Objective: p66Shc, a 66 kDa protein isoform encoded by the proto-oncogene SHC, is an essential intracellular redox homeostasis regulatory enzyme that is involved in the regulation of cellular oxidative stress, apoptosis induction and the occurrence of multiple age-related diseases. This study investigated the expression profile and functional characteristics of p66Shc during preimplantation embryo development in sheep. Methods: The expression pattern of p66Shc during preimplantation embryo development in sheep at the mRNA and protein levels were studied by quantitative real-time polymerase chain reaction (RT-qPCR) and immunofluorescence staining. The effect of p66Shc knockdown on the developmental potential were evaluated by cleavage rate, morula rate and blastocyst rate. The effect of p66Shc deficiency on reactive oxygen species (ROS) production, DNA oxidative damage and the expression of antioxidant enzymes (e.g., catalase and manganese superoxide dismutase [MnSOD]) were also investigated by immunofluorescence staining. Results: Our results showed that p66Shc mRNA and protein were expressed in all stages of sheep early embryos and that p66Shc mRNA was significantly downregulated in the 4-to 8-cell stage (p<0.05) and significantly upregulated in the morula and blastocyst stages after embryonic genome activation (EGA) (p<0.05). Immunofluorescence staining showed that the p66Shc protein was mainly located in the peripheral region of the blastomere cytoplasm at different stages of preimplantation embryonic development. Notably, serine (Ser36)-phosphorylated p66Shc localized only in the cytoplasm during the 2- to 8-cell stage prior to EGA, while phosphorylated (Ser36) p66Shc localized not only in the cytoplasm but also predominantly in the nucleus after EGA. RNAi-mediated silencing of p66Shc via microinjection of p66Shc siRNA into sheep zygotes resulted in significant decreases in p66Shc mRNA and protein levels (p<0.05). Knockdown of p66Shc resulted in significant declines in the levels of intracellular ROS (p<0.05) and the DNA damage marker 8-hydroxy2'-deoxyguanosine (p<0.05), markedly increased MnSOD levels (p<0.05) and resulted in a tendency to develop to the morula stage. Conclusion: These results indicate that p66Shc is involved in the metabolic regulation of ROS production and DNA oxidative damage during sheep early embryonic development.
Among the Shc proteins, p66shc is known to be related to oxidative stress responses and regulation of the production of reactive oxygen species (ROS). The present study was undertaken to investigate the role of p66shc on endothelial nitric oxide synthase (eNOS) activity in the mouse embryonic fibroblasts (MEFs). When wild type (WT) or p66shc (-/-) MEFs were transfected with full length of eNOS cDNA, the expression and activity of eNOS protein were higher in the p66shc (-/-) MEFs. These phenomena were reversed by reconstitution of p66shc cDNA transfection in the p66shc (-/-) MEFs. The basal superoxide production in the p66shc (-/-) MEFs was not significantly different from that of WT of MEFs. However, superoxide production induced by NADPH in the p66shc (-/-) MEF was lesser than that in WT MEFs. When compared with WT MEFs, cell lysate of p66shc (-/-) MEFs showed significantly increased H-ras activity without change of endogenous H-ras expression. Our findings suggest the pivotal role of p66shc adaptor protein played in inhibition of endothelial nitric oxide production via modulation of the expression and/or activity of eNOS protein.
We evaluated the role of Tat-mediated p66shc transduction on the activation of endothelial nitric oxide synthase in cultured mouse endothelial cells. To construct the Tat-p66shc fusion protein, human full length p66shc cDNA was fused with the Tat-protein transduction domain. Transduction of TAT-p66shc showed a concentration- and time-dependent manner in endothelial cells. Tat-mediated p66shc transduction showed increased hydrogen peroxide and superoxide production, compared with Tat-p66shc (S/A), serine 36 residue mutant of p66shc. Tat-mediated p66shc transduction decreased endothelial nitric oxide synthase phosphorylation in endothelial cells. Furthermore, Tat-mediated p66shc transduction augmented TNF-${\alpha}$-induced p38 MAPK phosphorylation in endothelial cells. These results suggest that Tat-mediated p66shc transduction efficiently inhibited endothelial nitric oxide synthase phosphorylation in endothelial cells.
Histone deacetylase (HDAC) has been recognized as a potentially useful therapeutic target for cardiovascular disorders. However, the effect of the HDAC inhibitor, trichostatin A (TSA), on vasoreactivity and hypertension remains unknown. We performed aortic coarctation at the inter-renal level in rats in order to create a hypertensive rat model. Hypertension induced by abdominal aortic coarctation was significantly suppressed by chronic treatment with TSA (0.5 mg/kg/day for 7 days). Nicotinamide adenine dinucleotide phosphate-driven reactive oxygen species production was also reduced in the aortas of TSA-treated aortic coarctation rats. The vasoconstriction induced by angiotensin II (Ang II, 100 nM) was inhibited by TSA in both endothelium-intact and endothelium-denuded rat aortas, suggesting that TSA has mainly acted in vascular smooth muscle cells (VSMCs). In cultured rat aortic VSMCs, Ang II increased p66shc phosphorylation, which was inhibited by the Ang II receptor type I ($AT_1R$) inhibitor, valsartan ($10{\mu}M$), but not by the $AT_2R$ inhibitor, PD123319. TSA ($1{\sim}10{\mu}M$) inhibited Ang II-induced p66shc phosphorylation in VSMCs and in HEK293T cells expressing $AT_1R$. Taken together, these results suggest that TSA treatment inhibited vasoconstriction and hypertension via inhibition of Ang II-induced phosphorylation of p66shc through $AT_1R$.
Activation of protein kinase C (PKC) is closely linked with endothelial dysfunction. However, the effect of $PKC{\beta}II$ on endothelial dysfunction has not been characterized in cultured endothelial cells. Here, using adenoviral $PKC{\beta}II$ gene transfer and pharmacological inhibitors, the role of $PKC{\beta}II$ on endothelial dysfucntion was investigated in cultured endothelial cells. Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) increased reactive oxygen species (ROS), p66shc phosphorylation, intracellular adhesion molecule-1, and monocyte adhesion, which were inhibited by $PKC{\beta}i$ (10 nM), a selective inhibitor of $PKC{\beta}II$. PMA increased the phosphorylation of CREB and manganese superoxide dismutase (MnSOD), which were also inhibited by $PKC{\beta}i$. Gene silencing of CREB inhibited PMA-induced MnSOD expression, suggesting that CREB plays a key role in MnSOD expression. Gene silencing of $PKC{\beta}II$ inhibited PMA-induced mitochondrial ROS, MnSOD, and ICAM-1 expression. In contrast, overexpression of $PKC{\beta}II$ using adenoviral $PKC{\beta}II$ increased mitochondrial ROS, MnSOD, ICAM-1, and p66shc phosphorylation in cultured endothelial cells. Finally, $PKC{\beta}II$-induced ICAM-1 expression was inhibited by Mito-TEMPO, a mitochondrial ROS scavenger, suggesting the involvement of mitochondrial ROS in PKC-induced vascular inflammation. Taken together, the results suggest that $PKC{\beta}II$ plays an important role in PMA-induced endothelial dysfunction, and that the inhibition of $PKC{\beta}II$-dependent p66shc signaling acts as a therapeutic target for vascular inflammatory diseases.
Nafamostat mesilate (NM) is a serine protease inhibitor with anticoagulant and anti-inflammatory effects. NM has been used in Asia for anticoagulation during extracorporeal circulation in patients undergoing continuous renal replacement therapy and extra corporeal membrane oxygenation. Oxidative stress is an independent risk factor for atherosclerotic vascular disease and is associated with vascular endothelial function. We investigated whether NM could inhibit endothelial dysfunction induced by tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$ ). Human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) were treated with TNF-${\alpha}$ for 24 h. The effects of NM on monocyte adhesion, vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) and intracellular adhesion molecule-1 (ICAM-1) protein expression, p38 mitogenactivated protein kinase (MAPK) activation, and intracellular superoxide production were then examined. NM ($0.01{\sim}100{\mu}g/mL$) did not affect HUVEC viability; however, it inhibited the increases in reactive oxygen species (ROS) production and p66shc expression elicited by TNF-${\alpha}$ (3 ng/mL), and it dose dependently prevented the TNF-${\alpha}$ -induced upregulation of endothelial VCAM-1 and ICAM-1. In addition, it mitigated TNF-${\alpha}$ -induced p38 MAPK phosphorylation and the adhesion of U937 monocytes. These data suggest that NM mitigates TNF-${\alpha}$ -induced monocyte adhesion and the expression of endothelial cell adhesion molecules, and that the anti-adhesive effect of NM is mediated through the inhibition of p66shc, ROS production, and p38 MAPK activation.
The clinical use of fluoride with a well known osteogenic action in osteoporotic patients is rational, because this condition is characterized by impaired bone formation. However, its anabolic effect has not been demonstrated well in vitro. The purpose of this study was to investigate the effects of sodium fluoride on the physiological role of osteoblastic cell. Osteoblastic cells were isolated from fetal rat calvaria. The results were as follows : 1. Mineralized nodules were shown in osteoblastic cell cultures, which had been maintained in the presence of ascorbic acid and ${\beta}-glycerophosphate$ up to 21 days. When cultures were treated with pulses of 48 hr duration before apparent mineralization was occurring, 2-fold increased in their number was detected. 2. Alkaline phosphatase activity of osteoblastic cells was inhibited by sodium fluoride in dose dependent manner. 3. The effect of sodium fluoride on the osteoblastic cell proliferation was measured by the incorporation of $[^3H]$-thymidine into DNA. As a result, sodium fluoride at $1{\sim}100{\mu}M$ increased the $[^3H]$-thymidine incorporation into DNA in a dose dependent manner. 4. The signaling mechanism activated by sodium fluoride dose-dependently enhanced the tyrosine phosphorylation of the adaptor molecule $Shc^{p66}$ and their association with Grb2, one of earlier events in a MAP kinase activation pathway cascade used by a significant subset of G protein-coupled receptors. 5. The phosphorylation of CREB(cAMP response element binding protein)was inhibited by the sodium fluoride in MC3T3E1 cells. In conclusion, the results of this study suggested that the mitogenic effect of the sodium fluoride in MC3T3E1 cell was stimulated in a dose-dependent manner and suggested "an important role for the interaction between She and Grb2" in controlling the proliferation of osteoblasts.
The aim of this study was to investigate the impact of a reported p53 inhibitor, pifithrin-${\alpha}$ (PFT-${\alpha}$), on preimplantation porcine in vitro fertilized (IVF) embryo development in culture. Treatment of PFT-${\alpha}$ was administered at both early (0 to 48 hpi), and later stages (48 to 168 hpi) of preimplantation development, and its impact upon the expression of five genes related to apoptosis (p53, bak, bcl-xL, p66Shc and caspase3), was assessed in resulting d 7 blastocysts, using real-time quantitative PCR. Total cell numbers, along with the number of apoptotic nuclei, as detected by the in situ cell death detection assay, were also calculated on d 7 in treated and non-treated control embryos. The results indicate that PFT-${\alpha}$, when administered at both early and later stages of porcine IVF embryo development, increases the incidence of apoptosis in resulting blastocysts. When administered at early cleavage stages, PFT-${\alpha}$ treatment was shown to reduce the developmental competence of porcine IVF embryos, as well as reducing the quality of resulting blastocysts in terms of overall cell numbers. In contrast, at later stages, PFT-${\alpha}$ administration resulted in marginally increased blastocyst development rates amongst treated embryos, but did not affect cell numbers. However, PFT-${\alpha}$ treatment induced apoptosis and apoptotic related gene expression, in all treated embryos, irrespective of the timing of treatment. Our results indicate that PFT-${\alpha}$ may severely compromise the developmental potential of porcine IVF embryos, and is a potent apoptotic agent when placed into porcine embryo culture media. Thus, caution should be exercised when using PFT-${\alpha}$ as a specific inhibitor of p53 mediated apoptosis, in the context of porcine IVF embryo culture systems.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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