Cyclic AMP receptor protein (CRP) is involved in the transcriptional regulation of more than 100 genes in E. coli. CRP dimer is converted into active form via the sequential conformation change of cAMP binding pocket, hinge region and HTH DNA binding motif by binding of cAMP. The temperature gradient gel electrophoresis (TGGE) was applied to CRP protein to know whether it was an efficient technique to study the conformational transitions and the thermal stability. TGGE showed the unfolding process of wild-type and S83G CRP proteins with the temperature gradient set from 29 to 71$^{\circ}C$ on nondenaturing polyacrylamide gel. Melting temperature (Tm) was 57$\pm$1 and 55$\pm$1$^{\circ}C$ for wild-type and S83G CRP, respectively in acidic buffer[89.8 mM Glycine and 24 mM Boric acid (pH 5.8)].
Ampliciline was synthesized from 6-amino-pencillanic acid (6-APA) and D-.alpha. phenylglycine methyl ester by using amplicilin synthesizing enzyme from Peudomonas melanogenum (IAM 1655). The whole cell enzyme was immobilized by entrapping it in the polyacrylamide gel lattices. The polymer used in the enzyme entrapment was made from 150 mg per ml of acrylamide monomer and 8 mg per ml of N, N'-methylenebisacrylamide. About 200 mg/whole cell enzyme was mixed in the polymer for entrapment. The maximal activity retention after immobilization was 56%. The optimal pH values for the whole cell enzyme and the immobilized whole cell enzyme were 6.0 and 5.9, respectively. The optimal temperature for the enzyme activity were the same for both type of preparations. The enzyme stabilities against pH and heat increased for immobilized whole cell enzyme. Immobilized cell was more stable especially in the acidic condition while both type were found to be very suceptible to thermal inactivation at a temperature above 4.deg.C. The kinetic constants obtained from Lineweaver-Burk plot based on two substate reaction mechanism showed somewhat higher value for immobilized whole cell enzyme as compared to the whole cell enzyme : the Km value for 6-APA were 7.0 mM and 12.5 mM while Km values for phenylglycine methyl ester were 4.5 mM and 8.2 mM, respectively. Using the immobilized whole cell enzyme packed in a column reactor, the productivity of ampiciline was studied by varying the flow rate of substrate solution. At the space velocity, SV, 0.14 hr$^{-1}$ the conversion was 45%. Operational stability found in terms of half life was 30 hr at SV = 0.2 hr.
A protease, which had no tryptic and chymotryptic activity, was purified from the hepatopancreas of shrimp, P. japonicus, through ammonium sulfate fractionation, QSepharose ionic exchange, benzamidine Sepharose 6B affinity, and Sephacryl S-100 gel chromatography. Molecular weight (M.W.) of the protease was estimated to be 24 kDa by gel filtration and showed a single peptide band by sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The protease had a low ratio of acidic to basic amino acids, which is different with pro teases from marine animals. The enzyme was partially inhibited by benzamidine, tosyl-L-lysine chioromethyl ketone (TLCK), phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), soybean trypsin inhibitor (SBTI), and pepstatin. The enzyme did not have any activity against benzoyl-D,L-arginine p-nitroanilide (BAPNA) or benzoyl-L-tyrosine ethyl ester (BTEE) which is a specific substrate of trypsin and chymotrypsin, respectively. However, the enzyme showed activity forward N-CBZ-L-tyrosine p-nitrophenyl ester (CBZ-Tyr-pNE), NCBZ-L-tryptophan p-nitrophenyl ester (CBZ-Trp-pNE), and N-CBZ-L-proline p-nitrophenyl ester (CBZ-Pro-pNE). The protease did not showed tryptic and chymotryptic activity, which was not reported in shrimp hepatopancreas.
Porphyromonas endodontalis(P. endodontalis) is one of the important causative bacteria of pulpal and periapical disease. P. endodontalis has lipopolysaccharide(LPS) and it plays a major role in stimulating the synthesis and release of cytokines from immune cells and prostaglandin $E_2$ from host cells. The purpose of this study is to prepare LPS from P. endodontalis and to evaluate the effect of LPS on membrane permeability of fibroblast. P. endodontalis ATCC 35406 was cultured in anaerobic condition, and LPS was extracted. LPS was confirmed by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. Human periodontal ligament cell, colon fibroblast(CCD-18Co, KCLB 21459) and skin fibroblast(Detroit 551, KCLB 10110) were perfused with 0.01% P. endodontalis LPS solution, high concentration of $K^+$ solution and $Ca^{2+}$-free solution, $Ca^{2+}$ concentration ratio was measured by microfluorometry. 1. Intracellular $Ca^{2+}$ concentration was not changed in human periodontal fibroblast and skin fibroblast(Detroit 551) stimulated by P. endodontalis LPS. 2. Intracellular $Ca^{2+}$ concentration was increased in colon fibroblast(CCD-18Co) stimulated by P. endodontalis LPS. 3. Colon fibroblast(CCD-18Co) has voltage dependent $Ca^{2+}$ channel activated by high concentration of $K^+$ solution. 4. P. endodontalis LPS has no effect on the increase of intracellular $Ca^{2+}$ concentration during perfusion of $Ca^{2+}$-free solution.
In 1992, Prevotella intermedia was shown to be comprised of another spoecies now known as Prevotella nigrescens. Strain ATCC 33563 is now designated the type strain of P. nigrescens while strain ATCC 25611 is remains the type strain of P. intermedia. The purpose of this study was to find the differences in protein profiles of P. intermedia and P. nigrescens, using sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis, which can be used for differentiation of those two species. A partial amino acid sequence of the 18.6 kDa protein band, which was specific in P. nigrescens, was also determined. The cellular proteins were extracted from the cell pellets of pure cultures of P. intermedia. and P. nigrescens by either sonication or being shaken continuously for 20 min at $21^{\circ}C$ with 1 % SDS or being boiled for 3 min with 1 % SDS. SDS-PAGE was performed according to the method of laemmli using either 12% (w/v) gels or 18% (w/v) gels. Results were as follows ; 1. The similar electrophoretic protein profiles were shown by 3 cellular protein extraction methods for each strain. (Fig. 1 and 2) 2. the 18.6 kDa band which was specific only in P. nigrescens could be used for the differentiation of P. intermedia. and P. nigrescens. (Fig. 1 and 2, Table 1) 3. A total of 4 different tryptic fragments from the 18.6 kDa protein were sequenced. the resulting amino acid sequences were fragment 1.GNPVNIGGEW, 2.FNVVR, 3.NYLT-VAPY, and 4.GGDNVTTYQVLPEIGYN. By comparison to the sequences of known proteins in the Swiss-Prot database and PIR database. 90 % matching between fragment 1 and serine hydroxymethyl transferase(P24060) in the Swiss-Prot, and 90% matching between fragment 1 and glycine hydroxymethyl transferase(S15203) in the PIR were shown, but the identity and function of the 18.6 kDa protein remains unknown.
Peroxidase banding patterns were obtained by disc electrophoresis of leaf extractions from flowering plants, R. mucronulatum, R. yedoense var. poukhanese, and R. schlippenbachii. A total of 21 peroxidase isoenzymes were resolved from these species, R. mucronulatum, P. yedoense var. poukhanese, and R. schlippenbachii. Five identical peroxidase isoenzymes were resolved in R. yedoense var. poukhanese and R. schlippenbachii. It means that there is a close relationships between two species. The peroxidase banding patterns of all three Rhododendron species were not correlated with each other on percentage total density of each band. The correlation coefficients for peroxidase band densities compared with leaf areas and leaf width/length ratios of Rhododendron plants were not significant at the 5% level. Wide variation was observed in R. yedoense var. poukhanese and R. schlippenbachii compared with R. mucronulatum.
Monoclonal antibodies (MAbs) reacting with the plasmalemma of Amoeba proteus were produced. Specificity of the 3 MAbs was determined by transfer blotting of the SDS polvacryfamide gel. AMS antibody reacted with the mucopolysaccharide bands of the spacer gel, 220 KD and 50 KD proteins of the resolving gel. The maior glycoprotein bands (175 KD, 165 KD) and 50 KD protein of the plasmalemma were recognized by AUG antibody. A third, AMP antibody reacted with the 50 KD protein only. In immunofluorescence microscopy of the enzyme treated cells, the antigens of these MAbs were sensitive to proteases, but not sensitive to neuraminidase. In the assay of cell to substratum attachment after binding with the antibody, AMG and AMP antibodies exerted no effect, but AMS hindered the attachment and cell spreading. Thus the effective components of the plasmalemma in cell to substratum attachment appear to be the mucopolysaccharides and 220 KD protein. The membranes of latex particle infested phagosomes did not show any distinction from the plasmalemma in fluorescence microscopy. Phagosome membranes of amoebae appear to be derived from the plasma membrane without selection in terms of the antigen composition. Amoeba Proteus의 세포막과 반응하는 단세포군 항체를 생산하였다. SDS polyacrylamide gel을 transfer blotting하여 이들 항체의 반응 특이성을 조사해 본 결과 AMS 단항체는 PAS로 염색되는 spacer gel의 mucopolysaccharide 린드, resolving gel의 220 KD 및 50 KD 단백질과 반응하였으며, 세포막의 주요 당단백질인 175 KD 및 165 KD 빈드와 50 KD 단백질은 AMG 단항체에 의해서 인지되었다. 그리고 AMP단항체는 공통인 50 KD 단백질과 특이하게 반응하였다. 효소처리한 아메바의 면역형광칠미경적 조사에서 이들 항체에 대한 항원분자들은 모두 단백질분해효소에 민감하였으며 neuraminidase에 대해서는 변화가 없었다. 이들 항체를 결합시킨 아메바의 용기표면 부착 가능성을 분석한 결과 AMP 및 AMG 단항체는 아무런 영향을 미치지 못하였으며 AMS 단항체는 세포의 용기표면 부착 및 세포의 펴짐을 저해하였다. 따라서 아메바의 용기표면 부착은 mucopolysaccharide 및 220 KD 단백질에 의해서 매게되는 것으로 나타났다. 그리고 latex particle을 담고 있는 식포막은 면역형광형미경적 조사에서 세포막과 차이가 없었다. 따라서 겐포막은 항원 조성에 있어서 비 선택적으로 세포막에서 유도되는 것으로 나타났다.
A cytoplasmic endoprotease, named protease Ci, has been partially purified by classical chromatographic procedures. This enzyme degrades insulin, glucagon and bovine growth hormone to trichloroacetic acid-soluble materials, but shows little or no hydrolysis of bovine serum albumin, casein or globin. It has a molecular weight of about 120,000 as determined by gel filtration on Sephadex G200, and it appears to be consisted of two identical subunits having molecular weight of 54,000 when estimated by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate. Protease Ci has an optimum pH of 7.5, and has an isoelectric point of 5.5. This enzyme is a metalloprotease, since it is inhibited by o-phenanthroline and can be activated by the addition of divalent metal cations, such as $Mn^++$ and $Co^++$. Protease ci is inhibited by p-hydroxymercuribenzoic acid, but not by either of leupeptin or Ep475 which are specific inhibitors of sulfhydryl protease. It is distinct from protease Pi, a perplasmic insulin degrading enzyme, since protease Ci is localized to the cytoplasm. The physiological function of protease Ci is presently unknown.
배의 발생과 분화에 따른 혈청 alpha-fetoprotein (AFP)의 생리적 기능 규명을 위한 기초실험의 일환으로, 모체와는 완전히 독립된 상태에서 발생과 분화가 이루어지는 계배의 혈청을 재료로 하여 CM-Sephadex C-50, hydroxyapatite 및 DEAE-Sepharose A-25등의 크로마토그라피 방법에 의해 닭 혈청 AFP를 분리하였다. 계 AFP는 분자량이 약 60 Kd로 사람 및 다른 포유동물 AFP의 분자량 (64-74 Kd)보다 작았다. 닭 AFP, 계배혈청 및 닭 혈청 등을 토끼에 면역하여 항체를 제조하였고, 이를 이용하여 닭의 배발생 단계에 따른 혈청 AFP 함량의 변화를 전기영동 및 면역학적 방법으로 정성 및 정량 분석을 실시하였다. 혈청 AFP 함량은 발생 7일-배 (AFP 농도 : 0.81 mg/ml)부터 점차 증가하여 13일-배에서 최고치인 2.46 mgfml로 나타났으며 그 이후 급격히 감소되어 부화 직후에는 매우 낮은 농도 (0.22mg/ml)였고 부화 4일에 거의 없어 졌으며, 이와 같은 AFP 함량의 변화는 혈청 알부민 함량의 변화와 거의 반비례 함을 알았다. For the preliminary step to investigate the site of AFP synthesis, the ontogenic characteristics and the physiological function of AFP, alpha-fetoprotein was isolated from chick embryo serum through the procedures of CM-Sephadex C-50, hvdroxvapatite and DEAE-Sephadex A-50 chro-matography. The isolated AFP was proved to be pure and its molecular weight was found to be about 60 Kd. With this purified AFP, rabbit anti-chick hor was produced. The serum AFP level in chick embryo has been investagated by using polyacrylamide gel electrophoresis, immunoelec-trophoresis and single radial immunodiffusion from 7 days of incubation until 4 days after hatch-ing. It was found that the AFP level is increased from 0.81 mg/ml at daw-7 embryo to maximum value of 2.46 mg/ml at day-13 embryo, followed by rapid decreases until hatching.
Kim, Hee-Jung;Moon, Ja-Young;Lee, John-Hwa;Park, Kie-In
Korean Journal of Veterinary Service
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v.30
no.3
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pp.291-304
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2007
Mutants of an obligate aerobic bacterium, Vitreoscilla, that have deficiency in heat-labile catalase-peroxidase hydroperoxidase I (HPI) were created by EMS treatment. The catalase-peroxidase HPI-deficient mutant showed substantially lower peroxidase activity in exponential and mid-stationary phase compared with the wild type strain. In late stationary phase, the mutant exhibited no peroxidase activity. Peroxidase deficiency in the mutant was revealed by polyacrylamide gels stained for peroxidase activity. Characteristically, catalase levels in the mutant increased about 14- and 8-fold during growth in the exponential and stationary phases, respectively, compared to those in the wild type, suggesting a compensatory effect for protection from $H_2O_2$ toxicity. The mutant showed differences in physiology from the wild type: retardation in growth rate and decrease in oxygen consumption. Both the wild type and the catalase-peroxidase HPI-deficient mutant of Vitreoscilla had lower growth rates in media containing increasing $H_2O_2$ concentrations. However, the mutant exhibited an additionally decreased growth rate after 6 to 8 h of growth compared to the wild type. The wild type was resistent up to 20 mM $H_2O_2$, whereas the mutant was very sensitive to high concentrations of exogenous $H_2O_2$. Although elevated catalase levels would provide protection of the bacteria from the deleterious effect of $H_2O_2$, it did not appear to be complete. Cell-free extracts of the mutant showed decreased NADH oxidation rates and higher accumulation of $H_2O_2$ during this oxidation. These results may account for the impaired growth and earlier onset of death phase by the catalase-peroxidase HPI-deficient mutant of Vitreoscilla.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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