Promoters inducible by paraquat, a superocide-generating agent, were isolated from Escherichia coli using a promoter-probing plasmid pRS415 with promoterless lacA gene. Twenty one promoters induced by paraquat were selected and further characterized. From sequence analysis, thirteen of the promoters were mapped to their specific loci on the Escherichia coli chromosome. Several promoters were mapped to the upstream of known genes such as usgl, katG, and mglB, whose relationships with superoxide response have not been previously reported. Other promoters were mapped to the upstream region of unknown open reading frames. Downstream of HC 96 promoter are uncharacterized ORFs whose sequences are homologous to ABC-transporter subunits. Downstream of HC84 promoter is an ORF encoding a transcriptional regulator-like protein, which contains a LysR family-specific HTH (helix-turn-helix) DNA bindign motif. We investigated whether these promoters belong to the soxRS regulon. All promoters except HC96 were found to belong to the soxRS regulon. The HC96 promoter was significantly induced by paraquat in the soxRS deletion mutant strain. The basal transcription level of three promoters (HE43, HC71, HD94) significantly increased at the stationary phase, implying that they are regulated by RpoS. However, paraquat inducibility of all promoters disappeared in the stationary phase, suggesting that SoxRS regulatory system is active only in rapidly growing cells.
We screened promoters inducible by superoxide radical from Escherichia coli. For this. we constructed random promoter library from E. coli MG 1655 using a promoter-probing plasmid. pJAC4. Six hundred and sixty clones in this library were classified based on their promoter strength by ampicillin gradient plate assay. Three hundred and eighty three clones with relatively weak to medium promoter strength were selected and then screened for their inducibility by superoxide radical on ampicillin gradient plate containing paraquat. Three clones (clones 5. 15 and 34) were detected to be induced by paraquat treatment and the level of induction were between 1.4 and 4 folds. Comparison of nucleotide sequences of the cloned promoter fragment with registered sequences in GENBANK and EMBL databases suggests that the cloned DNA fragments have not been yet characterized in E. coli. Transcription start sites in these clones were determined by rrimer extension and S I nuclease protection analysis. S 1 analysis of clones 5 and IS indicated that the mRNA levels were increased by paraquat treatment. Especially. clone 5 \vas found to have two transcription start sites. the upstream start site of which was selectively used by paraquat treatment. Searching for promoter clements. we found that only the downstream promoter of clone 5 has -10 and - 35 promoter elements recognized by RNA polymerase ($E\sigma^{70}$) and the others have no conserved promoter elements. This suggests that these superoxideinducible promoters may require transcription initiation protein(s) other than $E\sigma^{70}$.
Lee Yun-Ho;Ahn Eun-Young;Park Sung-Su;Madsen Eugene L.;Jeon Che-Ok;Park Woo-Jun
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.16
no.3
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pp.386-390
/
2006
A green fluorescent protein-based Pseudomonas putida reporter was successfully constructed and shown to be capable of detecting oxidative stress. In this whole-cell reporter, the promoter of the paraquat-inducible ferredoxin-$NADP^+$ reductase (fpr) was fused to a promoterless gfp gene on a broad-host-range promoter probe vector. Pseudomonas putida KT2440 harboring this reporter plasmid exhibited an increased level of gfp expression in the presence of redox-cycling agents (paraquat and menadione), hydrogen peroxide, and potential environmental pollutant chemicals such as toluene, paint thinner, gasoline, and diesel. Induction of fpr in the presence of these chemicals was confirmed using Northern blot analysis.
We isolated a promoter inducible by paraquat, a superoxide-generating agent, from Escherichia coli using a promoter-probing plasmid pRS415. From sequence analysis we found out the promoter is for fpr ENCODING nadph : ferredoxin oxidoreductase. We constructed on operon fusion of lacZ gene with fpr promoter to monitor the expression of the gene in the single-copy state. LacZ expression generators, menadione and plumbagin, also induced the expression of .betha.-galactosidase in the fusion strain. On the other hand, no significant induction was observed by treatment with hydrogen peroxide, ethanol, and heat shock. Induction of .betha.-galactosidase was significantly reduced by introducing a .DELTA. sox 8 :: cat of soxS3 :: Tn10 mutation into the fusion strain, indicating that fpr gene is a member of the soxRS regulon. The transcriptional start site was determined by primer extension analysis. Possible roles of fpr induction in superoxide stress were discussed.
A promoter that is inducible by paraquat and menadione, the superoxide generators, independently of soxRS has been found in front of the sufABCDSE operon in Escherichia coli. Based on the observation that SufA is a holomog of IscA that functions in the assembly of iron sulfur cluster and the sufA promoter (sufAp) contains a putative Fur-binding consensus, we investigated whether this gene is regulated by Fur, a ferric uptake regulator, When examined in several sufAp-lacZ chromosomal fusion strains, sufAp was induced by EDTA, an iron chelator and a well-known Fur-inducer, The basal level of sufA expression increased dramatically in fur mutant, suggesting repression of sufAp by Fur. The derepression in fur mutant and EDTA-induction of sufA expression required nucleotides up to -61, where a putative Fur box is located. Purified Fur protein bound to the DNA fragment containing the putative Fur box between -35 and -10 promoter elements. The regulation by Fur and menadione induction of sufAp acted independently. The rpoS mutation increased sufA induction by menadione, suggesting that the stationary sigma factor RpoS acts negatively on sufA induction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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