Kim, Kyong;Jang, Keum-Il;Kim, Chung-Ho;Kim, Kwang-Yup
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.34
no.2
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pp.255-262
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2002
This experiment was performed to improve the stability of Lactobacillus fermentum YL-3 as a poultry probiotics. The culture conditions that improve acid tolerance of L. fermentum YL-3 were investigated by changing several factors such as medium composition, temperature, anaerobic incubation and culture time. Also, L. fermentum YL-3 was encapsulated with alginate, calcium chloride and chitosan. The stable culture conditions of L. fermentum YL-3 were obtained in anaerobic incubation using MRS media without tween 80 for 20 hour at $42^{\circ}C$. The capsule after treatment with 1% chitosan was formed close membrane by a bridge bond. Immobilization of L. fermentum YL-3 in capsule was observed by confocal laser scanning microscopy, and cell viability was $2.0{\times}10^9\;CFU/g$ above the average. L. fermentum YL-3 capsule after acid treated at pH 2.0 for 3 hour survived about 40%, but those encapsulated with 1% chitosan survived about 65%. Survival rate of capsule stored at room temperature decreased about $2{\sim}3$ log cycle during 3 weeks, but viability of capsule stored at $4^{\circ}C$ during 3 weeks maintained almost $10^8\;CFU/g$ levels.
This study was conducted to investigate optimum conditions for the production of cellulose-degrading crude enzymes by an isolated marine bacterium. A marine microorganism producing an extracellular cellulose-degrading enzyme was isolated from the red seaweed, Grateloupia elliptica Holmes. The isolated bacterium was identified as Cellulophaga lytica by 16S ribosomal RNA gene sequence analysis and physiological profiling and designated as Cellulophaga lytica PKA 1005. The optimum conditions for the growth of Cellulophaga lytica PKA 1005 were pH 7, 2% NaCl, and $30^{\circ}C$ with 36 h incubation time. To obtain the crude enzyme, the culture medium of the strain was centrifuged for 30 min at $12,000{\times}g$ and $4^{\circ}C$, and the supernatant was used as crude enzyme. The optimum conditions for the production of the cellulose-degrading crude enzyme were pH 8, $35^{\circ}C$, 8% carboxyl methyl cellulose, and 60 h reaction time.
Lactoferrin (LF) is a multifunctional, iron-binding glycoprotein found in physiological secretions of mammals. LF shows antibacterial, antiviral and antifungal activities. In the present study, a gene encoding the N-terminal lobe of human lactoferrin (hLF) was isolated, cloned and expressed in methylotrophic yeast, Pichia pastoris. The recombinant hLF-N (rhLF-N) protein was secreted into the culture medium at the level of $458{\mu}g/ml$ in 3 L fermentor. The size of purified hLF-N was estimated as 35 kDa when analyzed by SDS-PAGE and western blotting. The rhLF-N was further confirmed by immunodiffusion using the anti-hLF polyclonal antibody. The expression profile analysis by qRT-PCR showed that the relative mRNA expression of rhLF-N was maximal after 2-3 days of methanol induction and reduced gradually at 4 days. The purified rhLF-N showed broad antibacterial activities against the pathogens such as Staphylococcus aureus, E. coli, Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cepacia, and Salmonella typhimurium. However, rhLF-N showed relatively lower activity when compared to peptides derived from LF. In spite of this weak activity, the rhLF-N expressed in P. pastoris might be more advantageous for the industrial application, because rhLF-N is secreted into the culture medium and the production can also be increased by optimization of culture conditions.
This study was performed to investigate the optimum condition of protease production from submerged culture of oak mushroom (Lentinula edodes, Sanlim No. 5) and its enzymatic features. Among several combinations of media, the combination of wheat bran, corn flour, water and corn oil (WB+CF+W+ CO) yielded 84.8 U/g of maximum protease activity. This combination of ingredients, in spite of not being particularly protein-rich in comparison to the other media, allowed for good growth of the fungus and maximal protease production. Comparison of different growth medium liquids indicated that demineralized water afforded the best growth of the fungus and the highest protease activity. Acetate buffer and acidified water negatively affected The protease production peaked around 72 hr of incubation, and decreased thereafter. The molecular weights of produced protease were about 45,000 by Sephadex G-75 chromatography. The pH optimum for protease activity was 4, while maximal activity incubated at 37℃ for 1 hr was observed between pH 4~6. The optimum temperature of this protease was 55℃, and the enzyme was active over a broad temperature range (30~60℃), indicating that this protease would be suitable for a wide range of applications where. different pH and temperature are necessary, such as digestive aids, food industry, beer and tannery industries.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.33
no.1
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pp.176-181
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2004
Gluconacetobacter hansenii TF-2, an isolate from black tea fungus, was statically cultivated to ferment cellulose gel from citrus juice. The juice prepared by press filtering of peeled citrus fruit contained 135.5 mg of total sugar/mL, 1.23% of total acid, and average pH of the juice was 3.98. The bacterium produced cellulose gel optimally on the surface of culture broth containing 17% of citrus juice and 10$^{\circ}$Brix of total sugar. The optimum temperature was 3$0^{\circ}C$ for producing acetic acid and gel formation. The bacterium could not produce acetic acid on gel formation at 4$0^{\circ}C$. The optimum pH was 3.0∼4.0 but was not significantly different between pH 3.0∼4.0. The cultivation for 18 days under optimal conditions produced gel as 14.2$\pm$0.6 mm of thickness and acids equivalent to 1.90$\pm$0.22% of acetic acid. The pH of culture broth was stabilized at 2.6∼2.8 during the cultivation. Remaining sugar content was 27.1$\pm$4.2 mg/mL of total sugar and 6.9 mg/mL of reducing sugar. The gel productivity was 137.8$\pm$9.7 g/L.
To increase the efficiency of esterase production by Bacillus, high cell-density culture of recombinant Escherichia coli through fed batch fermentation was tested. Cells were cultured to $OD_{600}$ of 76 (35.8 g/l DCW) with dissolved oxygen level controlled to least above 30% air saturation by supplying pure oxygen. Cells were cultured to an $OD_{600}$ of 90 (42.4 g/l DCW) with glucose feeding controlled to at least 1 g/l. However, the cells reached stationary phase at the late stage of culture, despite glucose being supplied. Cells were cultured to an $OD_{600}$ of 185 (87.3 g/l DCW) by supplying additional medium with fortified yeast extract. To increase the productivity of the recombinant protein, cell growth and esterase productivity based on induction time were evaluated. Late exponential phase induction for esterase production in fed batch fermentation resulted in maximum optical density $OD_{600}$ of 190 (89 g/l DCW) and maximum esterase activity of 1745 U/l, corresponding to a 5.8-fold enhancement in esterase production, compared to the early exponential phase induction. In this study, we established fermentation methods for achieving maximum production of Bacillus-derived esterase by optimizing IPTG induction time in high-cell density culture by supplying pure oxygen and a nitrogen source.
To produce novel bioactive flavonoids, Gericudranin A and Gericudranin B, a cell culture system of Cudrania tricuspidata including callus induction and optimization of culture conditions was established. Friable calli were efficiently induced from the hypocotyl segments of seedlings on B5 medium supplemented with 1.0 mg/L NAA, 0.1 mg/L kinetin and 3% sucrose. Several factors were optimized for the Gericudranin production and the cell growth in suspension cultures. Low level of basal salt medium (1/8 MS), 1.0 mg/L IAA and 0.1 mg/L zeatin, and high level of sucrose (5%) were effective for the production of Gericudranins, whereas WPM with 1.0 mg/L NAA, 0.1 mg/L zeatin, and 5% sucrose were more effective for the cell growth. When cells were cultured on MS liquid medium supplemented with 1.0 mg/L IBA, about 2200 $\mu\textrm{g}$/g dry wt of Gericudranin A could be produced. The level might be about 10 times of the native inner bark. About 2350 $\mu\textrm{g}$/g dry wt of Gericudranin B was also produced on MS liquid medium with 5% sucrose, 1.0 mg/L NAA, 0.1 mg/L kinetin. The content was estimated about 3 times of the level of native inner bark.
Peniphora sp. JS17, isolated from forest old tree, produced extracellular enzymes that decolorized human hair melanin. The JS17 strain had laccase and manganese peroxidase activity while it did not has lignin peroxidase activity. Batch culture indicated that the melanin decolorization activity of JS17 strain originated from laccase. The culture conditions to maximize the production of melanin bleaching enzymes from Peniophora sp. JS17 mycelia were investigated. Among the tested media for the laccase production, minimal medium (2% glucose, 0.2% malt extract, 0.1% $KH_2PO_4$, 0.4% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$) showed the highest activity of laccase. Then, to optimize the culture condition for the laccase activity, the influence of various carbon and nitrogen sources was investigated in minimal medium. Among various carbon and nitrogen sources, 2% xylose and 0.4% tryptone showed the highest production of laccase, respectively. The enzyme was purified using $(NH_4)_2SO_4$ precipitation and Hitrap Q sepharose column, and the purified enzyme showed two isoenzymatic bands with molecular masses of about 70 kDa by SDS-PAGE. The melanin decolorization activity was 77% and 55% within 48 h in the presence of 1-hydroxybenzotriazole (HBT) and syringaldehyde, respectively, whereas only about 9% melanin decolorized in case of no mediator.
Kim, Sang-Gyeong;Seo, Heon-Seok;Lee, Jong-Won;Sin, Dong-Geon;Lee, Jae-Gwan;Kim, Hyeon-Min;Kim, Jae-Sik;Seo, Jang-Su
KSBB Journal
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v.14
no.5
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pp.593-599
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1999
In this study, optimal conditions to infect CD34 positive cells containing hematopoietic stem cells obtained from cord blood and bone marrow were found using two different retroviral vectors expressing human growth hormone (hGH) and $\beta$-galactosidase. CD34 positive cells were successfully infected with recombinant retroviruses only when the CD34 positive cells were co-cultured with packaging cells secreting recombinant retroviruses. To find the highest infection efficiency for the gene transfer, CD34 positive cells from cord blood were co-cultured with packaging cells secreting recombinant retroviruses encoding E. coli lacZ gene. The highest infection efficiency was obtained when CD34 positive cells were cultured for 3 days, and then co-culturing was done for another 2 days. When CD34 positive cells from bone marrow were co-cultured with packaging cells secreting recombinant retroviruses encoding hGH gene, the maximum amount of hGH was also secreted at the same conditions found above, i.e. 3 days of culture and 2 days of co-culture. These results show that there are optimal conditions for the gene transfer into hematopoietic stem cells regardless of sources of target cells or retroviral vectors used to infect.
Erythritol is of interest as a low calorie sweetner. Penicillium sp. KJ8l was screened for erythritol producer in nature. The effect of culture conditions on erythritol production by Penicillium sp. KJ81 was examined. This strain produced about 12 g/l erythritol and a small amout of glycerol. Erythritol was not produced from mannitol, arabinose, sorbitol, and xylose but from glucose, sucrose, fructose, mannose, lactose, maltose, and galactose. This strain was able to produce erythritol in a medium containing 60% sucrose but demonstrated the highest productivity of erythritol in a 30% sucrose medium. The highest yield in Penicillium sp. KJ8l was obtained when 0.5% ammonium sulfate was added to the medium containing 30% sucrose and 0.5% yeast extract. Penicillium sp. KJ81 produced 28.2 g/l erythritol when this strain was cultured in the medium containing 30% sucrose, 0.5% yeast extract, 0.5%$(NH_{4})_{2}SO_{4}$ 0.1% $KH_{2}PO_{4}$ and 0.01% $MgCl_{2}$ under the condition of 1 vvm aeration and 200 rpm agitation at $37^{\circ}C$ for 10 days in 5ι jar fermentor.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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