Chromosomal DNA fragments of Bacillus sp. YA-14 isolated from soil as a potent xylan hydrolyzing bacterium, were ligated to a vector plasmid, pBR322, and used to transfer Escherichia coli HB101 cells. The recombinant plasmid pYDC21 was found to enable the transformants to produce xylanase. pYDC21 was found to contain the 3 kb HindIII fragment originated from the Bacillus sp. YA-14 chromosomal DNA by southern hybridization. The optimum temperature and pH for the reaction of xylanse produced by E. coli (pYDC21) were appeared at 50$_7$C and pH 7.0, respectiveiy. the xylanase enzyme was stable between pH 5.0 and 7.0 and maintained stably up to 4$0^{\circ}C$.
The alkaline elastase is an extracellular serine protease of the alkalophilic Bacillus strain Ya-B. To increase the gene copy number and the production level of the alkaline elastase Ya-B, we designed, on the B. subtilis chromosome, a gene amplification of the 10.6 kb repeating unit containing amyE, aleE (alkaline elastase Ya-B gene) and tmrB. The aleE was inserted between amyE and tmrB, and B. subtilis APT119 strain was transformed with this amyE-aleE-tmrB-junction region fragment. As a result, we succeeded in obtaining tunicamycin-resistant (Tm$^{r}$) transformants (Tf-1, Tf-2) in which the designed gene amplification of 10.6 kb occurred in chromosome. The transformants showed high productivity of $\alpha $-amylase and alkaline elastase Ya-B. The copy number of the repeating unit (amyE-aleE-tmrB) was estimated to be 25, but plasmid vector (pUC19) was not integrated. The amplified aleE of chromosome was more stable than that of plasmid in absence of antibiotics.
The primordial germ cells (PGCs) were transfected in vitro and expressed the exogenous RSVLTR/${\beta}G2$ plasmid, suggesting thaI PGC is a possible vector for direct gene transfer into the germ line. Transfection efficiency of cell suspensions containing PGCs was 1.5% by liposome mediated DNA transfection. By microinjection of the transfected PGCs into the host germinal crescent, PGCs migrated via blood vessel to the future gonad and these transfected PGCs resulted in the RSVLTR/${\beta}G2$ expression in the gonad. The results from the seeding of PGCs on the chorioallantoic membrane were insufficient to test the hypothesis that PGCs can penetrate or invade the chorioallantoic membrane for transport via the circulatory system.
The yeast gene HOM3 encodes aspartokinase, which catalyses the first step (aspartate to and from beta-aspartyl phosphate) of common pathway to threonine and methionine. The yeast HOM3 gene expression is known to be regulated by threonine and methionine specific control, and also by general control of amino acid biosynthesis. Isolation and characterization of the HOM3 gene are essential for the molecular genetic study on its regulation of expression. A recombinant plasmid pSC3 (15.5kb, vector YCp50) has been cloned into E. coli HB101 from yeast genomic library through their complementing activity of HOM3 mutation in a yeast recipient strain M34-24B. Organization of the plasmid was characterized by delineation of restriction cleavage sites in the insert fragment.
미꾸라지의 간으로부터 핵을 분리하여, 저농도 염추출 및 제한효소 처리로 핵기질(nuclear matrix)을 분리하였다. 분리된 핵기질을 Proteinase K로 분해한 후, phenol-chloroform 추출로 크기가 약 0.3kb-15kb의 분포를 나타내는 핵기질 부착 DNA (nuclear matrix attachment regions : MARs)를 얻었다. 효모 URA 3 유전자를 가진 2.13 kb Eco47 III 단편을 제한효소 Ssp I 으로 절단된 pUC19 플라즈미드 벡타에 결합시켜, ARS (autonomously replication sequence) 클로닝을 위한 pURY19 플라즈미드 벡타를 만들었다. 이 pURY19 벡타는 Saccharomyces cerevisiae내에서 독립적으로 복제할 수 없기 때문에, 물고기의 효율적인 발현 벡타 개발을 위해, 이 system을 이용하여, S. cerevisiae내에서 독립적으로 복제 가능한 미꾸라지의 ARS를 클로닝하고자 하였다. 분리 된 MARs를 pURY19 벡타에 결합시 킨 다음, E. coli $DH5\alpha$에 형질전환시켜 $pURY19N_{l-62}$를 얻었다. MAR Libraries $(pURY19N_{1-62})$를 각각 $Ura^-\;S.\;cerevisiae$에 형질전환시켜, S. cerevisiae내에서 독립적으로 복제 가능한 M. mizolepis 유래의 복제원점들 (ARSs)을 분리하여, Sanger's dideoxy-chain termination method로 염기서열을 분석하였다. 염기서열 분석결과 모든 clones들은 AT-rich하였으며, 특히 $pURY19N_6$에는 ARS concensus sequence, Topoisomerase II consensus, near A-box, 그리고 T-box들이 존재하였다.
A DNA vaccine methodology using eukaryote expression vectors to produce immunizing proteins in the vaccinated hosts is a novel approach to the development of vaccine and immuno-therapeutics, and it has achieved considerable success over several infectious diseases and various cancers. To further enhance its efficiency, attempts were made to develop novel plasmid vectors containing multiple immunostimulatory CpG motifs, for rapid and strong immune response. First, a 2.9 kb compact plasmid vector (pVAC), containing CMV promoter, polycloning site, BGH poly(A) terminator, ampicillin resistance gene and pBR322 origin was constructed. A pVAC-hEPO was also constructed, which contained a human erythropoietin gene, for evaluating the transfection efficiency of naked plasmid DNA both in vitro and in vivo. To examine the adjuvant effect of multi-CpG motifs on naked plasmid DNA, 22 and 44 enriched and unmethylated CpG motifs were introduced into pVAC to generate pVAC-ISS1 and pVAC-ISS2, respectively. $100{\mu}g$ of pSecTagB, pVAC, pVAC-ISS1 or pVAC-ISS2 were each injected intramuscularly into the tibilias anterior muscle of Balb/c mice. The level of interleukin-6 induced in the mice injected with pVAC-ISS1 and pVAC-ISS2 were significantly elevated after 12 hours, which were almost 2 and 2.5 times higher than that in the mice injected with pSecTagB, respectively. These results suggest that DNA vaccine plasmids with enriched CpG motifs can induce rapid secretion of interleukin-6 by lymphocytes. In conclusion, these vectors can contribute to the development of adjuvant-free DNA vaccinations against infectious diseases and various cancers.
효모 유전자 운반체의 유형을 특징지우는 ARS1 (autonomous replicating sequence), CEN3 (centromere), 2 $\mu$m OR (yeast plasmid의 origin of replication)의 DNA 절편을 재조합하여 만든 유전자 운반체들의 형질전환력, 안정도 및 운반체 수를 효모균주 SHY4(cir$^+$)와 NNY1(cir$^{\circ}$)에서 비교 조사하였다. CEN3를 갖는 유전자 운반체는 매우 안정하나 세포당 수가 하나로 매우 낮으며 2 $\mu$m OR과 ARS1 을 동시에 갖는 유전자 운반체는 안정할 뿐만 아니라 세포당 수도 높으며 균주내에 존재하는 2 $\mu$m 플라스미드는 2 $\mu$m OR을 가지는 유전자 운반체의 복제에 영향을 준다는 사실을 알 수 있었다.
Aspergillus nidulans 의 DNA 로부터 Saccharomyces cerevisiae에서 스스로 복제가능하고, 형질전환율도 삽입벡터에 비해 10\sup 4\ 배정도 높여주는 절편을 분리한 바 있다. A. nidulans에서 ANRI 의 일부를 포함한 pILJ16-4.5는 삽입벡터인 pILJ16보다 170배 정도 높은 형질전환 효율을 보였으며, S.cerevisiae와 마찬가지로 plasmid 상태로 회수가능했다. A.nidulans 페소내에서 2-3 copy 정도로 염색체와는 별개로 존재하는 것으로 나타났으며, 재형질전환능력도 있었다. ANRI은 미토콘드리아의 DNA에서 유래한 절편으로 밝고, ARS 공통절편과 유사한 절편도 11곳에 존재한다. $\Phi$X174와 SV40 DNA에서 gyrase 가 결합하는 부위의 공통편인 YRTGNYNNY도 6곳에 존재하며, ColE1에서 gyrase가 결합하는 b site와 일치하는 절편도 하나 포함하고 있으며, ABF1 결합 부위이 공통절편과 유사한 절푠$TCN_7ACG$ 도 하나 포함하고 있다. 이를 토대로 ANRI은 A.nidulans의 형질전환 후 회수가 가능한 replicating vector 개발에 이용할 수 있다.
The prospect of live vaccines consisting of genetically modified vaccinia virus expressing foreign genes is exciting, but important issues concerning safety and efficacy need to resolved. Vaccinia virus (VV) is an efficient expression vector with broad host range infectivity and large DNA capacity. This vector has been particularly useful for identifying target antigens for humoral and cell-mediated immunity. The WHO smallpox eradication program, involving the extensive use of VV vaccines, resulted in the late 1970s in the elimination of one of the world's most feared diseases. This achievement is a triumph for preventive medicine and for international collaboration in public health. In 1980, WHO recommended that the routine use of smallpox vaccine should be stopped. Against this background, the prospect of li ve vaccines consisting of genetically modified VV expressing foreign antigens arising from the work of Moss, and Paoletti and their colleagues in 1982 has been greeted with enthusiasm. These investigators have shown that genes coding for immunogenic proteins can be inserted into VV DNA without impairing the ability of the virus to grow in cell culture. Moreover experimental animals infected with VV recombinants containing genes coding for a variety of immunizing proteins have been shown to be protected against challenge infection with the corresponding infectious agent. In this communication, I describe current progress in the construction of a novel plasmid vector that facilitate the insertion and expression of foreign genes in VV as well as the selection of recombinants.
Background: More and more research indicate that the immediately early response gene 3 (IER3) is involved inmany biological provesses, such as apoptosis and immunoreaction, as well as viral infection, tumorigenesis and tumour progression. Methods: Here we describe the construction of an eukaryotic expression vector containing IER3 gene and its expression in A549 cells as assessed through fluorescence microscopyand Western-blotting. Results: Fluorescence detection displayed that GFP in cytoplasm was high during 48 and 72 hours post-transfection. In addition, Western blotting showed significant increase in IER3 gene expression in the transfected cells compared with controls. Conclusion: The recombinate plasmid expression vector was constructed successfully, which may provide a basis for further exploration of function of IER3 in lung cancer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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