramer size that was supported by cross-linking result. Thus, we predicted that N-terminal region might be involved in the tetramerization of rSK2.
To investigate the contributions of intrinsic membrane properties to the spontaneous activity of medial vestibular nucleus (MVN) neurons, we assessed the effects of blocking large and small calcium-activated potassium channels by means of patch clamp recordings. Almost all the MVN neurons recorded in neonatal $(P13{\sim}P17)$ rat were shown to have either a single deep after-hyperpolarization (AHP; type A cells), or an early fast and a delayed slow AHP (type B cells). Among the recorded MVN cells, immature action potential shapes were found. Immature type A cell showed single uniform AHP and immature B cell showed a lack of the early fast AHP, and the delayed AHP was separated from the repolarization phase of the spike by a period of isopotentiality. Application of apamin and charybdotoxin (CTX), which selectively block the small and large calcium-activated potassium channels, respectively, resulted in significant changes in spontaneous firings. In both type A and type B cells, CTX (20 nM) resulted in a significant increase in spike frequency but did not induce bursting activity. By contrast, apamin (300 nM) selectively abolished the delayed slow AHP and induced bursting activity in type B cells. Apamin had no effect on the spike frequency of type A cells. These data suggest that there are differential roles of apamin and CTX sensitive potassium conductances in spontaneous firing patterns of MVN neurons, and these conductances are important in regulating the intrinsic rhythmicity and excitability.
Lee, Hyang Mi;Chai, Ok Hee;Hahn, Sang June;Choi, Bok Hee
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제22권1호
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pp.71-80
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2018
In patients with epilepsy, depression is a common comorbidity but difficult to be treated because many antidepressants cause pro-convulsive effects. Thus, it is important to identify the risk of seizures associated with antidepressants. To determine whether paroxetine, a very potent selective serotonin reuptake inhibitor (SSRI), interacts with ion channels that modulate neuronal excitability, we examined the effects of paroxetine on Kv3.1 potassium channels, which contribute to high-frequency firing of interneurons, using the whole-cell patch-clamp technique. Kv3.1 channels were cloned from rat neurons and expressed in Chinese hamster ovary cells. Paroxetine reversibly reduced the amplitude of Kv3.1 current, with an $IC_{50}$ value of $9.43{\mu}M$ and a Hill coefficient of 1.43, and also accelerated the decay of Kv3.1 current. The paroxetine-induced inhibition of Kv3.1 channels was voltage-dependent even when the channels were fully open. The binding ($k_{+1}$) and unbinding ($k_{-1}$) rate constants for the paroxetine effect were $4.5{\mu}M^{-1}s^{-1}$ and $35.8s^{-1}$, respectively, yielding a calculated $K_D$ value of $7.9{\mu}M$. The analyses of Kv3.1 tail current indicated that paroxetine did not affect ion selectivity and slowed its deactivation time course, resulting in a tail crossover phenomenon. Paroxetine inhibited Kv3.1 channels in a use-dependent manner. Taken together, these results suggest that paroxetine blocks the open state of Kv3.1 channels. Given the role of Kv3.1 in fast spiking of interneurons, our data imply that the blockade of Kv3.1 by paroxetine might elevate epileptic activity of neural networks by interfering with repetitive firing of inhibitory neurons.
Scorpion venom comprises a cocktail of toxins that have proven to be useful molecular tools for studying the pharmacological properties of membrane ion channels. HelaTx1, a short peptide neurotoxin isolated recently from the venom of the scorpion Heterometrus laoticus, is a 25 amino acid peptide with two disulfide bonds that shares low sequence homology with other scorpion toxins. HelaTx1 effectively decreases the amplitude of the K+ currents of voltage-gated Kv1.1 and Kv1.6 channels expressed in Xenopus oocytes, and was identified as the first toxin member of the κ-KTx5 subfamily, based on a sequence comparison and phylogenetic analysis. In the present study, we report the NMR solution structure of HelaTx1, and the major interaction points for its binding to voltage-gated Kv1.1 channels. The NMR results indicate that HelaTx1 adopts a helix-loop-helix fold linked by two disulfide bonds without any β-sheets, resembling the molecular folding of other cysteine-stabilized helix-loop-helix (Cs α/α) scorpion toxins such as κ-hefutoxin, HeTx, and OmTx, as well as conotoxin pl14a. A series of alanine-scanning analogs revealed a broad surface on the toxin molecule largely comprising positively-charged residues that is crucial for interaction with voltage-gated Kv1.1 channels. Interestingly, the functional dyad, a key molecular determinant for activity against voltage-gated potassium channels in other toxins, is not present in HelaTx1.
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