2'-Fucosyllactose (2'-FL), the most abundant fucosylated oligosaccharide in human milk, has multiple beneficial effects on human health. However, its biosynthesis by metabolically engineered Escherichia coli is often hampered owing to the insolubility and instability of α-1,2-fucosyltransferase (the rate-limiting enzyme). In this study, we aimed to enhance 2'-FL production by increasing the expression of soluble α-1,2-fucosyltransferase from Helicobacter pylori (FucT2). Because structural information regarding FucT2 has not been unveiled, we decided to improve the expression of soluble FucT2 in E. coli via directed evolution using a protein solubility biosensor that links protein solubility to antimicrobial resistance. For such a system to be viable, the activity of kanamycin resistance protein (KanR) should be dependent on FucT2 solubility. KanR was fused to the C-terminus of mutant libraries of FucT2, which were generated using a combination of error-prone PCR and DNA shuffling. Notably, one round of the directed evolution process, which consisted of mutant library generation and selection based on kanamycin resistance, resulted in a significant increase in the expression level of soluble FucT2. As a result, a batch fermentation with the ΔL M15 pBCGW strain, expressing the FucT2 mutant (F#1-5) isolated from the first round of the directed evolution process, resulted in the production of 0.31 g/l 2'-FL with a yield of 0.22 g 2'-FL/g lactose, showing 1.72- and 1.51-fold increase in the titer and yield, respectively, compared to those of the control strain. The simple and powerful method developed in this study could be applied to enhance the solubility of other unstable enzymes.
Galactooligosaccharides (GalOS) were efficiently produced by partially purified $\beta$-galactosidase from the yeast strain Bullera singularis ATCC 24193. Ammonium sulfate precipitation and ultrafiltration methods were used to prepare the enzyme. The enzyme activity decreased at $50^{\circ}C$ and above. A maximum yield of 40% (w/w) GalOS, corresponding to 120 g of GalOS per liter, was obtained from 300 g per liter of lactose solution at $45^{\circ}C$, pH 3.7 when the lactose conversion was 70%. The yield of GalOS did not increase with increasing initial lactose concentration but the total amounts of GalOS did. Volumetric productivity was 4.8 g of GalOS per liter per hour. During this reaction, the by-products, glucose and galactose, were found to inhibit GalOS formation. Reaction products were found to be comprised of disaccharides and trisaccharides according to TLC and HPLC analyses. We propose the structure of the major product, a trisaccharide, to be ο-$\beta$-D-galactopyranosyl-(l-4)-ο-$\beta$-D-galactopyranosyl-(l-4)-$\beta$-D-glucose (4'-galactosyl lactose).
Kim, Yang-Woo;Chun, Sung-Sik;Chung, Young-Chul;Sung, Nack-Kie
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.23
no.6
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pp.652-658
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1995
We attempted simultaneous expression of genes coding for endoglucanase and $\beta $-glucosidase from Pseudomonas sp. by using a synthetic two-cistron svstem in Escherichia coli and Saccharomyces cerevisiae. Two-cistron system, 5'--tac promoter-endoglucanase gene--$\beta $-glucosidase gene-- 3', 5'-tac promoter--$\beta $-glucosidase gene--endoglucanase gene--3' and 5'-tac promoter--endoglucanase gene--SD sequence--$\beta $-glucosidase gene--3, were constructed, and expressed in E. coli and S. cerevisiae. The E. coli and S. cerevisiae contained two-cistron system produced simultaneously endoglucanase and $\beta $-glucosidase. The recombinant genes contained the bacterial signal peptide sequence produced low level of endoglucanase and $\beta $-glucosidase in S. cerevisiae transformants: Approximately above 44% of two enzymes was localized in the intracellular fraction. The production of endoglucanase and $\beta $-glucosidase in veast was not repressed in the presence of glucose or cellobiose. The veast strain contained recombinant DNA with two genes hydrolyzed carboxvmethyl cellulose, and these endoglucanase and $\beta $-glucosidase degraded CMC synergistically to glucose, cellobiose and oligosaccharide. This result suggests the possibility of the direct bioconversion of cellulose to ethanol by the recombinant yeast.
The milk of transgenic animals may provide an attractive vehicle for large-scale production of hEPO. Since glycosylation is cell type specific, recombinant human EPO (rhEPO) produced in different host cells contain different patterns of oligosaccharides, which could affect the biological functions. However, there have been no reports on the characteristics of rhEPO derived from milk of transgenic animals. To address this objective, several transgenic mice by using pWAPhEPO and/or pBC1hEPO expression vector were produced. However, 2 lines of pWAPhEPO founder female mouse died during late gestational day (day 18) before offspring could be obtained. They showed a severe splenomegaly, Unlike those of pWAPhEPO, mammary gland epithelial cells from biopsies of lactating pBC1hEPO transgenic mice had marked immunoreactivity to EPO and any activity was not detected in other tissues. The expression level of rhEPO is about 0.7% of mammary gland cellular total soluble proteins and an amount of 300~500 mg/L rhEPO is secreted into milk. Furthermore, the pBC1hEPO transgenic mice transmitted this character to their progeny in mendelian manner. In order to determine the extent of glycosylation variation, N-linked oligosaccharide structures present in the milk-derived rhEPO were characterized. Most of milk-derived rhEPO is fully glycosylated. the biological activity of milk-derived rhEPO was comparable to that of purified CHO-derived rhEPO, and milk-derived rhEPO showed relatively stable after freezing and thawing. Taken together, the results illustrate the potential of transgenic animals in the large-scale production of biopharmaceuticals.
Recently, we found that Arthrobacter crystallopoietes N-08 isolated from soil directly produces trehalose from maltose by a resting cell reaction. In this study, the optimal set of conditions and substrate specificity for the trehalose production using resting cells was investigated. Optimum temperature and pH of the resting cell reaction were $55^{\circ}C$ and pH 5.5, respectively, and the reaction was stable for two hours at $37{\sim}55^{\circ}C$ and for one hour at the wide pH ranges of 3~9. Various disaccharide substrates with different glycosidic linkages, such as maltose, isomaltose, cellobiose, nigerose, sophorose, and laminaribiose, were converted into trehalose-like spots in thin layer chromatography (TLC). These results indicated broad substrate specificity of this reaction and the possibility that cellobiose could be converted into other trehalose anomers such as ${\alpha},{\beta}$- and ${\beta},{\beta}$-trehalose. Therefore, the product after the resting cell reaction with cellobiose was purified by ${\beta}$-glucosidase treatment and Dowex-1 ($OH^-$) column chromatography and its structure was analyzed. Component sugar and methylation analyses indicated that this cellobiose-conversion product was composed of only non-reducing terminal glucopyranoside. MALDI-TOF and ESI-MS/MS analyses suggested that this oligosaccharide contained a non-reducing disaccharide unit with a 1,1-glucosidic linkage. When this disaccharide was analyzed by $^1H$-NMR and $^{13}C$-NMR, it gave the same signals with ${\alpha}$-D-glucopyranosyl-(1,1)-${\alpha}$-D-glucopyranoside. These results suggest that cellobiose can be converted to ${\alpha},{\alpha}$-trehalose by the resting cells of A. crystallopoietes N-08.
This study conducted to investigate the effects of feeding Fermkito 50 on the egg production and egg quality hens. One hundred forty four, 50 weeks old ISA brown commercial layer, were used in a 28 d growth assay. Dietary treatments included 1) control(basal diet), 2) FERMO.5(based diet+0.5% Fermkito), 2) FERM1.0(basal diet+1.0% Fermkito), 3) FERM+YU(basal diet+0.5% Fermkito and 0.05% yucca extract). Overall (d 0 to 28), egg production tended to increase as the concentration of Fermkito 50 in the diets was increased without significant difference(P〈0.05). As adding level of Fermkito 50 increased in the diets, egg weight tended to increase. Laying hens fed FERM+YU diet were higher egg weight than laying hens fed control diet(P〈0.05). Egg shell breaking strength was not influenced by Fermkito 50. As adding level of Fermkito 50 was increased in the diets, yolk color tended to increase. Laying hens fed FERM+YU diet had improved egg yolk index compared to laying hens fed control diet. Total-cholesterol of egg yolk in FERM1.0 and FERM+YU treatments was significantly decreased compared to that in control diet(p〈0.05). Total-cholesterol and triglyceride concentrations in serum tended to increase as the concentration of Fermkito 50 in the diets was decreased(P〈0.05). Also, HDL-cholesterol concentration in serum with FERM1.0 and FEUM+YU treatments was significantly higher than control diet(P〈0.05). However, LDL-cholesterol concentration in serum with FERM1.0 and FERM0.5+YU treatments was significantly lower than control diet(P〈0.05). In conclusion, supplemental Fermkito 50 in laying hen diets can be used to improve egg quality.
Kim, Deuk-Su;Shao, Yingxue;Lee, Jeong-Hwan;Yoon, Joon-Sik;Park, Se-Ra;Choo, Young-Kug;Hwang, Kyung-A;Ko, Ki-Sung
Korean Journal of Environmental Agriculture
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v.30
no.4
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pp.390-394
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2011
BACKGROUND: Plant expression system for mass production of recombinant proteins has several advantages over other existing expression systems with economical and safety issues. Breast cancer is a cancer originating from breast tissue and comprises almost 25% of all cancers in women world widely. Lewis-Y antigen is difucosylated oligosaccharide and is carried by glycoconjugates at cancer cell surface. In this study, the anti-breast cancer mAb BR55, which recognizes the epitope Lewis-Y, was expressed in the plant expression system. METHODS AND RESULTS: We have developed plant system for production of mAb BR55 with or without KDEL (the ER retention signal). This ER retention signal was attached to C-terminus of protein to help retain the recombinant glycoprotein carrying oligomannose glycans and enhance glycoprotein accumulation. PCR analysis was performed and confirmed the presence of recombinant genes. Western blot validated that the recombinant proteins mAb BR55 with or without KDEL were expressed in transgenic plants, moreover, the expression level of the mAb BR55 with KDEL was higher compared to the mAb BR55 without KDEL. CONCLUSION: These results indicate that KDEL fusion is a good way to produce proteins and plant can be an ideal expression system to obtain proteins and enhance accumulation of proteins.
Lactobacillus casei, one of the most widely used probiotics, has been reported to alleviate multiple diseases. However, the effects of this species on intestinal diseases are strain-specific. Here, we aimed to screen L. casei strains with inflammatory bowel disease (IBD)-alleviating effects based on in vitro physiological characteristics. Therefore, the physiological characteristics of 29 L. casei strains were determined, including gastrointestinal transit tolerance, oligosaccharide fermentation, HT-29 cell adhesion, generation time, exopolysaccharide production, acetic acid production, and conjugated linoleic acid synthesis. The effects of five candidate strains on mice with induced colitis were also evaluated. The results showed that among all tested L. casei strains, only Lactobacillus casei M2S01 effectively relieved colitis. This strain recovered body weight, restored disease activity index score, and promoted anti-inflammatory cytokine expression. Gut microbiota sequencing showed that L. casei M2S01 restored a healthy gut microbiome composition. The western blotting showed that the alleviating effects of L. casei M2S01 on IBD were related to the inhibition of the NF-κB pathway. A good gastrointestinal tolerance ability may be one of the prerequisites for the IBD-alleviating effects of L. casei. Our results verified the efficacy of L. casei in alleviating IBD and lay the foundation for the rapid screening of L. casei strain with IBD-alleviating effects.
This study was conducted to produce oligosaccharides from buckwheat hull by using commercial enzymes. Yields of oligosaccharides obtained by enzymatic hydrolysis of the cellulose and hemicellulose fractions were 132.37 and 393.04 g/kg, respectively. Xylose, glucose, fructose, xylobiose, xylotriose, cellobiose, and cellotriose were detected in the hydrolysate produced from buckwheat hull. Antioxidant activity of oligosaccharide from cellulose fraction (OSC) reduced with increasing hydrolysis time; however, the antioxidant activity of oligosaccharide from hemicellulose fraction (OSF) increased as the hydrolysis time was prolonged. OSF and OSC showed higher increase in viable counts compared to the control. As a result, oligosaccharides produced from buckwheat hull by enzymatic hydrolysis showed antioxidant activity and prebiotic effects. It is suggested that utilization of oligosaccharides produced from buckwheat hull as functional food materials may be improved when hydrolysis time and conditions are controlled for this purpose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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