To improve regeneration efficiency of Brassica campestris ssp. pekinensis (chinese cabbage) in vitro, the effect of ehtylene inhibitors [AgNO$_3$ and silver thiosulfate (STS)] and optimal age of explantse were investigated. On the effect of ethylene inhibitors either 100 $\mu$M of AgNO$_3$ or 5 $\mu$M of STS enhanced shoot regeneration from cotyledons when it was added in basal shoot induction media(MS salts, B5 vitamine, sucrose 2%, BA 2.0mg/L, NAA 1.0mg/L). But at higher concentrations, AgNO$_3$ induced abnormal shoots, and STS greatly reduced regeneration frequency. On the other hand, the maximum regeneration rate was obtained from the cotyledons taken from 3-day old seedlings. However there was no distinctive effect among the containers used for cultivation. The most optimal condition of root induction was a minimal Murashige and Skoog media containing 0.1 mg/L NAA. In order to induce bolting and flowering from in vitro regenerated chinese cabbage, the plant were healed at 4$^{\circ}C$ for weeks in a cold chamber. When they were planted in pots, the plane produced phenotipically normal flowers and seeds. The overall results suggest that ethylene inhibitors promote regeneration of shoot from cotyledons of chinese cabbage without alleviating fertility.
This study describes plant regeneration from leaf explant of Bupleurum falcatum through somatic embryogenesis, and the effect of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid on somatic embryo abnormalities. The relationship between the cotyledon number of somatic embryo and its germinability is also described. Embryogenic calli were selected from calli formed on explants cultured on MS solid basal medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D. Cotyledonary abnormalities were observed in somatic embryos which were developed from calli cultured on MS medium with 1 mg/L 2,4-D for 6-week and then subcultured on 2,4-D free MS medium for 3 weeks. The frequency of abnormalities was as follows: 7% of somatic embryos had one cotyledon, 65% of them had two cotyledons, 25% three cotyledons, 5% four cotyledons, 2% five cotyledons, and 3% trumpet-like cotyledons. The two cotyledon somatic embryos were germinated at a frequency of 80%. However the germination frequency of one cotyledon embryo and multicotyledonary embryo was lower than that of the two cotyledon somatic embryo. All of trumper-like somatic embryos did not germinate. Histological observations of multicotyledon embryo showed circular procambium in the root but pocambial strands in the cotyledonary node or upper hypocotyl. The number of the strands was equal to the cotyledon number.
Lacquer tree can be proliferated by root or stem cutting, and seed. In case of proliferation by seed, however, the germination rate is very low. Thus, the present study was carried out to obtain aspceptic lacquer plant in vitro from seed because natural tissue culture was highly defiled by unknown fungi and bacteria. First seed grading on distilled water was 50.7% and second seed grading was 20.8% after 98% sulfuric acid treatment for 2 hours. Removal of inner seed coat was higher with 32.4% than non-removal of outer seed coat and removal outer seed coat in rooting rate. In germination rate according to pre-treatment, growth regulators were not effective at all, but sulfuric acid was effective a little with 3%. Removal outer seed coat was increased about 4%, that germinated about 10% in MS medium supplemented with 1.0mg/L BA and 0.05mg/L NAA, 1.0mg/L BA. Lacquer tree seeds germinated after 10 days in MS medium, and aspceptic seedling of lacquer tree were obtained after 3 weeks in vitro. Germination rate, however, was lower about 10%.
The modification of DNA and histone plays an important role for gene expression in plant development. The objective of this research is to observe the effects of methylation on the gene expression during dedifferentiation from rice mature seeds to callus and differentiation from callus to shoots. The embryogenic callus with ability to shoot regeneration was not induced on the N6A medium supplemented with 5-azacytidine and abnormal callus with brown color was formed. When the normal rice callus was placed on the regeneration MSRA medium supplemented with 5-azacytidine, the shoot regeneration was inhibited. The results showed that 5-azacytidine, DNA demethylating agent, had negative effects on normal embryogenic callus formation and shoot regeneration. This suggested that DNA methylation of some genes was required for normal cell dedifferentiation and differentiation in tissue culture. The microarray and $GeneFishig^{TM}$ DEG screening were used to observe the gene transcript profile in callus induction and regeneration on N6A (N6 medium + 5-azaC) and MSRA (MS regeneration medium + 5-azaC). Subsets of genes were up-regulated or down-regulated in response to 5-azaC treatments. The genes related with epigenetic regulation, electron transport, nucleic acid metabolism and response to stress were up and down regulated. The different expression of some genes (germin like protein etc.) during callus induction and shoot regeneration was confirmed using RT-PCR and northern blot analysis.
Kim, Yong-Wook;Kim, Joon-Chul;Youn, Yang;Noh, Eu-Rae;Son, Sung-Ho
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.26
no.4
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pp.251-257
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1999
Adventitious buds were produced from the cultures of mature zygotic embryos of Larix leptolepis with the highest frequency of 91.7% in SH medium containing 1.0 mg/L zeatin. The most effective cytokinin combination for inducing adventitious buds was 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L thidiazuron (40.3%). The highest mean number of adventitious buds induced in 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L 2iP or 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L kinetin combined treatments. Elongation of the adventitious buds occurred the best on half strength LM salts medium, on which the buds elongated upto 27 mm. Also, the supplement of activated charcoal in medium suppressed the elongation of the adventitious buds. The highest frequency (23.3%) of rooting from elongated shoots was obtained on the medium containing 5.0 mg/L IBA and 0.2 mg/L NAA. The highest number (3.5) of roots was induced on the medium containing 5.0 mg/L IBA alone.
To establish an efficient screening system for new herbicides using plant cultured cells, responses of tobacco photomixotrophic cultured (PH) cells to various herbicides with different modes of action were surveyed by measuring the cell growth and ion conductivity in medium. The cells were cultured in Murashige and Skoog (MS) medium containing 0.7mg/L 2,4-D, 0.3mg/L kinetin and 30 g/L sucrose at $25^{\circ}C$ in the light (100 rpm). Chemicals were treated to suspension cultures of tobacco PH cells at the time of subculture. The cell growth and ion conductivity in the medium were investigated on 12 days after chemical treatment. The ion conductivity assay gave well correlated results to the cell growth inhibition data. The responses of tobacco PM cells were dependent on the modes of action of chemicals tested. Atrazine, an inhibitor of photosynthetic electron transport (PET), strongly inhibited both the cell membrane and cell growth ($IC_{50}$/, about 1 $\mu$M). Butachlor (an inhibitor of cell division), glufosinate (an inhibitor of amino acid biosynthesis), and fluridone (an inhibitor of carotenoid biosynthesis) showed a dose-dependent inhibition. However, Quinclorac, a herbicide with an auxin activity, did not affect the cell growth and ion leakage. These results suggested that tobacco PM cells is suitable materials for the simple screening of new herbicides such as PET, amino acid biosynthesis, ceil division inhibitors by measuring the cell growth and ion conductivity.
In this paper we describe the cloning and expression of the genes encoding the flavonoid-biosynthetic enzyme dihydroflavonol 4-reductase (DFR) in Matthiola incana R. Br. A heterologous cDNA probe from Zea mays was used to isolate full-size DFR cDNA clone from a corolla-specific cDNA library. Comparison of the coding region of this DFR cDNA sequence including the sequences of Zea mays, Anthirrinum majus, Petunia hybrida, Callistephus chinensis, Dianthus caryophyllus and Rosa hybrida reveals a identity higher than 61% at the nucleotide level. The DFR transcript is G/C rich in monocotyledonous plants show a strong codon bias preferring codons with a G or C in the third position. The function of this nucleotide sequences were verified by comparison with amino acid sequences of the amino-terminus and tryptic peptides from purified plant enzyme, by northern blotting with mRNA from wild type and mutant plants and by in vitro expression yielding an enzymatically active reductase. Genomic southern blot analysis showed the presence of one gene for DFR in Matthiola incana. Northern blot analysis of the DFR wild type and mutant lines showed that the lack of DFR activity in the stable acyanic mutant k17b is clearly by a transcriptional block of the DFR gene.
The Korean Society of Ginseng The Korean Society of Ginseng
Proceedings of the Ginseng society Conference
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1974.09a
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pp.101-113
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1974
The radioactive compound sodium $acetate-U-C^{14}$ (C-14 acetate) was administered to two- and four-year-old July and September American ginseng (Panax quinquefolium L.) plants and cuttings. The C-14 acetate uptake was approximately $99\%.$ The autoradiochromatograms suggest that the saponins(panaquilins) isolated by preparative thin-layer chromatography contained impurities, especially those isolated from the leaf and stem extracts. The root and fruit methanol extracts yielded relatively pure saponins. The large amounts of panaquilin B and its proximity to panaquilin C on preparative thin-layer plates resulted in some admixing. The average concentration $(\%$ plant dry weight) of semipurified saponins were high in the leaves $(13.8\%),$ compared to fruits $(9.8\%),\;stems\;(7.9\%)\;and\;roots\;(6.3\%).$ The average percentage of C-14 acetate incorporation into panaquilins was $4.8\%.$ The average percentage of C-14 acetate incorporation into panaquilins B and C was higher $(1.40\%\;and\;1.13\%,$ respectively) than that into panaquilin C, (d), G-1 and G-2 $(0.75\%,\;0.65\%,\;0.13\%\;and\;0.53\%,$ respectively). Panaquilin synthesis may be depending upon the part collection period and age of the plant. The average percentage of C-14 acetate incorporation into panaquilin B is high in roots $(0.58\%)\;and\;stems\;(0.48\%);$ that into panaquilins C and (d) high in leaves $(0.40\%\;and\;0.45\%,$ respectively); and that into panaquilin E high in roots and leaves $(0.55\%\and\;0.50\%,$ respectively). Panaquilin G-2 was synthesized in all parts of plants. The panaquilins appear to be biosynthesized more actively in July than September (exception-panaquilin G-l). Panaquilins B, C and G-1 may be biosynthesized more actively in four-year-old plants and panaquilins (d) and E more actively in two-year-old plants. The results from expectance with cuttings suggest that the panaquilins are synthesized de novo in the above-ground parts of ginseng plants, and that panaquilin G-l may be synthesized de novo in the leaf. It is known from the tissue culture studies that panaquilins are produced by leaf, stem and root callus tissues and callus-root cultures of American and Korean ginseng plants. Panaquilins may actively be synthesized de novo in most any cell or organ of the ginseng plants. It was verified that C-14 acetate was incorporated into the panaxadiol portions of the panaquilins of two-year-old plants (sp. act., 0.56 $m{\mu}Ci/mg$) and four-year-old plants (sp. act., 0.54 $m{\mu}Ci/mg$).
AL1-gene, necessary for the replication of the genome of a gemini virus TGMV, was inserted in the opposite direction to the promoter CaMV35S resulting in the construction of a plant transformation binary vector pAR35-2. The vector pAR35-2 contains the chimeric gene cassette involving the duplicated promoter CaMV35S, opposite direction of AL1-gene fusioned with hygromycin resistant gene, and the gene cassette of the neomycin phosphotransferase II gene. The plasmid was transferred to tobacco and tomato plants by leaf disk infection via Agrobacterium. The transgenic plants were selected and grown on the MS-agar medium containing kanamycin and hygromycin. The shoots induced from the calli were regenerated to the whole transgenic plants. The antisense AL1-gene was detected in the genomic DNA isolated from the leaves by using the PCR mediated Southern blot analysis. The expression of the antisense AL1-gene was also observed using the RT-PCR mediated Southern blot analysis. The observation of chloroplasts in guard cell pair indicated that the transgenic tomato plants were diploid.
Alstroemeria plants were transformed by using an improved particle-gun-mediated transformation system. Friable embryogenic callus (FEC) induced from the leaves with axil tissues of Alstroemeria plant was used as the target tissue. Also, FEC was transformed with the bar gene was used as a selectable marker. In the case of plasmid pAHC25, 7.5% of the twice-bombarded FEC clumps showed blue foci, whereas the clumps with single bombardment showed only 2.3%. Additionally, a 90° rotation with double bombardment led to a higher frequency (6 times) of luciferase gene expression in PBL9780 than the control treatment. After 8 weeks of bombardment, more than 60 independent transgenic lines were obtained for pAHC25 and nearly 150 independent transgenic lines were obtained for PBL9780, all of which were resistant to PPT and demonstrated either GUS or luciferase activity. Regarding effect of osmotic treatment (0.2 M mannitol) with 7 different periods, the highest transient gene expression was obtained in 8 h before and 16 h after transformation in both pAHC25 and PBL9780. Compared with the control, at least three times more GUS foci and photons were observed in this treatment. With respect to different combinations of mannitol and sorbitol with 8 h before and 16 h after transformation, high numbers of transient and stable transgene expressions were observed in both 0.2 M mannitol and 0.2 M sorbitol used in the osmotic pre-culture. This combination showed the highest transformation efficiency in both pAHC25 (8.5%) and PBL9780 (14.5%). In the control treatment, only 10% of the FEC clumps produced somatic embryos. However, by using 0.2 M mannitol and 0.2 M sorbitol, the frequency of somatic embryos increased to 36.5% (pAHC25) and 22.9% (PBL9780). Of the somatic embryos produced, at least 60% germinated. Approximately 100 somatic embryos from these 210 independent transgenic lines from 2 plasmids developed into shoots, which were then transferred to the greenhouse. PCR analysis confirmed the presence of the bar gene. This is the report on the production of transgenic Alstroemeria plants by using particle bombardment with a high efficiency, thereby providing a new alternative for the transferring of gene of interests in Alstroemeria in the breeding program in the future.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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