Commonly, the flocculant is dissolved in process or recycle water in industrial plant which has many ionic materials. Therefore, the polymer degradation in aqueous solution by chemical, mechanical or bacteriological may occur, sometimes rapidly. Even if the same flocculant is dissolved, the flocculation characteristics and the properties of dissolving polymer varied with the kind of dissolving water. In this study, we try to estimate the interaction between flocculants and ionic materials in dissolving water using self inversing emulsion polymer; polyacrylamide-co-trimethyl ammonium ethyl acrylate chloride flocculants which have varying molecular weights and structures at a several conditions. The polymeric flocculant is dissolved in artificial dissolving water with Potassium Chloride (PC), Calcium Chloride anhydrous (CC), Potassium Hydroxide (PH), Sodium Chloride (SC), Sodium Bromate (SB) and Iron (II) Sulfate Heptahydrate (IS) as ionic sources. Experimental results indicate that the cationic and anionic ions in dissolving water induce the hydrolysis, degradation of cationic functional group and uncoiling of polymeric flocculants, therefore, the flocculation efficiency decreased by undesired polymer. According that result, it is important to estimate not only its structures and physical properties but also the qualities of dissolving water to optimize the efficiency.
Chitinase was induced in rice cell suspension culture with treatment of chitooligosaccharides mixture. Among eleven isozymes found in 10% polysacrylamide gel electropherogram, four isozymes were identified as induced enzymes. Acidic chitinase fraction separated in DEAE-cellulose column chromatography, includes three induced chitinase, while basic fraction contains only one induced isozyme. Treatment of chitooligosaccharides mixture enhanced the contents in both protein and chitinase activity in cell suspension culture media, but increase in chitinase activity was much higher than in protein.
Glucose oxidase from A. niger was entrapped in polyacrylamide gel which was used in the enzyme electrode for glucose analysis. The electrode was assembled by placing the gel between the membranes on the surface of a Clark type electrode. In order to make it possible to analyze the experimental results later, the stagnation flow was adopted wheree the governing fluid mechanics were well known. The current increased with the increase concentration in the bulk below a certain level of glucose concentration beyond which no more current increase was observed. This is probably due to the diffusion limitation of oxygen from the bulk solution. Also the current increased witll the enzyme loading in the gel, but the linearity between the current and the glucose concentration was rather limited to a narrow range. Flow rate was found to be very important, which means that film diffusion is very important under the flow rate of 5cm/sec. As a conclusion, enzyme loading, gel layer thickness, stirring speed and bulk concentration of glucose were found to be most improtant parameters in yielding a linar current reponse with respect to the bulk glucose concentration.
Ha Chul-Gyu;Cho Jin-Kook;Chai Young-Gyu;Ha Young-Ae;Shin Shang-Hun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.7
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pp.1047-1052
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2006
A bile salt hydrolase (BSH) was purified from Lactobacillus plantarum CK 102 and its enzymatic properties were characterized. This enzyme was successfully purified using ion-exchange chromatography with Q-Excellose and hydrophobic interaction chromatography with Butyl-Excellose. The purified enzyme showed a single protein band of 37 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, which was similar to the molecular weight of known BSHs. The amino acid sequence of GLGLPGDLSSMSR, determined by MALDI-TOF, was identical to that of BSH of L. plantarum WCFS1. Although this BSH hydrolyzed all of the six major human bile salts, glycine-conjugated bile acid was the best substrate, based on its specificity and $K_{m}$ value. Among the various substrates, the purified enzyme maximally hydrolyzed glycocholate with apparent $K_{m}$ and $V_{max}$ values of 0.5 mM and 94 nmol/min/mg, respectively. The optimal pH of the enzyme ranged from 5.8 to 6.3. This enzyme was strongly inhibited by thiol enzyme inhibitors such as iodoacetate and periodic acid.
Bacillus subtilis YL-1004 was isolated from soil for the development of agents to control dental caries. This strain produced an extracellular lytic enzyme that hydrolyzed the Streptococcus mutans cell wall. The lytic enzyme was purified to homogeneity by affinity chromatography and gel permeation chromatography to give a single band on SDS-PAGE and non-denaturing polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight of the enzyme was deduced from SDS-PAGE and gel chromatography to be 38 kDa and the PI to be 4.3 from isoelectric focusing. Sirty $\%$ of its lytic activity remained after incubation at $50^{\circ}C$ for 30 min, and its optimal temperature was $37^{\circ}C$ . The enzyme showed its highest activity at pH 8.0 and was stable at pHs ranging from 4.0 to 9.0. Treatment with several modifiers showed that a cysteine residue was involved in the active site of the enzyme. This lytic enzyme from Bacillus subtilis YL-1004 exhibited specificity towards Streptococci and also showed autolytic activity on Bacillus subtilis YL-1004.
The D-xylose operon in Escherichia coli is known to be regulated by a transcriptional activator protein, XyIR, which is responsible for the expression of both xylAB and xylFGH gene clusters. The XyIR was purified to homogeneity by using the maltose binding protein fusion expression and purification systems involving two chromatography steps. The purified XyIR protein was composed of two subunits of 45 kDa, which was determined by both sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis and gel filtration. The purified XyIR was specifically bounded to the xylA promoter, regardless of adding xylose to the reaction mixture, but binding of XylR was specifically bounded to the xylA promoter, regardless of adding xylose to the reaction mixture, but binding of XylR to the xylA promoter was enhanced by adding xylose. The enhanced binding ability of XyIR in the presence of xylose was not diminished by adding glucose. The presumed XyIR binding site is located between 120 bp to 100 bp upstream the xylA initiation codon.
The recombinant alanine dehydrogenase (ADH) from E. coli containing Thermus caldophilus ADH was purified to homogeneity from a cell-free extract. The enzyme was purified 38-fold with a yield of 68% from the starting cell-free extract. The purified enzyme gave a single band in polyacrylamide gel electrophoresis, and its molecular weight was estimated to be 45 kDa. The pH optimum was 8.0 for reductive amination of pyruvate and 12.0 for oxidative deamination of L-alanine. The enzyme was stable up to $70^{\circ}C$. The activity of the enzyme was inhibited by 1 mM $Zn^{2+}$, 20% hexane, and 20% $CHCl_3$. However, 10 mM $Mg^{2+}$ and 40% propanol had no effect on the enzyme activity. The Michaelis constants ($K_m$) for the substrates were $50\;\mu\textrm{M}$ for NADH, 0.2 mM for pyruvate, 39.4 mM for $NH_4+$, 2.6 mM for L-alanine, and 1.8 mM for $NAD^+$.
A bacterial strain inhibiting the growth of Vibrio anguillarum, the causative agent of vibriosis, was isolated from fish intestines. The isolated strain HS36 was identified as Aerococcus urinaeequi based on the characteristics of the genus according to Bergey's Manual of Systematic Bacteriology and by 16S rRNA sequencing. The growth rate and antibacterial activity of strain HS36 in shaking culture were higher than those in static culture, while the optimal pH and temperature for antibacterial activity were 7.0 and 30℃, respectively. The active antibacterial substance was purified from a culture broth of A. urinaeequi HS36 by Sephadex G-75 gel chromatography, Sephadex G-25 gel chromatography, and reverse-phase high-performance liquid chromatography. Its molecular weight, as estimated by Tricine SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, was approximately 1,000 Da. The antibacterial substance produced by strain HS36 was stable after incubation for 1 h at 100℃. Although its antibacterial activity was optimal at pH 6-8, activity was retained at a pH range from 2 to 11. The purified antibacterial substance was inactivated by proteinase K, papain, and β-amylase treatment. The newly purified antibacterial substance, classified as a class II bacteriocin, inhibited the growth of Klebsiella pneumoniae, Salmonella enterica, and Vibrio alginolyticus.
The major protein (GMP) from the roots of Panax ginseng C. A. Meyer was purified, using gel filtration and ion exchange chromatography followed by reversed-phase and ion exchange FPLC. Staining analysis indicated that the protein has a carbohydrate moiety, which was also shown by band shift experiments using various glycosidases. Electrophoretic and gel permeation studies showed that GMP has an apparent molecular weight of 63 kDa composed of possibly two subunits of 25 kDa containing carbohydrate moiety. GMP showed an anticomplementary activity on the hemolysis of red blood cells, which is a screening tool for inflammation mediator search.
Extracellular protein produced by Bacillus sp. $T_2-3$ was characterized for its patterns of sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and sephadex G-100 filtration, spectrum of maximum absorption, composition of amino acid and solubility to solvents. The extracellular protein was composed of two kinds of protein which was little difference in molecular weight about 49,000. Maximum absorbance of the extracellular protein was showed at 230nm and main amino acids of the extracellular protein were aspartic acid, glutamic acid and alanine. Solubility of the extracellular protein was 55.8% in $H_2O$ and 28.4% in 0.4% NaOH.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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