Considerable effort has been directed toward the use of silk fibroin as a biotechnological material in biomedical applications on account of its excellent biodegradability, biocompatibility, and unique mechanical properties. For use in tissue engineering, it is very important to design and control the pore architecture of polymeric scaffolds, which provide the vital framework for seeded cells to organize into functioning tissue. In the present study, a silk fibroin scaffold with controlled interconnectivity and pore size was prepared using an electrospinning method with poly(ethylene oxide).
The interactions between the surface of scaffolds and specific cells play an important role in tissue engineering applications. Some cell adhesive ligand peptides including Arg-Gly-Asp (RGD) have been grafted into polymeric scaffolds to improve specific cell attachment. In order to make cell adhesive scaffolds for tissue regeneration, biodegradable nonporous poly(L-lactic acid) (PLLA) films were prepared by using a solvent casting technique with chloroform. The hydrophobic PLLA films were surface-modified by Argon plasma treatment and in situ direct acrylic acid (AA) grafting to get hydrophilic PLLA-g-PAA. The obtained carboxylic groups of PLLA-g-PAA were coupled with the amine groups of Gly-Arg-Asp-Gly (GRDG, control) and GRGD as a ligand peptide to get PLLA-g-GRDG and PLLA-g-GRGD, respectively. The surface properties of the modified PLLA films were examined by various surface analyses. The surface structures of the PLLA films were confirmed by ATR-FTIR and ESCA, whereas the immobilized amounts of the ligand peptides were 138-145 pmol/$cm^2$. The PLLA surfaces were more hydrophilic after AA and/or RGD grafting but their surface morphologies showed still relatively smoothness. Fibroblast adhesion to the PLLA surfaces was improved in the order of PLLA control
Transactions of the Korean Society of Mechanical Engineers A
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v.40
no.10
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pp.865-871
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2016
In recent years, traditional scaffold fabrication techniques such as gas foaming, salt leaching, sponge replica, and freeze casting in tissue engineering have significantly limited sufficient mechanical property and cell interaction effect due to only random pores. Fused deposition modeling is the most apposite technology for fabricating the 3D scaffolds using the polymeric materials in tissue engineering application. In this study, 3D slurry mould was fabricated with a blended biphasic calcium phosphate (BCP)/Silica/Alginic acid sodium salt slurry in PCL mould and heated for two hours at $100^{\circ}C$ to harden the blended slurry. 3D dual-pore BCP/Silica scaffold, composed of macro pores interconnected with micro pores, was successfully fabricated by sintering at furnace of $1100^{\circ}C$. Surface morphology and 3D shape of dual-pore BCP/Silica scaffold from scanning electron microscopy were observed. Also, the mechanical properties of 3D BCP/Silica scaffold, according to blending ratio of alginic acid sodium salt, were evaluated through compression test.
Kim, Dongyoon;Kim, Seong-Min;Kang, Donghee;Baek, Goeun;Yoon, Myung-Han
Proceedings of the Korean Vacuum Society Conference
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2013.08a
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pp.277.2-277.2
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2013
Petri dishes and glass slides have been widely used as general substrates for in vitro mammalian cell cultures due to their culture viability, optical transparency, experimental convenience, and relatively low cost. Despite the aforementioned benefit, however, the flat two-dimensional substrates exhibit limited capability in terms of realistically mimicking cellular polarization, intercellular interaction, and differentiation in the non-physiological culture environment. Here, we report a protocol of culturing embryonic rat hippocampal neurons on the electro-spun polymeric network and the results from examination of neuronal cell behavior and network formation on this culture platform. A combinatorial method of laser-scanning confocal fluorescence microscopy and live-cell imaging technique was employed to track axonal outgrowth and synaptic connectivity of the neuronal cells deposited on this model culture environment. The present microfiber-based scaffold supports the prolonged viability of three-dimensionally-formed neuronal networks and their microscopic geometric parameters (i.e., microfiber diameter) strongly influence the axonal outgrowth and synaptic connection pattern. These results implies that electro-spun fiber scaffolds with fine control over surface chemistry and nano/microscopic geometry may be used as an economic and general platform for three-dimensional mammalian culture systems, particularly, neuronal lineage and other network forming cell lines.
A polyrotaxane-biotin conjugate was synthesized and its interaction with streptavidin measured using surface plasmon resonance(SPR) detection. A biodegradable polyrotaxane in which ca, 22 molecules of ${\alpha}$-cyclodextrina(${\alpha}$-CDs) were threaded onto a poly(ethylene oxide) chain(M$\sub$n:4,000) capped with benzyloxycarbonyl-L-phenylalanine was conjugated with a biotin hydorazide and 2-aminoethanol after activing the hydroxyl groups of ${\alpha}$-CDs in the polyrotaxane using N, N'-carbonyldiimidazole. The results of the high-resolution $^1$H-nyclear lmagnetic resonance($^1$H-NMR)spectra and gel permeation chromatography of the conjugate showed that ca, 11 biotin molecules were actually introduced to the polyrotaxane scaffold. An SPR analysis showed that the binding curves of the biotin molecules in the conjugate on the streptavidin-deposited surface changed in a concentration dependent manner, indicating that the biotin in the conjugate was ac-tually recognized by streptavidin. The association equilibrium constant(K$\sub$a/) of the interaction be-tween the conjugate and steptavidin tetramer was of the order 10$\^$7/. These results suggest that polyrotaxane is useful for scaffolds as a polymeric ligand in biomedical fields.
Park, Hong-Hyun;Lee, Kuen-Yong;Lee, Seung-Jin;Park, Ko-Eun;Park, Won-Ho
Macromolecular Research
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v.15
no.3
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pp.238-243
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2007
Nanofibers were prepared by electrospinning a solution of poly(lactic-co-glycolic acid) (PLGA) and their mean diameter was 340 nm. The PLGA nanofibers were treated with a plasma in the presence of either oxygen or ammonia gas to change their surface characteristics. The hydrophilicity of the electrospun PLGA nanofibers was significantly increased by the gas plasma treatment, as confirmed by contact angle measurements. XPS analysis demonstrated that the chemical composition of the PLGA nanofiber surface was influenced by the plasma treatment, resulting in an increase in the number of polar groups, which contributed to the enhanced surface hydrophilicity. The degradation behavior of the PLGA nanofibers was accelerated by the plasma treatment, and the adhesion and proliferation of mouse fibroblasts on the plasma-treated nanofibers were significantly enhanced. This approach to controlling the surface characteristics of nanofibers prepared from biocompatible polymers could be useful in the development of novel polymeric scaffolds for tissue engineering.
Purpose: This study evaluated histologically the tissue responses to and the effects of a customized nano-hydroxyapatite (n-HA) block bone graft on periodontal regeneration in a one-wall periodontal-defect model. Methods: A customized block bone for filling in the standardized periodontal defect was fabricated from prefabricated n-HA powders and a polymeric sponge. Bilateral $4{\times}{\times}4{\times}5$ mm (buccolingual width${\times}$mesiodistal width${\times}$depth), one-wall, critical-size intrabony periodontal defects were surgically created at the mandibular second and fourth premolars of five Beagle dogs. In each dog, one defect was filled with block-type HA and the other served as a sham-surgery control. The animals were sacrificed following an 8-week healing interval for clinical and histological evaluations. Results: Although the sites that received an n-HA block showed minimal bone formation, the n-HA block was maintained within the defect with its original hexahedral shape. In addition, only a limited inflammatory reaction was observed at sites that received an n-HA block, which might have been due to the high stability of the customized block bone. Conclusions: In the limitation of this study, customized n-HA block could provide a space for periodontal tissue engineering, with minimal inflammation.
Chitosan is biodegradable natural polymer that has been demonstrated its ability to improve wound healing, and calcium metaphosphate(CMP) is a unique class of phosphate minerals having a polymeric structure. In this study, chitosan/CMP and platelet derived growth factor(PDGF-BB) loaded chitosan/CMP sponges were developed, and the effect of the sponges on bone regeneration and their possibility as scaffolds for bone formation by three-dimensional osteoblast culture were examined. PDGF-BB loaded chitosan/CMP sponges were prepared by freeze-drying of a mixture of chitosan solution and CMP powder, and soaking in a PDGF-BB solution. Fabricated sponge retained its 3-dimensional porous structure with $100-200\;{\mu}m$ pores. The release kinetics of PDGF-BB loaded onto the sponge were measured in vitro with $^{125}I-labeled$ PDGF-BB. In order to examine their possibility as scaffolds for bone formation, fetal rat calvarial osteoblastic cells were isolated, cultured, and seeded into the sponges. The cell-sponge constructs were cultured for 28 days. Cell proliferation, alkaline phosphatase activity were measured at 1, 7, 14 and 28 days, and histologic examination was performed. In order to examine the effect on the healing of bone defect, the sponges were implanted into rat calvarial defects. Rats were sacrificed 2 and 4 weeks after implantation and histologic and histomorphometrical examination were performed. An effective therapeutic concentration of PDGF-BB following a high initial burst release was maintained throughout the examination period. PDGF-BB loaded chitosan/CMP sponges supported the proliferation of seeded osteoblastic cells as well as their differentiation as indicated by high alkaline phosphatase activities. Histologic findings indicated that seeded osteoblastic cells well attached to sponge matrices and proliferated in a multi-layer fashion. In the experiments of implantation in rat calvarial defects, histologic and histomorphometric examination revealed that chitosan/CMP sponge promoted osseous healing as compared to controls. PDGF-BB loaded chitosan/CMP sponge further echanced bone regeneration. These results suggested that PDGF-BB loaded chitosan/CMP sponge was a feasable scaffolding material to grow osteoblast in a three-dimentional structure for transplantation into a site for bone regeneration.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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