By using a T7 expression system, a large amount of Bacillus stearothermophilus endo-xylanase A (XynA) could be produced in Escherichia coli cells. The overproduced enzyme formed inclusion bodies, and so the protein could be more easily purified to homogeneity. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 22 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and 43 kDa by Sephacryl S-200 gel filtration, suggesting that the native enzyme was a homodimer. The pI value was determined to be 8.4. The Michaelis constants for birchwood xylan and oat spelts xylan were calculated to be 3.83 mg/ml and 5.03 mg/ml, respectively, and the $V_{max}$ max/ values for both xylans were 2.86 $\mu mole$/min. The purified enzyme was most active at $55^{\circ}C$ and pH 8.0, and stable up to $60^{\circ}C$ and in the near neutral pH range. From the zymogram, Bacillus stearothermophilus was found to have at least three xylanases and the purified one was the smallest among them.
GTP cyclohydrolase I catalyzing the first reaction in the biosynthesis of pterin moiety of folic acid in bacteria, was purified from Streptomyces tubercidicus by at least 203-fold with a yield of 32% to apparent homogeneity, using ammonium sulfate fractionation, DEAE-cellulose, Sepharose CL-6B, and hydroxylapatite column chromatography. The molecular weight of the native enzyme was estimated to be 230,000 daltons by gel permeation chromatography. The purified enzyme gave a single band on sodium dodesyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and its molecular weight was apparently 58,000 daltons. These results indicate that the enzyme consists of four subunits with the same molecular weight. The $K_m$ and $V_{max}$ values for GTP of the purified enzyme were determined to be 80${\mu}$M and 90nmol/min (mg protein), respectively. The optimum pH and temperature for the enzyme reaction were pH 7.5-8.5 and $40-42^{\circ}C$, respectively. Coenzyme or metal ion was not required for the enzyme activity. The enzyme activity was inhibited by most divalent cations, while it was slightly activated by potassium ion. In case of nucleotides, CTP, GMP, GDP, and UTP inhibited enzyme activity, among which GDP exhibited the strongest inhibitory effect.
The purification system of glucoamylase (glucan 1,4-${\alpha}$-glucosidase, EC 3. 2. 1. 3), some characteristics of the purified enzyme and hydrolysis rate of various raw starch were investigated through several experiments. The enzyme was produced on a solid, uncooked wheat bran medium of Aspergillus oryzae NR 3-6 isolated from traditional Korean Nuruk. The enzyme was homogeneously purified 6.8-fold with an overall yield of 28.3% by the criteria of disc- and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was estimated to be 48 kDa by SDS-PAGE. The optimum temperature and pH were 55$^{\circ}C$ and 4.0, respectively. The enzyme was stable at a pH range of 3.0∼10.0 and below 45$^{\circ}C$. Enzyme activity was inhibited about 27% by 1mM Hg2+. The hydrolysis rate of raw wheat starch was shown to be 17.5-fold faster than the hydrolysis rate of soluble starch. The purified enzyme was identified as glucoamylase because the product of soluble starch by the purified enzyme was mainly glucose by thin layer chromatography.
An antimicrobially active bacterium which was identified as Bacillus brevis, was isolated from kimchi. The antimicrobial activity was found against various Gram-positive and Gram-negative bacteria including some pathogens food-spoilage microorganisms, and some yeast strains. The antimicrobial activity was especially strong against Bacillus anthracis and Shigella dysenteriae. The strong activity was observed during an early stationary phase in the culture when incubated at $37^{\circ}C$ with initial medium pH of 6.8. The antimicrobial activity was found to be stable at $90^{\circ}C$ for 30 min and in the pH range of 3-11, and it was insensitive to organic solvents including acetone, acetonitrile, ethanol, and methanol. Analysis of the bacterocin on tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel suggested a molecular mass of approximately 4.5-6.0 kDa. The antimicrobial substance was characterized as a bacteriocin, because of its proteinaceous nature and low molecular weight. The bacteriocin could potentially be used as a food preservative, because of its thermostable property and broad antimicrobial spectrum.
The terminal regions of the double-stranded RNA (dsRNA) genome segments of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) DRT strain were sequenced. The dsRNAs, which were $^{32}P$-labelled at their 3'-termini by incubation with [$^{32}P$]pCp and T4 RNA ligase, were separated by 5$%$ polyacrylamide gel electrophoresis, and the segments A and B of IPNV-DRT were sequenced by two-dimensional gel electrophoresis. The 5'-terminal sequences of the IPNV-DRT plus strand from two genome segments were found to have the same conserved nucleotide (5'-CGG(C/A)A-), but the 3'-terminal sequences -CCCCAGGCG-3' and -CGGACCCCG-3' were found in the plus strand from segments A and B, respectively. The inverted oligonucleotide sequences of 3'-terminal of between segments A and B were found and they differ from those of other IPNVs.
The basic and optimum conditions for the extraction of peroxidase from Chinese cabbage root applying the reverse micelle system were investigated. In order to purify Peroxidase (POX) from crude extract of Chinese cabbage roots, isooctane containing 110 mM Aerosol OT (AOT) was well mixed with the same volume of crude extracts containing 50 mM NaCl and 30 mM Tris-HCI buffer of pH 8.0. After centrifugation, AOT reverse micelle containing the isooctane phase were mixed with 80 mM Tris-HCI buffer at pH 7.0 containing 1 M KCl. From these operations, POX was purified 20-fold with a 60% yield. For further purification, DEAE-Toyopearl column chromatography was applied, and it showed a single protein band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The resulting POX showed 93-fold purification with a 40% yield.
A thennostable chitosanase was purified from Bacillus sp. KFB-C108, by fractionation of 30 to 70% saturation with ammonium sulfate, DEAE-Toyopearl chromatography, Butyl-Toyopearl chromatography, and TSK-Gel HW-55F gel filtration. The purified enzyme showed a single band on sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis, and the molecular weight was estimated to be 48 kDa. The enzyme degraded soluble chitosan and colloidal chitosan, but did not degrade glycol chitosan, chitin, and the other compounds investigated. There was no effect on the chitosanase activity by treatment with chelating agents, alkylating agents, and various metals investigated, and only cobalt ions inhibited the activity. Optimum temperature and pH were $55^{\circ}C$ and 6.5, respectively. The enzyme was stable after heat treatment at $80^{\circ}C$ for 10 min or $70^{\circ}C$ for 30 min and fairly stable in several organic solvents as well. Chitosan was hydrolyzed to $(GlcN)_4$as a major product by incubation with the enzyme.
The human liver cDNA clone UDPGTh2, encoding a liver UDP-glucuronosyltransferase (UDPGT) was isolated from a .gamma. gt 11 cDNA library by hybridization to mouse transferase cDNA clone, UDPGTm1. UDPGTh2 encoded a 529 amino acid protein with an amino terminus membrane-insertion signal peptide and a carboxyl terminus membrane-spanning region. There were three potential asparagine-linked glycosylation sites at residues 67, 68, and 315. In order to obtain UDPGTh2 protein encoded from cloned human liver UDP-glucuronosyltransferase cDNA, the clone was inserted into the pSVL vector (pUDPGTh2) and expressed in COS 1 cells. The presence of a transferase with Mr-52,000 in transfected cells cultured in the presence of $[^{35}S]$ methionine was shown by immunocomplexed products with goat antimouse transferase IgG and protein A-Sepharose and analysis by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and autoradiography. The expressed UDPGT was a glycoprotein as indicated by electrophoretic mobility shift in Mr-3,000-4,000 when expressed in the presence of tunicamycin. The extent of glycosylation was difficult to assess, although one could assume that glycosyl structures incorporated at the level of endoplasmic reticulum were always the core oligosaccharides. Thus, it is likely that at least two moieties inserted can account for the shift of Mr-3,000-4,000. This study demonstrates the cDNA and deduced amino acid sequence of human liver UDP-glucuronosyltransferase cDNA, UDPGTh2.
The purpose of this study was to analyze myosin heavy chain (MHC) isoforms in bovine longissimus thoracis (LT) muscle by liquid chromatography (LC) and mass spectrometry (MS). LT muscles taken from Hanwoo (Korean native cattle) steer (n=3) used to separate myosin bands by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. The peptide queries were obtained from the myosin bands by LC-MS/MS analysis following in-gel digestion with trypsin. A total of 33 and 43 queries were identified as common and unique peptides, respectively, of MHC isoforms (individual ions scores >43 indicate identity or extensive homology, p<0.05). MHC-1 (IIx), -2 (IIa), -4 (IIb), and -7 (slow/I) were identified based on the Mowse score (5118, 3951, 2526, and 2541 for MHC-1, -2, -4, and -7, respectively). However, more analysis is needed to confirm the expression of MHC-4 in bovine LT muscle because any query identified as a unique peptide of MHC-4 was not found. The queries that were identified as unique peptides could be used as peptide markers to confirm MHC-1 (14 queries), -2 (8 queries), and -7 (21 queries) in bovine LT muscle; no query identified as a unique peptide of MHC-4 was found. LC-MS/MS analysis is a useful approach to study MHC isoforms at the protein level.
Methacryloxypropyltrimethoxysilane (MPTMS) was used for the surface modification of silica nanoparticles in the toluene dispersion system for 8 h (MPSN). Then, methacryloxypropyl-modified silica nanoparticles were successfully prepared by solutioun polymerization in the ethanol solution at $60^{\circ}C$ for 14 h with adding AIBN initiator. The modification of ultra-fine particles (SiOx-PAA nanospheres) was investigated via EA, XPS, FTIR, TGA, SEM and TEM. The mean diameter of the bare silica nanoparticles, MPSN and SiOx-PAA monodisperse nanoparticles was about 25, 30 and 35 nm, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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