The opd gene, encoding organophosphorus hydrolase (OPH) from Flavobacterium sp. capable of degrading a wide range of organophosphate pesticides, was surface- and intracellular-expressed in Synechococcus PCC7942, a prime example of photoautotrophic cyanobacteria. OPH was displayed on the cyanobacterial cell surface using the truncated ice nucleation protein as an anchoring motif. A minor fraction of OPH was displayed onto the outermost surface of cyanobacterial cells, as verified by immunostaining visualized under confocal laser scanning microscopy and OPH activity analysis; however, a substantial fraction of OPH was buried in the cell wall, as demonstrated by proteinase K and lysozyme treatments. The cyanobacterial outer membrane acts as a substrate (paraoxon) diffusion barrier affecting whole-cell biodegradation efficiency. After freeze-thaw treatment, permeabilized whole cells with intracellular-expressed OPH exhibited 14-fold higher bioconversion efficiency ($V_{max}/K_m$) than that of cells with surface-expressed OPH. As cyanobacteria have simple growth requirements and are inexpensive to maintain, expression of OPH in cyanobacteria may lead to the development of a low-cost and low-maintenance biocatalyst that is useful for detoxification of organophosphate pesticides.
Monoclonal antibody for delta-9-tetrahydrocannabiol (THC Ab), conjugated with protein A-gold, was employed as a probe to detect THC localization in the gland and subjacent cells of chemically fixed bracts of Cannabis. THC was detected in the outer wall of the disc cells, fibrillar matrix, the surface feature of secretory vesicles, and sheath throughout development of the secretory cavity. The probe was absent from vesicles. Label was also present in anticlinal walls of disc cells and walls of dermal and mesophyll cells. Little or no THC Ab was present in disc cells and none were detected in control tissues. This distribution pattern of THC Ab was similar to that in tissues prepared by high pressure cryofixation-cryosubstitution. Consistent association of THC with wall and wall-derived materials suggests that cannnabinoids are synthesized outside the plasma membrane and bound to a wall component, where-upon they are transported to the cavity with wall materials released from the disc cell wall during development of the secretory cavity.
Kim, Sam-Woong;Kim, Young-Hee;Yoo, Ah-Young;Yu, Jong-Earn;Hur, Jin;Lee, John-Hwa;Cha, Jae-Ho;Kang, Ho-Young
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.8
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pp.1316-1323
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2007
In order to induce high levels of protein secretion, we have constructed a recombinant plasmid, designated pBP244, into which was incorporated key components of the type-II See-dependent secretion system, including LepB (signal peptidase), SecA (ATPase), and SecB (chaperone). The biological activities of the LepB, SecA, and SecB components expressed from genes harbored by pBP244 appeared to play their normal roles. In order to evaluate the protein secretion, a pspA (Streptococcus $\underline{p}neumoniae\;\underline{s}urface\;\underline{p}rotein\;\underline{A}$) gene was cloned into pBP244, resulting in pBP438. S. typhimurium harboring pBP438 grown until the stationary phase, secreted a higher level of PspA into the culture supernatants than did the strain harboring pYA3494. The strain harboring pBP438 secreted a supernatant amount 1.71-fold, a periplasmic space amount 1.47-fold, and an outer membrane amount 1.49-fold higher than that of pYA3494. S. typhimurium ${\chi}8554$ kept the $Asd^+$ plasmid pBP244 and pBP438 for 60 generations in LB broth harboring DAP, thereby indicating that pBP244 and pBP438 were quite stable in the Salmonella strain.
Inyoung Kang;Myoungjoo Koo;Hyejin Yoon;Beom Seok Park;Jin Hyun Jun;Jaewang Lee
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.50
no.3
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pp.154-159
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2023
Monospermy occurs in the process of normal fertilization where a single sperm fuses with the egg, resulting in the formation of a diploid zygote. During the process of fertilization, the sperm must penetrate the zona pellucida (ZP), the outer layer of the egg, to reach the egg's plasma membrane. Once a sperm binds to the ZP, it undergoes an acrosomal reaction, which involves the release of enzymes from the sperm's acrosome that help it to penetrate the ZP. Ovastacin is one of the enzymes that is involved in breaking down the ZP. Studies have shown that ovastacin is necessary for the breakdown of the ZP and for successful fertilization to occur. However, the activity of ovastacin is tightly regulated to ensure that only one sperm can fertilize the egg. One way in which ovastacin helps to prevent polyspermy (the fertilization of an egg by more than one sperm) is by rapidly degrading the ZP after a sperm has penetrated it. This makes it difficult for additional sperm to penetrate the ZP and fertilize the egg. Ovastacin is also thought to play a role in the block to polyspermy, a mechanism that prevents additional sperm from fusing with the egg's plasma membrane after fertilization has occurred. In summary, the role of ovastacin in monospermic fertilization is to help ensure that only one sperm can fertilize the egg, while preventing polyspermy and ensuring successful fertilization.
Grouper nervous necrosis virus (GNNV) infection causes mass grouper mortality, leading to substantial economic loss in Taiwan. Traditional methods of controlling GNNV infections involve the challenge of controlling disinfectant doses; low doses are ineffective, whereas high doses may cause environmental damage. Identifying potential methods to safely control GNNV infection to prevent viral outbreaks is essential. We engineered a virus-binding bacterium expressing a myxovirus resistance (Mx) protein on its surface for GNNV removal from phosphate-buffered saline (PBS), thus increasing the survival of grouper fin (GF-1) cells. We fused the grouper Mx protein (which recognizes and binds to the coat protein of GNNV) to the C-terminus of outer membrane lipoprotein A (lpp-Mx) and to the N-terminus of a bacterial autotransporter adhesin (Mx-AIDA); these constructs were expressed on the surfaces of Escherichia coli BL21 (BL21/lpp-Mx and BL21/Mx-AIDA). We examined bacterial surface expression capacity and GNNV binding activity through enzyme-linked immunosorbent assay; we also evaluated the GNNV removal efficacy of the bacteria and viral cytotoxicity after bacterial adsorption treatment. Although both constructs were successfully expressed, only BL21/lpp-Mx exhibited GNNV binding activity; BL21/lpp-Mx cells removed GNNV and protected GF-1 cells from GNNV infection more efficiently. Moreover, salinity affected the GNNV removal efficacy of BL21/lpp-Mx. Thus, our GNNV-binding bacterium is an efficient microparticle for removing GNNV from 10‰ brackish water and for preventing GNNV infection in groupers.
A new system for displaying proteins on the surface of Escherichia coli was developed using the Salmonella typhimurium outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif. The C-terminal deletionfusion strategy was developed to fuse the polyhistidine peptides and green fluorescent protein (GFP) to the Cterminal of the truncated functional portion of OmpC. The polyhistidine peptides of up to 243 amino acids could besuccessfully displayed on the E. coli cell surface, which allowed recombinant E. coli to adsorb up to 34.2 μmol of Cd2+ per gram dry cell weight. The GFP could also be successfully displayed on the E. coli cell surface. These results suggest that the C-terminal deletion-fusion strategy employing the S. typhimurium OmpC as an anchoring motif provides a new efficient way for the display of large proteins on the surface of E. coli.
A novel cell surface display system was developed by employing the Escherichia coli outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif. Poly-histidine (poly-His) peptides of 19, 32, 45, 84, and 162 amino acids (aa) could be successfully displayed by inserting them into the seventh exposed loop(L7) of OmpC. Recombinant cells displaying poly-His of 19, 32, 45, and 84 aa could absorb 18.9, 23.9, 26.1, and 32.0 ${\mu}mol$ of $Cd^{2+}$ per gram cell dry weight, respectively and therefore, would be useful as the biosorbents of heavy metals.
To optimize the immunological efficacy of CFC-101, an outer-membrane protein vaccine purified from relatively less pathogenic 4 different Pseudomonas aeruginosa strains, we investigated to establish its dose, administration route, interval and frequency of vaccination in mice. As expected, the 4 CFC-101 producing strains were less pathogenic than the challenging organism, P. aeruginosa GN11189. CFC-101 completely protected the death caused by P. aeruginosa at above 0.05 mg/kg vaccinized by 3 times with 7-day intervals. At the optimally effective dose of 0.2 mg/kg of CFC-101, at least 3 immunizations were necessary for complete protection against P. aeruginosa-induced death. If immunized 3 times, the immunization interval could be shortened up to 2 days to acquire the best protection against P. aeruginosa. CFC-101 was effective either by intraperitoneal, subcutaneous or intramuscular but not by oral administration. The present results show that the newly developed Pseudomonas vaccine, CFC-101, is highly effective for the protection from death caused by pseudomonal infections.
Lipopolysaccharide (LPS), found in the outer membrane of Gram negative bacteria, only exerts its toxic effects when in free form. LPS has three major parts, lipid A, the toxic component, along with a core polysaccharide and O-specific polysaccharide. LPS monomers are known to have molecular masses between 10 to 30 kDa. Under physiological conditions, LPS exists in equilibrium between monomer and vesicle forms. LPS removal by 100 kDa ultrafiltration was more efficient (99.6% of LPS removed) with a low concentration of protein (2.0 mg/ml) compared to a high concentration (20.1 mg/ml). In the presence of different detergents (0.5% Tween 20, 1.0% taurodeoxycholate and 1.0% Triton X-100), LPS removal was more efficient at low protein concentrations (2.0 mg/ml) compared to high protein concentrations (20.1 mg/ml).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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