The mannitol transporter Enzyme $II^{Mtl}$ of the bacterial phosphotransferase system has two cytoplasmic phosphoryl transfer domains $IIA^{Mtl}$ and $IIB^{Mtl}$. The two domains are linked by a flexible peptide linker in mesophilic bacterial strains, whereas they are expressed as separated domains in thermophilic strains. Here, we carried out backbone assignment of $IIA^{Mtl}$ from thermophilic Thermoanaerobacter Tencongensis using a suite of heteronuclear triple resonance NMR spectroscopy. We have completed 94% of the backbone assignment, and obtained secondary structural information based on torsion angles derived from the chemical shifts. $IIA^{Mtl}$ of Thermoanaerobacter Tencongensis is predicted to have six ${\beta}$ strands and six ${\alpha}$ helices, which is analogous to $IIA^{Mtl}$ of Escherichia coli.
Nguyen, Lan Huong;Lee, Na Joon;Hwang, Hyun Ha;Son, Hye Bin;Kim, Hye Ji;Seo, Eun Gyo;Nguyen, Huu Hoang;Park, Je Won
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제29권3호
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pp.367-372
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2019
Deactivation of aminoglycosides by their modifying enzymes, including a number of aminoglycoside O-phosphotransferases, is the most ubiquitous resistance mechanism in aminoglycoside-resistant pathogens. Nonetheless, in a couple of biosynthetic pathways for gentamicins, fortimicins, and istamycins, phosphorylation of aminoglycosides seems to be a unique and initial step for the creation of a natural defensive structural feature such as a 3',4'-dideoxy scaffold. Our aim was to elucidate the biochemical details on the beginning of these C3',4'-dideoxygenation biosynthetic steps for aminoglycosides. The biosynthesis of istamycins must surely involve these 3',4'-didehydroxylation steps, but much less has been reported in terms of characterization of istamycin biosynthetic genes, especially about the phosphotransferase-encoding gene. In the disruption and complementation experiments pointing to a putative gene, istP, in the genome of wild-type Streptomyces tenjimariensis, the function of the istP gene was proved here to be a phosphotransferase. Next, an in-frame deletion of a known phosphotransferase-encoding gene forP from the genome of wild-type Micromonospora olivasterospora resulted in the appearance of a hitherto unidentified fortimicin shunt product, namely 3-O-methyl-FOR-KK1, whereas complementation of forP restored the natural fortimicin metabolite profiles. The bilateral complementation of an istP gene (or forP) in the ${\Delta}forP$ mutant (or ${\Delta}istP$ mutant strain) successfully restored the biosynthesis of 3',4'-dideoxy fortimicins and istamycins, thus clearly indicating that they are interchangeable launchers of the biosynthesis of 3',4'-dideoxy types of 1,4-diaminocyclitol antibiotics.
The gene for mannose enzyme II of phosphoenolpyruvate-dependent phosphotransferase system from Corynebacterium glutamicum KCTC 1445 was cloned into Escherichia coli ZSC113 using plasmid pBR 322. The recombinant plasmid, designated pCTS3, contained 2.2 kb DNA fragment, and the physical map of the cloned DNA fragment was determined. The E. coli ptsM ptsG mutant transformed with pCTS3 restored glucose and mannose fermentation ability, and grew well on these sugars as the sole carbon source in the minimal medium. The transform ant harboring pCTS3 showed a PTS-mediated repression of growth on maltose by mannose analogue, 2-deoxyglucose. The specificity of the response to 2DG therefore indicates that the cloned DNA fragment carries mannose enzyme II gene.
A detailed procedure was described for the isolation of cratine kinase (ATP-Creatine phosphotransferase, E. C. 2. 7. 3. 2.) from the muscle of the snake Bungarus fasciatus. The original isolation procedure of Kuby et al. for the rabbit muscle enzyme has been modified and extended to include a chromatographic step. The properties of the enzyme have been investigated and kinetic constants for the reverse reactions determined as the followings: 1) A molecular weight of the enzyme was determined by gel filteration on Sephadex G-100 and by electrophoresis on SDS-polyacrylamide was 86,000. 2) Two reactive sulphydryl groups were detected with dithiobis nitrobenzoic acid (DTNB). 3) The nucleotide substrate specificity in the reverse reaction was determined as ADP*2'-dADP>GDP>XDP>UDP with magnesium as the activating metal ion. 4) The order of the metal specificity in the reverse reaction Mg>Mn>$Ca{\sim}Co$ was determined with ADP as substrate. 5) A detailed kinetic analysis was carried out in the reverse direction with $MaADP^-$ as the nucleotide substrate. Initial velocity and product inhibition studies($MaADP^{2-}$ competitive with respect to MgADP- and noncompetitive with respect to $N-phosphorycreatine^{2-}$ ; Creatine competitive with respect to $N-phosphorycreatine^{2-}$ and noncompetitive with respect to Ma $ADP^-)$ indicated that the reaction obeyed a sequential mechanism of the rapid equilibrium random type.
In addition to effecting the catalysis of sugar uptake, the bacterial phosphoenolpyruvate::sugar phosphotransferase system regulates a variety of physiological processes. In a previous paper [Seok et al.,(1997) J. Biol. Chem. 272, 26511-26521], we reported the interaction with and allosteric regulation of Esiherichia coli glycogen phosphorylase activity by the histidine-containing phosphocarrier protein HPr in vitro. Here, we show that the specific interaction between HPr and glycogen phosphorylase occurs in vivo. To address the physiological role of the HPr-glycogen phosphorylase complex, intracellular glycogen levels were measured in E. coli strains transformed with various plasmids. While glycogen accumulated during the transition between exponential and stationary growth phases in wildtype cells, it did not accumulate in cells overproducing HPr or its inactive mutant regardless of the growth stage. From these results, we conclude that HPr mediates crosstalk between sugar uptake through the phosphoenolpyruvate:sugar phosphotransferase system and glycogen breakdown. The evolutionary significance of the HPr-glycogen phosphorylase complex is suggested.
Protein kinase CKII (CKII), a heterotetramer composed of two catalytic ($\alpha$ or $\alpha$') subunits and two regulatory ($\beta$) subunits, plays a critical role in cell proliferation and anti-apoptosis. Recently, capsaicin was shown to trigger apoptosis. Therefore, we examined the effect of capsaicin on CKII activity. Although capsaicin induced apoptotic death in HeLa cells, CKII activity was increased in the cytosolic fraction of HeLa cells after treatment. Capsaicin did not change the expression of the $CKII{\alpha}$ and $CKII{\beta}$ proteins. Capsaicin stimulated the catalytic activity of recombinant CKII tetramer, but not the $CKII{\alpha}$ subunit. Moreover, capsaicin enhanced the autophosphorylation of $CKII{\alpha}$ and $CKII{\beta}$. Taken together, our data suggest that capsaicin stimulates the phosphotransferase activity of CKII holoenzyme by interacting with the $CKII{\beta}$ subunit.
대장균의 GroEL과 상동성을 가지는 symbionin이 진딧물의 세포내 곤생미생물에서 유일하게 생산된다. 이것은 in vitro와 in vivo에서 moecular chaperone 활성을 가지는 것과 함께 자가인산화(autophosphory-lation)와 인산기전이효소(phosphotransferase)의 활성에 의해서 고에너지 인산기를 다른 곳에 줄 수 있다. Symbionin은 two component pathway의 센서분자의 역할을 하며, 지금까지 알려진 것과는 다른 성질을 가진 protein Kinase이다.
Transgenic Petunia hybrida cv. Rosanpion was produced by Agrobactepium tumefaciens LBA4404 harboring a binary vector pBI 121 containing $\beta$-glucuronidase (gus) and neomycin phosphotransferase (nptII). For genetic transformation, leaf discs were precultured on MS medium supplemented with 0.5 mg/L NAA and 1.0 mg/L BA (MNB) for 2 days and cocultured for 15 mins with A. tumefaciens. For selection of transformant, leaf discs were transferred to fresh MNB containing 50 mg/L kanamycin and 500 mg/L cefotaxime. Eighteen plants were regenerated and four were confirmed by PCR for detection of gus and nptII gene integrated into the nuclear genome of petunia ‘Rosanpion’. Using this transformation system, we expect that transgenic petunia ‘Rosanpion’ incorporating a useful gene can be produced.
When ptsG, a glucose-specific phosphotransferase system (PTS) component, is deleted in Escherichia coli, growth can be severely poor because of the lack of efficient glucose transport. We discovered a new PTS transport system that could transport glucose through the growth-coupled experimental evolution of ptsG-deficient E. coli C strain under anaerobic conditions. Genome sequencing revealed mutations in agaR, which encodes a repressor of N-acetylgalactosamine (Aga) PTS expression in evolved progeny strains. RT-qPCR analysis showed that the expression of Aga PTS gene increased because of the loss-of-function of agaR. We confirmed the efficient Aga PTS-mediated glucose uptake by genetic complementation and anaerobic fermentation. We discussed the discovery of new glucose transporter in terms of different genetic backgrounds of E. coli strains, and the relationship between the pattern of mixed-acids fermentation and glucose transport rate.
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