The effects of several ions on the specific activity and isozyme patterns of cellular and secretory isoperoxidases were studied in suspension-cultured cells of rice (Oryza sativa L.). Peroxidase release into the culture medium occurred in the absence of added calcium. The addition of calcium ion greatly stimulated the secretion of cationic isoperoxidases such as C2 and C3 into the medium: a maximum 11 fold increase of secretions occurred in the presence of 5 mM $CaCl_2$, and the secretion was accomplished within 1 hour after the addition of $CaCl_2$. About a 10 fold increase of the peroxidase secretion into the medium did occur with 0. 5% NaCl, whereas cellular isoperoxidase levels were reduced notably. About a 6 fold increase of the specific activity of cellular isoperoxidase was found in 5 mM $NiCl_2$-treated cell, while $NiCl_2$ had no effect on the secretion of peroxidase into the medium. Various concentrations of KCl did not change peroxidase secretion, but 5 mM $ZnCl_2$ reduced peroxidase secretion greatly. The major secretory isoperoxidases stimulated by $CaCl_2$, NaCl and cellulase were composed of cationic isoperoxidases C2 and C3, which were found to be localized in the cell wall of rice by examination of the enzyme in the protoplast. Furthermore, the secretion rates of secretory isoperoxidases were increased rapidly when cellulase was treated in the absence of the osmotic stabilizer of 0.4 M mannitol. These results suggest that the stimulations of secretory isoperoxidase levels seem to be due to the stimulation of secretion into the culture medium of rice.
Some factors affecting the protoplast release from mycelia of Plurotus ostreatus using commercial lytic enzymes were investigated. The highest yields of the protoplast were obtained from four days old mycelia grown in mushroom complete medium. The solution of 0.8M $MgSO_4$, or KCI showed good results as the osmotic stabilizer for releasing the protoplast. Novozym 234 was the most effective among commercials tested. The concentration of the enzyme and pH of the enzyme solution were optimal at 15mg/ml and $5.5{\sim}6.0$ for the protoplast release, respectively. Mycelial digestion was optimal at about $28^{\circ}C$ and was better in the reciprocal shaking bath (75 oscillations/min) than the stationary culture.
Conditions for the release and regeneration of protoplasts form Rhizopus oryzae and intergeneric protoplast fusion between Rhizopus oryzae and Aspergillus oryzae were studied. High yields of protoplast fusion between Rhizopus oryzae and Aspergillus oxyzae were studied. High yield of protoplasts from young germilings of R. oryzae were obtained by using lytic enzymes containing chitosanase (3 mg/ml), chitinase (3 mg/ml) and Novozym 234 (5 mg/ml). 0.5M glucose was used as the osmotic stabilizer and optimum pH of buffer was determined to be pH 7.5-8.0. Under these conditions, protoplasts were formed after about 3-4 hrs incubation. Approximately, 1.0%-4.9% of these protoplasts were formed after about 3-4 hrs incubation. Approximately, 1.0%-4.9% of these protoplasts regenerated on solid medium with a soft agar overlay. We have also carried out protoplasts fusion between R. oryzae and A. oryzae and have succeeded in obtaining three types of intergeneric fusants. In these experiments, 35% PEG-4000 and 10 mM CaCl$_{2}$ were used as fsogenic agents, and auxotrophic properties were used as a genetic marker to select fusants. Complementation frequency be protoplasts fusion of A. oxyzae and R. oryzae was 4.4% * 10$^{-5}$ . The fusant strains of the first type were prototrophs showing an Aspergillus type morphology with dark-yellow sporulation, those of the second type were also Apergillus type morphology but showed no sporulation. And the strains of the third type stopped growing when fusion products grown on regeneration minimal medium were transferred to fresh minimal medium. The formation of fusion products was observed by fluorescent vital stains for complementary labelling of protoplats from R. oryzae and A. oryzae. Rhodamine 6G and fluorescein diacetate wer useful complementary vital stains of Rhizopus and Aspergillus protoplasts for visualization of requency and type (dicell, multicell) of fusion.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.24
no.6
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pp.964-969
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1995
For the effective utilization of cellulosic biomass, conidial protoplast fusion between Aspergillus niger MAN-831(${\beta}-glucosidase$) and A. wentii MAW-538(CMCase and avicelase), which produced potently cellulolytic enzymes was carried out. Optimal conditions for formation and regeneration of protoplast were conidiospore age-5 dyuas. $2-DG-30\mu\textrm{g}/ml$, preincubation time-4 hours, osmotic stabilizer-0.7M KCl, novozyme(7mg/ml)+driselase(2.5mg/ml) and reaction time of enzyme-5 hours. Optimal conditions for protoplast fusion were obtained by treatment of protoplasts with 15mM CaCl2 and 25% polyethylene glycol 4000(pH 6~7) as fusogenic agent at $36^{\circ}C$ for 25~30 minutes. The frequency was then $7.94{\times}10^{-4}$. CMCase, avicelase and ${\beta}-glucosidase$ activity of fusant F-208 strain was 1.5, 1.3, 1.2 times higher than those of parental strains, respectively.
Auxotrophs induced by UV irradiation were Iysine, arginine, methionine, and cysteine requirement. The optimal protoplast-producing conditions of Pachysolen tannophilus were obtained in 1 hr incubation treated zymolyase 0.5 mg/ml at $37-42^{\circ}C$(pH 6.5-8.5 with 0.6 M KCI as osmotic stabilizer. Cell volumn of fusants were counted in about 4 times of parents and their morphological characteristics were similar to parents which were global or egg-shaped, though in fusant, pseudohypha were observed frequently. Ethanol production of fusants were similar to parents, but arginine and methionine auxotrophs were showed increased ethanol production respectively 1.6 times and 1.25 times more than parents.
Allele rescue and sequence analysis of soo1-1 allele in Saccharomyces cerevisiae mutant LP0353 revealed that soo1-1 is identical to the previously reported ret1-1 allele, which has a base substitution of A for $G^{681}$ leading to an amino acid substitution of aspartic acid for $glycine^{227}$ in Soolp. However, it was revealed that the addition of osmotic stabilizer, such as 1.2M sorbitol can rescue the temperature sensitive phenotype of the ret1-1 mutant and that the soo1-1/ret1-1 mutation may confer defects in post-translational modification of proteins involved in the yeast cell wall biogenesis. Evidence for a putative role of 5th WD40 domain of the Soo1p/$\alpha$-COP in the construction and maintenance of cell walls was also presented by complementation test with deletion constructs of the SOOl.
The author isolated high cellulolytic fungi from natural sources and determined optimal condition of protoplast formation and fusion as fundamental step for improvement of the isolated it's cellulolytic ability. Three different cellulolytic fungi, such as Aspergillus sp., Penicillium sp. and Trichoderma sp., were isolated from soil. Their cellulolytic activities were compared with that of Aspergillus niger which was useful industrially and had cellulase activity. It was Aspergillus sp. that showed the highest activity of all these four fungi. And then it was followed by Penicillium sp., Trichoderma sp., and Aspergillus niger in order. An auxotrophic mutant of Aspergillus sp. was obtained by UV mutagenesis method. Having try to produce protoplast from mycelia, the author found that ${\beta}-glucuronidase$, at pH 6.0, was effective cell-wall lytic enzyme. And the optimal concentration of this enzyme was 5,000 unit/ml. Regeneration rates of wild type, met. auxotroph and arg. auxotroph, in presence of osmotic stabilizer, were 7. 0%, 7. 5% and 5.2%, respectively. PEG with M.W. 6,000 was effective stimulator for protoplast fusion in the concentration of 30% (W IV). In such a condition, we obtained 1.2% cell fusion rate.
To obtain basic information for the genetic analysis and breeding of Flammulina velutipes, some factors affecting the release of protoplasts from the fungus were studied. Potato Dextrose peptone Agar medium was suitable for the growth of the mycelium and the protoplast formation of F. velutipes. The culture age for the high yields of protoplast was 5 days on PDPA. Few protoplasts were formed from the mycelium cultured on Mushroom minimum Media. The highest yield of protoplasts was obtained in enzyme solution containing Novozyme 234 plus cellulase CP at 10 mg $ml^{-1}$ concentration, while a half amount of protoplasts was obtained in enzyme solution containing Novozyme 234 only. The optimal reaction time of the mycelium in the Iytic enzyme mixtures was 3 hours. The best osmotic stabilizer for the protoplast formation of the mycelium was 0.6M sucrose without buffer at pH 6.2.
This study describes the effect of myo-inositol on sustained cell division and plant regeneration from cotyledon-derived protoplast of cabbage (Brassica oleracea var. capitata). Freshly isolated protoplasts were cultured in modified Murashige and Skoog (MS) medium removed ammonia ions and containing $0.4\;mg\;l^{-1}$ thiamine HCl, $100\;mg\;l^{-1}$ myo-inositol, $2\;mgl^{-1}$ 2,4-D, $0.5\;mgl^{-1}$ BA, $30\;gl^{-1}$ sucrose and several concentrations of myo-inositol (2, 4, 6, 8, 10% (w/v)) as an osmotic stabilizer. After 3 weeks of culture in the dark at $25^{\circ}C$, the plating efficiency of cabbage protoplasts reached to $22.5{\pm}2.9%$ when cultured in modified MS medium supplemented with $2\;mgl^{-1}$ 2,4-D, $0.5\;mgl^{-1}$ BA, $30\;gl^{-1}$ sucrose and 8% (w/v) of myo-inositol at a density of $2{\times}10^5$ protoplasts/ml. Rapidly growing cell colonies after 3 weeks of culture were transferred to the same culture medium removed osmoticum. To induce shoot regeneration from calluses, calluses with about 2 mm in diameter were transferred to the MS medium containing $2\;mgl^{-1}$ BA and $0.5\;mgl^{-1}$ NAA. After further three weeks of incubation onto the medium in the light, green shoots were formed on the surface of calluses at a frequency of 30%. Upon transfer to half-strength MS basal medium, roots were formed onto the bottom of regenerated shoots without auxin treatments. These regenerated plantlets were successfully acclimatized to soil transfer, grown to normal mature plants. The cabbage protoplast culture system established in this study could be applied for production of somatic hybrids or cybrids by asymmetric protoplast fusion and mass proliferation of elite somatic clones of cabbage.
The mycelia of Pyricularia oryzae were treated with enzyme solution mixture consisting of Driselase, ${\beta}-Glucuronidase$, Cellulase, and Macerozyme R-10 for the production of protoplasts. More protoplasts were formed from mycelia of race KJ 101 of P. oryzae than that of race KI 315a in the enzyme mixtures. The number of protoplasts was decreased in the untreated control three hrs after the enzyme treatment, whereas the number was increased in the treatments with 10, 50 and 100 mM 2-mercaptoethanol, respectively. The number of protoplasts increased to reach maximum at five hrs after treatment of 10 mM 2-mercaptoethanol, but the least was found in 200 mM. The protoplasts of P. oryzae in a liquid medium containing 2.5% yeast extract, and 2% dextrose reverted to the mycelia after five hrs shaking incubation at $27^{\circ}C$. Some protoplasts produced yeast like buds and the buds were developed to irregularly shaped chains of cell protruded a germ tube like hypha from the distal cell. Once in a while a germ tube like hypha protruded directly from the protoplasts. Except in the first type of reversion, other protoplasts reverted to the normal mycelia. The reversion frequency was highest on PDA with stabilizer of 0.6 M KCl. No reversion of protoplasts occurred on water agar regaardless oftreaatments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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