Lily symptomless virus (LSV), Lily mottle virus (LMoV), and Cucumber mosaic virus (CMV) are the most prevalent viruses infecting lilies in Korea. Leaf and bulb samples showing characteristic symptoms of virus infection were collected in 2012, and 80 field samples were analyzed by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). The infection frequencies were 79% for LMoV, 5% for LSV, and 3% for CMV. The LMoV coat protein gene was amplified and cloned into the pET21d(+) expression vector to develop serological diagnostic tools to detect LMoV. The resulting carboxy-terminal His-tagged coat proteins were expressed in Escherichia coli strain BL21 (DE3) by induction with IPTG. The recombinant proteins were purified using Ni-NTA agarose beads and used as an antigen to produce polyclonal antibodies in laying hens. The resulting egg yolk immunoglobulin (IgY) specifically recognized LMoV from infected plant tissues in immunoblotting assays and had comparable sensitivity to that of a mammalian antibody. In addition, method of immunocapture RT-PCR using this IgY was developed for sensitive, efficient, and rapid detection of LMoV. Based on these results, large-scale bulb tests and detection of LMoV in epidemiological studies can be performed routinely using this IgY. This is the first report of production of a polyclonal IgY against a plant virus and its use for diagnosis.
LEE JAE HYUNG;SEO YONG BAE;YOON MOON YOUNG;CHOI JUNG DO;KIM YOUNG TAE
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권2호
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pp.321-329
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2005
Ornithine decarboxylase (ODC) antizyme is a key regulatory protein in the control of cellular polyamines. We have isolated two distinct ODC antizyme cDNA clones (AZS and AZL) from a flounder (Paralichthys olivaceus) brain cDNA library. Their sequences revealed that both clones required translational frameshifting for expression. Taking + 1 frameshifting into account, AZS and AZL products were 221 and 218 amino acid residues long, respectively, and shared $83.3\%$ amino acid sequence identity. Comparison of the structure and nucleotide sequence of the antizyme genes showed that the genes were highly conserved in flounder, zebrafish, mouse, and human. A phylogenetic tree was constructed, based on the antizyme amino acid sequences from various species. The presence of the two types of antizyme mRNA species in brain, kidney, liver, and embryo was confirmed by using the reverse transcriptionpolymerase chain reaction (RT-PCR) and Northern blot analysis. Recombinant proteins of flounder ODC antizymes, containing His-Nus-S tag at the amino-terminus, were overexpressed as His-AZL and His-AZS fusion proteins in Escherichia coli BL21 (DE3) pLys by using the pET44a(+) expression vector.
Peptide deformylase (PDF) is essential and unique to bacteria, thus making it an attractive target for the discovery of novel antibacterial drugs. PDF deformylates the N-formylmethionine of newly synthesized polypeptides in prokaryotes. In this study, a pdf gene from Staphylococcus aureus 6538p was cloned in pET-14b vector and PDF protein was over-produced in Escherichia coli BL21 (DE3). NH$_2$-terminal His-tagged PDF protein was purified by nickel-nitrilotriacetic acid (Ni-NTA) metal-affinity chromatography. Enzymatic activity of purified 6xHis-tagged PDF was tested on the substrate (formyl-Methionine-Alanine-Serine) by formate dehydrogenase-coupled spectrometric assay of peptide deformylase. For the discovery of new PDF inhibitors from chemical libraries and culture broths of soil bacteria, a target-oriented screening system using a 96-well plate was developed. About 3,000 commercial chemical libraries were tested in this screening system, and 2 chemicals (0.07%) among them showed an inhibitory activity against PDF enzyme. This result showed that a new screening system can be used for the discovery of new PDF inhibitors.
The antigenic domain of the major surface protein (Nc-p43) of Neospora caninum was examined by polymerase chain reaction of its gene fragments and recombinant expression as GST fusion proteins. The fragments of Nc-p43 were as follow: a total open reading frame (OFR), T: OFR without signal sequence and C-terminal hydrophobic sequence, S: N-terminal 2/3 parts of S, A: C-terminal 2/3 parts, P; N-terminal 1/3 part, X: middle 1/3 part Y; and C-terminal 1/3 part, Z, respectively. The DNA fragments were cloned into pGEX-47 vector. Recombinant plasmids transformed into Escherichia coli of BL21 pLysS (DE3) strain were induced to express GST or GST fused fragments of Nc-p43 such as 69 kDa protein for T,66 kDa for S, 52 kDa for A,53 kDa for P, and 40 kDa proteins for X, Y, and Z, respectively in SDS-PAGE. The Nc-p43 fragments of T, S, and P reacted with a bovine serum of neosporosis while those of A, X, Y, and Z together with GST did not in the western blot. These findings suggest that the antigenic domain of Nc-p43 of N. caninum may be localized in the C-terminal 2/3 parts. Together with Al9 clone in SAGI of Toxoplasma gondii (Nam et at., 1996), the P fragment of Nc-p43 could be used as efficient antigens to diagnose and differentiate those infections with both species .
혈관 내피세포 성장인자(Vascular endotherial growth factor, VEGF)는 혈관 투과율 조절이나 혈관 생성에 관련된 단백질로 임상용으로 쓰일 가능성이 높다. 이 단백질은 고순도와 고효율로 상업적으로 대량생산이 필요하다. 유비퀴틴 융합 단백질로 온화한 조건에서 용해시키기 위해 다양한 조건을 연구하였고, pH와 변성제 변화를 시도하였다. BL21 (DE3) 대장균 숙주세포에서 pET28-a 벡터를 사용하여 재조합 대장균을 제조하여, 20 L의 회분식 배양으로 14 g/L농도의 세포배양을 하였다. 발효 후UBP1 효소 분해와 재접힘 단계를 포함한 4단계의 크로마토그래피 공정으로 구성된 정제공정으로 VEGF를 정제하였다. 유비퀴틴 융합단백질로 2 M 요소와 pH10 온화한 조건에서 VEGF의 정제가 가능하였다. 2번의 Ni-affinity 크로마토그래피컬럼을 이용하여 고효율의 재접힘과 이합체화 공정을 수행하였다. DEAE (Diethyl Amino Ethyl) 음이온 교환 컬럼을 통하여 변형체(multimeric, misfolded)단백질과 endotoxin을 제거 할 수 있었다. 젤 여과 크로마토그래피를 이용하여 dimer와 monomer를 분리 하여 이합체화 VEGF를 제조하였다. 최종 VEGF의 특성분석을 SDS-PAGE (Soidum Dodecyl Sulfate-Polyacrylamide Gel Electrophoresis) 전기영동, RP-HPLC (Reversed Phase High Performance Liquid Chromatography)으로 하여 순도 97% (RP-HPLC기준)를 얻었다.
Kim, Jin Ha;Yoo, Ha Na;Bae, Eun Hye;Jung, Yong-Tae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권12호
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pp.1776-1781
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2012
Multiple viruses such as Lily symptomless virus (LSV), Lily mottle virus (LMoV), and cucumber mosaic virus (CMV) are the most prevalent viruses infecting lilies in Korea. Leaf samples and bulbs showing characteristic symptoms of virus infection were collected from Gangwon, Chungnam, and Jeju provinces of Korea in 2008-2011. Coat protein (CP) genes of LSV and LMoV were amplified from collected samples by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and cloned into a pET21d(+) expression vector to generate recombinant CPs. The resulting carboxy-terminal His-tagged CPs were expressed in Escherichia coli strain BL21(DE3) by isopropyl-1-thio-${\beta}$-D-galactoside induction. The recombinant proteins were purified using Ni-NTA agarose beads, and the purified proteins were used as an immunogen to produce polyclonal antibodies in rabbits. The resulting polyclonal antisera recognized specifically LSV and LMoV from infected plant tissues in Western blotting assays. Indirect enzymelinked immunosorbent assay and immunocapture RT-PCR using these polyclonal antisera were developed for the sensitive, efficient, economic, and rapid detection of Lily viruses. These results suggest that large-scale bulb tests and economic detection of Lily viruses in epidemiological studies can be performed routinely using these polyclonal antisera.
Termites play an important role in the degradation of dead plant materials and have acquired endogenous and symbiotic cellulose digestion capabilities. The feruloyl esterase enzyme (FAE) gene amplified from the metagenomic DNA of Coptotermes formosanus gut was cloned in the TA cloning vector and subcloned into a pET32a expression vector. The Ft3-7 gene has 84% sequence identity with Clostridium saccharolyticum and shows amino acid sequence identity with predicted xylanase/chitin deacetylase and endo-1,4-beta-xylanase. The sequence analysis reveals that probably Ft3-7 could be a new gene and that its molecular mass was 18.5 kDa. The activity of the recombinant enzyme (Ft3-7) produced in Escherichia coli (E.coli) was 21.4 U with substrate ethyl ferulate and its specific activity was 24.6 U/mg protein. The optimum pH and temperature for enzyme activity were 7.0 and $37^{\circ}C$, respectively. The substrate utilization preferences and sequence similarity of the Ft3-7 place it in the type-D sub-class of FAE.
Yao, Zhuang;Meng, Yu;Le, Huong Giang;Lee, Se Jin;Jeon, Hye Sung;Yoo, Ji Yeon;Kim, Hyun-Jin;Kim, Jeong Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제30권11호
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pp.1720-1728
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2020
We have previously characterized AprESJ4, the major fibrinolytic enzyme from Bacillus subtilis SJ4 (Yao et al., 2019). During that study, we observed a 68 kDa protein with fibrinolytic activity. In this study, we cloned the gene (vprSJ4) encoding the 68 kDa protein, a mature Vpr and minor protease secreted by Bacillus species. vprSJ4 encodes a preproenzyme consisting of 810 amino acids (aa) including signal sequence (28 aa) and prosequence (132 aa). The mature enzyme (650 aa) has a predicted molecular weight of 68,467.35. Unlike Vprs from other B. subtilis strains, VprSJ4 has 4 additional amino acids (DEFA) at the C-terminus. vprSJ4 was overexpressed in Escherichia coli. PreproVprSJ4 was localized in inclusion bodies, and subjected to in vitro renaturation and purification by an affinity column. SDS-PAGE and western blot showed that autoprocessing of preproVprSJ4 occurred and 68 kDa and smaller proteins were produced. The optimum pH and temperature of the recombinant VprSJ4 were pH 7.0 and 40℃, respectively. Kinetic parameters of recombinant VprSJ4 were measured by using an artificial substrate, N-succinyl-ala-ala-pro-phe-p-nitroanilide. Coexpression of vprSJ4 and aprESJ4 using pHY300PLK increased the fibrinolytic activity a further 117% when compared with aprESJ4 single expression using the same vector in B. subtilis WB600.
Acetohydroxylacid synthase (E.C.2.2.1.6.,AHAS)는 박테리아, 곰팡이, 식물 등에서 필수 아미노산중 세 가지 아미노산(Val, Leu, Ile)의 생합성에 관여하는 효소중 하나이다. Haemophilus influenzae에 대한 AHAS의 효소특성을 규명하기 위하여 H. influenzae의 AHAS catalytic subunit 유전자(TIGR access code HI2585)를 pET28a 발현 벡터에 삽입시켰고, 대장균 BL21(DE3)에서 C-말단에 일련의 histidine을 갖는 재조합 단백질로 발현시켰고, Histidine-tag affinity chromatography 및 gel filtration chromatography를 이용하여 단일 단백질로 정제하였다. 정제하여 얻은 단백질은 최대 15 mg/ml까지 농축이 가능하였다. 정제된 단백질의 분자량은 SDS-PAGE 전기 영동법을 이용하여 약 63.9 kDa의 분자량을 확인하였다. AHAS 효소 활성은 discontinuous colorimetric assay방법을 이용하여 측정하였다. H. influenzae AHAS catalytic subunit의 specific activity는 3.22 U/mg 이었다. 또한AHAS의 최적 활성 온도와 pH는 각각$37^{\circ}C$와 pH 7.5이었다. AHAS 효소 활성은buffer의 종류에 따라 차이가 있었으며, 유기용매가 증가함에 따라 효소 활성도 감소하였다.
본 연구에서는 극지에서 유래한 Janthinobacterium sp. PAMC25641로부터 분리한 리파아제 유전자를 클로닝 하고 과발현시켜 정제하였으며, 이 분리한 재조합 리파아제 효소의 생화학적 특성에 대해 분석하였다. 이 효소는 $15^{\circ}C$ 이하의 온도에서 장시간 활성을 유지하는 효소로서 산업적으로 활용될 가능성이 높을 것으로 기대된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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