The baculovirus/Sf9 cell expression can be employed as a powerful system for producing large amounts of the human erythrocyte glucose transporter, GLUT1 heterologously In order to exploit the system further, it is necessary to develop a convenient method for demonstrating that the transporter expressed in insect cells is biologically active. To achieve this, we have expressed the human CLUT1 in insect cells and photolabelled the expressed protein with [$^3$H] cytochalasin B, a potent inhibitor of the human erythrocyte glucose transporter. Subsequently, the labelled proteins were analysed by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). Membranes labelled with [$^3$H] cytochalasln B in the presence of L-Glucose yielded a single sharp peak of labelling of apparent $M_r$ 45,000 on SDS/polyacrylamide gels. The mobility of this peak corresponded exactly to that of the band detected by anti-glucose transporter antibodies on Western blots of membranes prepared from insect cells infected with recombinant virus. In addition, the sharpness of the radioactive peak provides further evidence for the conclusion that the expressed protein is much less heavily and heterogeneously glycosylated than its erythrocyte counterpart. No peak of labelling was seen with the membranes prepared from non-infected Sf9 cells. Furthermore, the incorporation of label into this peak was completely inhibited by the presence of 500 mM-D-Glucose during tile photolabelling procedure, showing the stereoselectivity of the labelling. These evidences clearly show that human glucose transporter expressed in insect cells exhibits native-like biological activity, and that photolabelling with [$^3$H] cytochalasin B can be a convenient means for analysing the biological activity of the transport protein expressed in insect cells.
사람 선유아세포 인터페론의 정제에 사용되는 단 clone성 항체생산 세포주를 조작하기 위하여 BA-LB/C mouse의 복강과 꼬리정맥을 통하여 HuIFN-$\beta$를 면역화시키고 그 비장세포(spleen cells) 와 NS-O 세포주를 세포융합 시켰다. 융합된 1300 hybrids를 ELISA방법으로 선별하고 soft agarose 방법과 limiting dilution방법으로 subcloning하여 높은 항체를 생성하는 것으로 판명된 11 hybrids를 재선별 하였다. 재선별된 11 hybrids 각각의 항체형 (Ig type)을 조사하고 최종 Protein A-sepharose와 친화성이 높은 IgG 2a/형의 clone # 4-1-19와 clone # 551-4-1을 선별하여 배양된 세포를 각각 nude(nu/nu) mouse 및 BALB/c mouse 복강에 접종배양 하였다. 이들 mouse복강액으로 부터 얻은 ascites fluid를 protein A-sepharose를 이용한 affinity column분획으로 항체를 정제하였으며 ascites fluid $m{\ell}$당 약 4mg의 정제된 항체를 얻을 수 있었고 SDS-polyacrylamide gel상에서 전기영동 시킨 결과 분자량 14-16만 dalton으로 추정되는 항체를 확인할 수 있었다.
모기에 독성을 보이는 cry11Aa 유전자를 발현시키기 위해 cyanobacteria와 E. coli에서 발현 될 수 있는 두 가지 상이한 벡터 (pCYASK5-1, pCYASK5-2)를 제작하였다. 구축한 두 벡터를 E. coli에 형질전환하여 cry11Aa 유전자의 발현을 SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE)와 Western blot analysis을 통해 조사한 결과, pCYASK5-1와 pCYASK5-2으로 형질전환된 E. coli는 각각 72kDa과 64kDa 크기의 cry11Aa 유전자를 발현하였다. 형질전환체의 모기살충성을 조사한 결과, pCYASK5-1과 pCYASK5-2을 가지는 형질전환체는 빨간집 모기유충(Culex pipiens)에 대해 각각 93%, 89%의 치사율을 보였다.
한국재래간장으로부터 혈전용해효소를 강하게 생산하는 균주를 선발하고 이를 Bacillus subtilis K7로 동정하였다. B. subtilis K7이 생산하는 혈전용해성 protease를 정제하여 분자량을 확인한 결과 21,500 Da이었다. 정제된 효소의 최적반응조건은 $40^{\circ}C$와 pH 9.0이었으며 pH 5.0라서 12.0까지 안정하고 $50^{\circ}C$에서 20분간 열처리한 후에도 50%이상의 효소활성을 가지며 EDTA, CDTA 및 iodoacetat에 실활하는 효소이었다. 이 효소의 fibrin에 대한 Km 값은 $1.8{\times}10^{-2}$ M이었다.
We examined the purity of six heparin samples by using heparinase, chondroitinase, $^{1}H-NMR$, and polyacrylamide gel electrophoresis. To obtain high molecular weight contaminants from heparin samples, heparinase I - digested samples were subjected to the exhaustive microcon filtration. The filtration process removed heparin-derived di- and oligosaccharides effectively. By combining chondroitinase ABC treatment and strong anion exchange - high performance liquid chromatography, the result showed all six samples contained chondroitin sulfate as a contaminant ranging from 1.3 to 14.9%. Among them, sample S3 showed the highest content of 14.9%, which was further analyzed by chondroitinase AC treatment to confirm chondroitin sulfate B (dermatan sulfate). $^{1}H-NMR$ chemical shifts of N-acetyl groups clearly suggested the existence of chondroitin sulfate B (sample S3) and oversulfated chondroitin sulfate (samples S2 and S4) as contaminants. In addition, polyacrylamide gel electrophoresis was useful for qualitative detection on the sample's purity. These results suggest that the tools of heparinase I and chondroitinase ABC in combination with NMR spectroscopy would give very useful information for investigation of heparin contaminants such as oversulfated chondroitin sulfate and dermatan sulfate in heparin samples.
2005년 전북 고참에서 채집한 옥수수 이병주로부터 벼검은줄오갈병 바이러스를 동정하였다. 이들 이병주로부터 게놈 dsRNA를 추출하여 polyacrylamide gel 전기영동으로 게놈 패턴을 분석 하였다. 전기영동 결과 이미 알려진 10개의 분절게놈을 확인하였으며 채집지역별 isolate에서 게놈 dsRNA이동도의 차이를 확인하였다. 추출된 dsRNA를 주형으로 하여 S10의 full-length 특이 primer를 사용하여 RT-PCR한 결과 1,801의 예상되는 band를 확인하여 RBSDV로 동정하였다. S10을 pGEM-T vector에 크로닝하여 염기서열 분석 결과 1,801nt, 559aa로 구성되어 있었다. 이는 벼에 발생하는 RBSDV S10의 크기와 동일하였으며 상동성 분석결과 18개 염기에서 변이가 확인되어 99%의 상동성을 나타내었다.
파리지옥풀 first trap leaf에만 발현하는 유전자군을 탐색하기 위하여 기내배양 식물체와 포충능력을 가진 3년생 실생주을 이용하여 각각의 포충잎 (leaf base), 꽃조직 (flower tissue) 및 포충잎트랩 (first trap leaf)으로부터 분리한 RNA로 Fluorescent differential display (FDD)를 실시하였다. First trap leaf특이발현 유전자 15개를 screening하여 염기서열을 분석하였다. 분리된 DNA들은 protease inhibitor (Pl), myo-inositol-1-phosphate synthase 및 lipocalin-type prostaglandin D syn-thase 유전자들과 매우 유사하였다. 또한 Northern blot분석 결과, 이들 유전자들이 first trap leaf에 특이적으로 발현하고 있는 것을 확인하였다 FDD방법은 세포, 조직 및 기관에 특이적으로 발현하고 있는 유전자들을 선발하는데 매우 유용한 수단으로 사용될 수 있다.
충남 대둔산의 토양으로부터 분리한 점액세균을 ARJ라 명명하고 그 특성을 알아보았다. CT 배지에서 swarming을 하며 성장한 이 균주는 slime을 형성하였고, 액체 및 고체배지 상에서 황록색의 색소를 방출하였으며 swarming 부분을 파장이 366 nm인 자외선으로 조사하였을 때 초록색의 형광을 띄었다. 또한 이 균주는 영양분이 고갈되었을 때 fruiting body를 형성하는 것으로 보아 Myxobacteria라고 생각되었으며 주사전자 현미경 관찰 결과 이 균주가 형성한 fruiting body는 stalk이 없었고 naked myxospore를 가지고 있었다. Myxobacteria의 분류에 있어서 가장 중요한 이러한 형태학적 특성들로 볼때 이 균주는 Myxococcus virescens와 가장 유사한 것으로 밝혀졌다. 한편 이 균주는 특히 gram 양성 세균에 대해 antimicrobial activity가 있는 것으로 나타났는데, 여과한 배양 여액에서도 이렇ㄴ activity가 있었지만 비변성 polyacrylamide 전기영동을 하여 본 결과 이 물질이 단백질은 아닌 것으로 밝혀졌다. 또한 이 배양 여액은 상당한 proteolytic activity가 있었으며 최소한 2개의 proteolytic enzyme이 있는 것으로 비변성 polyacrylamide 전기영동을 통하여 밝혀졌다.
Streptomyces coelicolor A3(2)의 acetyl xylan esterase (AxeA)가 Escherichia coli의 과산화수소 저항성에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. AxeA 발현은 isopropyl-$\beta$-thiogalactoside로 유도되었고 생산된 AxeA는 SDS-polyacrylamide gel electrophoresis방법으로 확인하였다. AxeA 발현에 따른 과산화수소 저항성의 변화를 E. coli의 생장곡선과 생존율을 통하여 조사하였다. AxeA가 발현되지 않으면 모든 처리 농도 (1 mM, 2.5mM, 5mM)에서 균의 사멸이 일어났다. AxeA가 발현되는 조건에서는 5mM을 제외한 과산화수소 1mM와 2.5mM에서 E. coli의 사멸이 저지되었다. 또한 1.5mM의 과산화수소에 대한생존율이 59%에서 74%로 높다졌다. 동시에 E. coli의 최고생장온도에서에 근접한 $45^{\circ}C$에서의 생존율도 증가되는 결과를 얻었다. 그러므로 AxeA 단백질은 산화적 스트레스와 온도스트레스에 대해 교차 저항성을 나타내는 역할을 한다고 결론지었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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