In order to clarify effects of phytohormones on the viability and the cell wall regeneration of protoplasts isolated from Nicotiana tobacum L. var. BY4, protoplasts isolated from mesophyll tissue were cultured on the Murashige-Skoog liquid media supplemented with auxin(2, 4-D, NAA, IAA) and/or cytokinin (kinetin, BAP, 2ip). Viability of protopplasts was higher in the culture medium containing auxin and cytokinin, especially in the combination of 2, 4-D and BAP. The effectual cell wall regeneration of protolasts was observed when theprotoplasts were cultrued on the medium supplemented with auxin alone, especially with IAA. Cell wall regernation started from 2-3 days after culture and was not detected at budding regions. When the protoplasts were cultured on the phytohormone-free medium, the viability of protoplasts dramatically decreased 4 days after culture.
Selection of glyphosate-resistant clones from MNNG-treated mesophyll protoplasts of haploid tobacco and their differentiation were studied. The protoplasts were treated with 0.1 to 100 $\mu\textrm{g}$/mL N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG) for 30 min when they expanded to oval shapes. After the treatment, the protoplasts in 4-16 cell stages were transferred to the selective medium containing 1 mM glyphosate for the selection of the glyphosate-resistant colonies. The efficiency of the cell division of the protoplasts in the selective medium decreased as the MNNG concentrations in creased. Optimal MNNG concentration for induction of the glyphosate-resistant clones was 10$\mu\textrm{g}$/mL and mutation frequency was 2.66$\times$10-6. The stability of the glypohsate-resistance of the clones was examined by prolonged subculture in the medium with 1 mM glyphosate, and the resistant clones were survived more than 10 months. Among them one clone has been proliferating and greening and the others were proliferating without greening or greening with slower proliferating.
A system was established for induction of multi-shoots and plant regeneration from mesophyll protoplasts of alfalfa, Medicago sativa L. cv. Vernal. Different hormonal effects were tested at each step of protoplast culture, i.e. cell division in modified Kao's liquid medium (K566-7). calli formation on SH semi solid medium, and multi-shoot regeneration from calli on SHa and SHb solid media. Frequency of multi-shoots and plant regeneration was affected by various combinations of phytohormones in final step. The evaluation of multi-shoots induction systems via protoplast culture was discused.
Intra- and inter-specific protoplast fusion of tobacco (Nicotiana tabacum cv. Virginia 115) and pea (Pisum sativum cv. Sparkle) were carried out in highly inhomogeneous alternating electric fields. Under the electric field of alternating current (AC, sine wave), 600 V/cm and 800 kHz for tobacco protoplast, and 600 V/cm and 700 kHz for pea protoplasts, the protoplasts were aggregated in pearl chains. Intra-specific protoplast fusions were most effectively induced within the aggregates of tobacco and pea, respectively, by the additional application of a single high field pulse of direct current (DC, square wave) at 1 kV/cm for 50 $mutextrm{s}$. Inter-specific fusions between protoplasts of the two plants were most effectively induced in the electric field of 600 V/cm and 700 kHz, and square wave pulse at 1 kV/cm for 50 $mutextrm{s}$. The duration of the pulse over the electrical breakdown voltages was simulated from 1 to 100 $mutextrm{s}$ in both tobacco and pea protoplast. The yield of the electrofusion products was significantly high (above 60%), compared with that (20%) of the standard fusion method by polyethylene glycol (PEG) 4,000, and the viability of electrofused protoplasts was above 70%, but that of PEG-fused protoplasts 8~16%, when determined by Evan's blue staining method.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2022.10a
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pp.204-204
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2022
Transformant construction using protoplasts requires less sample preparation time than particle bombardment and Agrobacterium-mediated transfection. There are two protoplast transfection methods: the PEG-mediated transfection method and the Lipofectamine transfection method. When Lipofectamine is mixed with DNA, Lipofectamine surrounds DNA like a cell membrane because of the positive charge of Lipofectamine. The Lipofectamine-DNA complex makes DNA insertion into cells easier. Fectin has similar functions to lipofectamine and is less expensive than lipofectamine. The 3D-fectin technology has been highlighted in animal cell transfection. Therefore, we performed PEG-mediated transfection, Lipofectamine transfection, and 3D-pectin transfection with a GFP construct. Protoplasts were isolated using the first leaf of "Bobwhite" after 4 hours of incubation in an isolation Buffer (cellulase + macerozyme). Protoplasts transformed by each method were cultured for 48 hours, and then GFP fluorescence expression was confirmed under confocal microscopy. GFP signals were detected in PEG-mediated transfection and Lipofectamine transfection. And the GFP signals were also detected in protoplasts to which 3D-fectin technology was applied, suggesting that 3D-fectin technology can be used for plant protoplast transfection.
Agrobacterium tumefaciens induces cancerous growths called crown galls at wound sites on dicotyledonous plants. A large plasmid called Ti plasmid is responsible for virulence. Upon tumor induction, part of the plasmid, termed T-DNA, becomes integrated into plant genome and its genetic sequences are expressed. These properties allow Ti plasmids to be used as gene vectors in plants. Several in vitro methods for the transfer of Ti plasmid into plant cell have been developed. One of them is the treatment of bacterial spheroplasts and plant protoplasts mixture with polyethylene glycol that is generally used as fusogen in cell-to-cell fusion. Several workers investigated the interaction of bacterial spheroplasts with plant protoplasts in the presence of polyethylene glycol and suggested that the interaction is not fusion but endocytosis. In this report we observed the interaction of Agrobacterium tumefaciens spheroplasts with Nicotiana tabacum protoplasts by electron microscope. Agrobacterium tumefaciens spheroplasts and Nicotiana tabacum protoplasts were prepared and mixed in the presence of polyethylene glycol and high pH-high $Ca^{2+}$ buffer. Then the interaction of the spheroplasts with the protoplasts was examined by transmission electron microscope. After the treatment of polyethylene glycol the spheroplasts adhered to the surface of the protoplasts and then they were engulfed by the protoplasts. After the high pH-high $Ca^{2+}$ buffer treatment the engulfed spheroplasts lost their cell integrity. No fusion process was observed. Thus all these observations suggest that the introduction process of Agrobacterium tumefaciens spheroplasts into Nicotiana tabacum protoplasts with the aid of polyethylene glycol is endocytosis.
Callus-inducing ability of Alnus hirsuta was examined by culturing various tissues (leaf, hypocotyl, cotyledon and seed) on NT (Nagata & Takebe) medium, supplemented with 2.5$\mu$M 2,4-D. Leaf-originated callus was cultured on media varying in auxin (IBA and NAA) and cytokinin (BAP) concentrations to examine the effects of auxin and cytokinin on callus growth. Maximum growth was obtained at 10 $\mu$M IBA+10$\mu$M BAP and 10$\mu$M NAA without cytokinin. Cell suspensions established from cotyledon-originated callus yielded viable protoplasts after incubation for 16-18 hours in an enzyme mixture (1% (w/v) Onozuka R-10 0.5% (w/v) Macerozyme, CPW salts and 13% (w/v) mannitol, pH 5.8). Protoplasts were cultured on NT medium, supplemented with glucose, hormones and coconut milk. After 6 weeks of culture, protoplasts sustained cell divisions to form microcallus, which showed various colors from red to white.
The objective of this paper is to investigate the effect of AC field on the protoplast of plant cells. The results of investigation will be the basis for the development of etectric cell fusion device. For the experiment, we made the electrode and AC and DC pulse generator and observed the behavior of the protoplasts through the inverted microscope which is connected to the monitor and video recorder by the CCD camera. As a result, the numbers of rotating, moving and destructed protoplasts and viability of the protoplasts have close relation to the amplitude of AC field, while the rotation rate is closely related to the frequency of AC pulse.
The optimal conditions for the protoplast isolation from the leaves of pea (Pisum sativum L. cv. Sparkle) and barley (Hordeum vulgare L. cv. Baecdong) were determined in order to achieve a somatic hybridization between two species. It was revealed that the use of 0.5M sorbitol as an osmoticum was appropriate for pea. The yield of intact protoplasts was the highest (40%) when pea leaves were incubated in the enzyme solution for 4 hours. In case of barley, the optimal concentrations of cellulase, pectinase and mannitol as the enzyme solution were 2%, 1% and 0.35M, respectively. And the yield of barley protoplasts was the highest(87%) when leaves were incubated in this enzyme solution for 3.5 hours. A fusion of protoplasts from pea and barley was induced by PEG treatment enriched with calcium salts within 60 minutes.
This paper reports an improved protocol for isolation, culture and regeneration of Lotus corniculatus protoplasts. A range of parameters which influence the isolation of L. corniculatus protoplasts were investigated, i.e., enzyme combination, tissue type, incubation period and osmolarity level. Of three enzyme combinations tested, the highest yield of viable protoplasts was achieved with the combination of 2% Cellulase Onozuka RS, 1% Macerozyme R-10, 0.5% Driselase and 0.2% Pectolyase. The use of etiolated cotyledon tissue as a source for protoplast isolation proved vital in obtaining substantially higher protoplast yields than previously reported. Culture of the protoplasts on a nitrocellulose membrane with a Lolium perenne feeder-layer on the sequential series of PEL medium was highly successful in the formation of microcolonies with plating efficiencies 3-10 times greater than previous studies. Shoot regeneration and intact plants were achieved from 46% of protoplast-derived cell colonies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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