Lipopolysaccharide (LPS) endotoxin is an active component in the outer membrane of Gram-negative bacteria. LPS is usually used as an inflammatory animal model. During the inflammation, diarrhea and changes in plasma proteins, in hepatic and/or intestinal microsomal cytochrome P450 (CYP) isozymes, and in the renal and/or biliary excretion of drugs have been reported. Thus, in rats pretreated with lipopolysaccharide endotoxin isolated from Klebsiella pneumoniae (KPLPS rats), the absorption, distribution, metabolism, and excretion of drugs could be expected to be altered. Interestingly time-dependent effects on the hepatic CYP isozymes have been reported in KPLPS rats. Thus, in KPLPS rats, the pharmacokinetics of drugs which are mainly metabolized via CYP isozymes could be expected to be time-dependent. In this review, an attempt to explain changes in pharmacokinetics of drug reported in the literature was made in terms of CYP isozyme changes or urinary and/or biliary excretion changes in KPLPS rats.
Pharmacokinetics of aucubin, an irdoid glucoside, was compared in rats of experimental hepatic failure(EHF). EHF was induced by CCI$_{4}$ or D-galactosamine pretreatment. This work was designed to find out any differences in the pharmacokinetics of aucubin that may explain the different protective effect of aucubin on CCI$_{4}$- and galactosamine-induced EHF : aucubin reportedly protected CCI$_{4}$-inducing hepatotoxicity effectively, but did not for galactosamine-hepatotoxicity. EHF was induced by intraperitoneal injection Of CCI$_{4}$(0.9ml/kg) or galactosamine(250 mg/kg) to Wistar rats 24 hr before the pharmacokinetic study. The rats were fasted during the 24 hr. Aucubin was iv injected at a dose of 15 mg/kg and the plasma aucubin was assayed by HPLC. There were no significant differences in the pathophysiologies(body weight, liver weight, GTP, hematocrit, blood cell distrbution and plasma protein binding of aucubin) between the two EHF models except GOP which was significantly (p<0.05) higher in CCI$_{4}$-than in galactosamine-EHF. On the other hand, pharmacokinetics of aucubin such as total cleatance(CL$_{t}$), distribution volume at steady-state(Vd$_{ss}$), and mean residence time(MRT) differed significantly(p<0.05) between the models : for example, CL$_{t}$ was increased two fold by CCI$_{4}$, but not by galaclosamine ; Vd$_{ss}$, in galactosamine-EHF was higher than that in CCI$_{4}$-EHF ; MRT was decreased by CCI$_{4}$, but increased conversely by galactosamine. The increase of CL$_{t}$(and decrease of MRT) in rats of CCI$_{4}$-EHF was contrary to the general expectation for the hepatic failure : most of the hepatic failures have been known to decrease CL$_{t}$ of the administered drugs. Whether the difference in the pharmacokinetics is responsible for the different protective effect of aucubin against the two EHF models is of interest. However, much more studies on biliary excretion, urinary excretion, and hepatic uptake in cellular level should be preceded before any conclusions are made on the role of different pharmacokinetics on the different pharmacology of aucubin.
It has been reported that the pharmacokinetic behaviors of drugs which are mostly metabolized in the liver are significantly different in patients with renal failure. Theophylline(TP) is mainly metabolized in the liver (approximately 90%) and renal clearance of the drug is negligible (less than 10%). Therefore, we have investigated the changes in pharmacokinetics of theophylline in normal, G-ARF and U-ARF rats after an intravenous administration. The total body clearance of TP decreased approximately 40% in U-ARF rats. The reduced CL$_{T}$, value in U-ARF rats could be due to reduced hepatic intrinsic clearance by up to 40% since it has been published that plasma protein binding of TP and liver blood flow does not change in U-ARF rats.
In vivo clearance of BMS-182874 was primarily due to metabolism via stepwise N-demethylation. Despite in vivo clearance approached ca 50% of the total liver plasma flow, BMS-182874 was completely bioavailable after oral administration in rats. Saturable first-pass metabolism and the role of extrahepatic tissue were evaluated as possible reasons for complete oral bioavailability despite extensive metabolic clearance. Pharmacokinetic parameters were obtained after an intravenous and a range of oral doses of BMS-182874 in rats. Bile and urine were collected from bile-duct cannulated (BDC) rats and the in vivo metabolic pathways of BMS-182874 were evaluated. Pharmacokinetics of BMS-182874 were also compared in nephrectomized (renally impaired) vs. sham-operated control rats. Oral bioavailability of BMS-182874 averaged 100%, indicating that BMS-182874 was completely absorbed and the first-pass metabolism (liver or intestine) was negligible. The AUC and C/sub max/ values increased dose-proportionally, indicating kinetics were linear within the oral dose range of 13 to 290 mmole/kg. After intravenous administration of BMS-182874 to BDC rats, about 2% of intact BMS-182874 was recovered in excreta, indicating that BMS-182874 was cleared primarily via metabolism in vivo. The major metabolite circulating in plasma was the mono-N-desmethyl metabolite and the major metabolite recovered in excreta was the di-N-desmethyl metabolite. In vivo clearance of BMS-182874 was significantly reduced in nephrectomized rats. These observations suggest saturable first-pass metabolism is unlikely to be a mechanism for complete oral bioavailability of BMS-182874. Reduced clearance observed in the nephrectomized rats suggests that extrahepatic tissues (e.g., kidneys) may play an important role in the in vivo clearance of xenobiotics that are metabolized via N-demethylation.
Because nonsteroidal anti-inflammatory drugs are reported to cause fluid retention and hypertension by inhibition of prostaglandin synthesis, the effects of piroxicam on pharmacodynamics and pharmacokinetics of nifedipine were studied in male spontaneously hypertensive rats. They received nifedipine (0.5 mg/kg) alone or combined with piroxicam (5 mg/kg) intravenously. Plasma levels norepinephrine, an index of sympathetic stimulation, were measured prior to each treatment and 5 min after drug administration. Changes in blood pressure were examined serially and blood samples for analysis of nifedipine were also taken for 6 hr following drug administration. Plasma nifedipine concentration were assayed by HPLC and pharmacokinetic parameters were calculated. Blood pressure was reduced (p<0.01), but plasma norepinephrine level was increased (p<0.05) by nifedipine administration. Anti-hypertensive effect of nifedipine was potentiated (p<0.05) by piroxicam coadministration, but effect of nifedipine on plasma norepinephrine level was not affected. In case of rats received nifedipine and piroxicam, plasma nifedipine concentrations were higher (p<0.05) than those from rats received nifedipine alone at 2,3,4,5 and 6 hours following drug administration. The area under the plasma concentration vs. time curve was increased (p<0.05), while the elimination rate constant was decreased (p<0.01) by piroxicam coadministration. No significant differences were observed in the plasma clearance, apparent volume of distribution and elimination half-life. Thus, piroxicam not only potentiated antihypertensive effect of nifedipine, but also altered nifedipine pharmacokinetics in the rats. It is concluded that the potentiation of nifedipine antihypertensive effect might correlate with the increment of its plasma concentration by piroxicam coadministration.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1998.11a
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pp.123-123
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1998
A number of uracil derivatives have been developed as anti-AIDS drugs having a mechanism of inhibiting cellular reverse transcriptase. A simple and rapid assay technique for recently synthesized KR-V analogues was developed using a high-performance liquid chromatography, and oral pharmacokinetics was examined for assessing their oral bioavailabilites. Plasma samples were analyzed by reversed-phase HPLC using an ODS column with an ultraviolet detection system. All the analogues were eluted within 12 min and the LOQ was 15-30 ng/$m\ell$. The extraction recoveries were higher than 85%, except KR-V1039, 1068 and 1720 having ester group. This chromatic method was well applied to the kinetic studies for KR-V analogues. Among 16 analogues tested in the present work, the 6 compounds including KR-V1123, 1122, 1784, 1783, 1736 and 1700 were found to be bioavailable for oral administration to rats.
Kim, Moon-Kyoung;Ahn, Byung-Nak;Yoo, Joong-Keun;Lee, Jong-Wook
Archives of Pharmacal Research
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v.20
no.6
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pp.629-632
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1997
The pharmacokinetics of YH439 and its metabolites were investigated after oral administration of YH439 to rats to investigate the food effect. After oral administration of YH439, its metabolites, M4 and M5 were detected in plasma. YH439 was not detected in the plasma for both fasted and fed rats for all doses studied. The pharmacokinetic parameters of the metabolites were not affected by food at all doses studied. The results of this study indicated that there are no significant food effects on the pharmacokinetics of YH439 and its metabolites in rats.
The purpose of this study was to investigate the effect of morin, a flavonoid, on the pharmacokinetics of diltiazem and one of its metabolites, desacetyldiltiazem in rats. Pharmacokinetic parameters of diltiazem and desacetyldiltiazem were determined after oral administration of diltiazem (15 mg/kg) in rats pretreated with morin (1.5, 7.5, and 15 mg/kg). Compared with the control group (given diltiazem alone), pretreatment of morin significantly increased the absorption rate constant $(K_a)$ and peak concentration $(C_{max})$ of diltiazem (p<0.05, p<0.01). Area under the plasma concentration-time curve (AUC) of diltiazem in rats pretreated with morin were significantly higher than that in the control group (p<0.05, p<0.01), hence the absolute bioavailability $(AB\%)$ of diltiazem was significantly higher than that of the control group (p<0.05, p<0.01). Relative bioavailability $(RB\%)$ of diltiazem in rats pretreated with morin was increased by 1.36- to 2.03-fold. The terminal half-life $(t_{1/2})$ and time to reach the peak concentration $(T_{max})$ of diltiazem were not altered significantly with morin pretreatment. AUC of desacetyldiltiazem was increased significantly (p<0.05) in rats pretreated with morin at doses of 7.5 and 15 mg/kg, but metabolite-parent ratio (MR) of desacetyldiltiazem was decreased significantly (p<0.05), implying that pretreatment of morin could be effective to inhibit the CYP 3A4-mediated metabolism of diltiazem. There were no apparent changes of $T_{max}$ and $t_{1/2}$ of desacetyldiltiazem with morin pretreatment. Collectively, the pretreatment of morin significantly altered pharmacokinetics of diltiazem, which can be attributed to increased intestinal absorption as well as reduced first-pass metabolism. Based on these results, dose modification should be taken into consideration when diltiazem is used concomitantly with morin or morin-containing dietary supplements in clinical setting.
The pharmacokinetics of CJ-50001 (recombinant human granulocyte-colony stimulating factor, developed by R&D center of Cheil Jedang Corp.) were investigated in rats and dogs. The serum concentrations of CJ-50001 were measured by a sandwich enzyme immunoassay. After single intravenous (iv) administration of Cf-50001 to rats at a dose of 5 $\mu$g/kg, the mean terminal half-life and area under the concentration-time curve (AUC) were 0.96 h and 124.497g . h/ml, respectively. After single subcutaneous (sc) administration at the same dose, maximum serum concentration was observed at about 2 hours after administration, and the mean terminal half-life, AUC and the bioavailability were 1.11 h,63.58$\mu$g . h/ml and 51.07%, respectively. In repeated dosing studies, CJ-50001 was administered iv and sc to rats at a daily dose of 5$\mu$g/kg for 7 days. The pharmacokinetic parameters, such as mean AUC and terminal half-life, were no significantly different from those of single administration. Following single iv and sc administration of CJ-50001 to dogs at a dose of 5 $\mu$g/kg, mean AUCs were much higher than those of rats, due to the decreased clearence (CL). After sc administration to dogs, maximum serum concentration was observed at 2~4 hours after administration and the bioavailability was 54.60%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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