국내 분리주의 BmNPV를 이용한 전이벡터 pBm-KSK1에 외래 유전자로서 E. coli $\beta$-galactosidase 유전자를 클로닝하여 제작한 재조합 바이러스 BmK1-lacZ의 발현 증대를 위해 재조합 바이러스 감염세포주에 누에 체액의 첨가에 따른 발현효율을 조사하였다. 재조합 바이러스의 배양세포주에서 외래 유전자 발현에 대한 누에 체액의 첨가 효과는 FBS가 2% 또는 5% 일때 누에 체액 2%의 소량 첨가만으로도 누에체액이 첨가되지 않았을 때에 비해 약 2배 이상 높은 발현량을 확인하였으며, 그 보다 FBS가 전혀 첨가되지 않고 단지 누에 체액 2% 첨가만으로도 FBS 첨가시와 마찬가지의 높은 발현량을 보여 누에 체액에 의한 FBS의 대체 효과를 나타내었다.
The Glycoprotein D (gD) gene of the HSV-1 strain F was cloned, sequenced, recombinated into the HcNPV (Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus) expression vector and expressed in insect cells. The gD gene was located in the 6.43 kb BamHI fragment of the strainF. The open reading frame (ORF) of the gD gene was 1,185 by and codes 394 amino acid residues. Recombinant baculoviruses, GD-HcNPVs, expressing the gD protein were constructed. Spodoptera frugiperda cells, infected with the recombinant virus, synthesized a matured gX-gD fusion protein with an approximate molecular weight of 54 kDa and secreted the gD proteins into the culture media by an immunoprecipitation assay The fusion gD protein was localized on the membrane of the insect cells, seen by using an immunofluorescence assay The deduced amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. These results indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins.
The baculovirus gp64 glycoprotein is a major component of the envelope protein of budded virus (BV). It has been shown that the gp64 glycoprotein plays an essential role in the infection process, especialy fusion between virus envelope and cellular endosomic membrane. Recently we reported optimal conditions required for gp64-mediated membrane fusion in pGP64 DNA transfected Spodoptera frugiperda (Sf9) cells (H. J. Kim and J. M. Yang, Jour, Microbiology, 34.7-14). In order to investigate the role of hydrophobicity within the fusion domain of the gp64 glycoprotein for membrane fusion, 13 mutants which have substitution mutation within hydrophobic region I were constructed by PCR-derived site-derected mutagenesis. Each mutated gp64 glycoproteins was transiently expressed by transfecting plasmid DNA into Spodoptera frugiperda (Sf9) cells. Oligomerization of the transisently expressed gp64 glycoproteins was a nalysed by running them on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis under non-reducing condition followed by immunoblotting. All of the mutant gp64 glycoproteins expect cysteine-228 were able to form trimers. These results suggest that hydrophobic region I of the gp64 may not be responsible for the oligomerization of the gp64 glycoprotein.
Borrelina virus was inoculated into Hyphantrea cunea DRURY in the labolatory and in the field. The pathogenecity of Borrelina virus upon Bompyx mori L. and Dendrolinus spectabilis BUTLER, too, was examined with following results. 1) $10^8$/ml, $10^7$/ ml, $10^6$/ml concentration of nuclear-polyhedrosis virus was inoculated into the larvae of H.cunea at various ages. The corrected mortality of the larvae were 97.4%, 95.2%, 94.7% in the 3rd instar, and 88.6%, 73.6%, 62.5% in the 6th instar, respectively, with three different concentration of NPV. 2) The symptom of disease of the larvae appeared on 4days after inoculation and most of the larvae were dead within 18 days. 3) The youngest larvae treated with the highest concentration of NPV showed the highest mortality. With older larvae and lower concentriton treated, it appeared that the time needed for death grew longer, marking slower death curve. 4) When we sprayed NPV of $10^6$/ml concentration to H. cunea in the field, the mortality was 94.8% in the first year, 84.6% in the second year and 78.3% in third year. By this, we could admit the continuous effects of the pathogens for several years. 5) About the larvae of B. mori of 3rd and 5th instar and D.spectabilis of 3rd instar inoculated with $10^8$/ml concentration of inoclum, we could not see any pathogenic effects.
Constructions of a transfer vector and a recombinant baculovirus using the thymidine kinase gene of the Herpes simplex virus type 1 strain F (HSV -1) were carried out. Newly cloned transfer vector, pHcgXIIIB, was constructed by insertion of the glycoprotein gX gene signal peptide sequence of Pseudorabies virus into the baculovirus vector pHcEV-IV. The gX sequence was inserted just downstream from the promoter for the polyhedrin gene of the Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV). HSV-1 thymidine kinase(tk) gene (1.131 kb) was used as a candidate gene for transferring into the baculovirus expression system. The tk gene was inserted into a BamHI site downstream from the gX sequence-promoter for the polyhedrin gene in the pHcgXIIIB transfer vector and was transferred into the infectious lacZ-HcNPV expression vector. Recombinant virus was isolated and was named gX-TK-HcNPV. The recombinant virus produced a 45 kDa gX-TK fusion protein in Spodoptera frugiperda cells, which was confirmed by Western blot analysis. Microscopic examination of gX-TK-HcNPV-infected cells revealed normal multiplication. Fluorescent antibody staining indicated that the gX-TK fusion protein was present in the cytoplasm. These results indicated that the transfer vector successfully transferred the gX-tk gene into the baculovirus expression system.
Baculovirus Hyphantrin. cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV) insecticide containing the insecticidal protein (ICP) gene from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD1 was constructed using a lacZ-HcNPV system. The ICP ($\delta$-endotoxin) gene was placed under the control of the polyhedrin gene promoter of the HcNPV. A polyhedrin-negative virus was derived and named ICP-HcNPV insecticide. Then, the insertion of the ICP gene in the ICP-HcNPV genome was confirmed by Southern hybridization analysis. Polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) analysis of the Spodoptera frugiperda cell extracts infected with the ICP-HcNPV showed that the ICP was expressed in the insect cells as 130 kDa at 5 days post-infection. The ICP produced in the cells was present in aggregates. When extracts from the cells infected with the ICP-HcNPV were fed to 20 Bombyx mori larvae, the following mortality rate was seen; 8 larvae at 1 h, 10 larvae at 3 h, and 20 larvae at 12 h. These data indicate that the B. thuringiensis ICP gene was expressed by the baculovirus insecticide in insect cells and there was a high insecticidal activity. The biological activities of the recombinant virus ICP-HcNPV were assessed in conventional bioassay tests by feeding virus particles and ICP to the insect larvae. The initial baculovirus insecticide ICP-HcNPV was developed in our laboratory and the significance of the genetically engineered virus insecticides is discussed.
To investigate the expression efficiency of new transfer vector of Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV), Escherichia coli lacZ gene was inserted into new transfer vector pBmKSK1, under the control of polyhedrin promoter and expressed in BmN-4 cells and larvae of silkworm, Bombyx mori. The recombinant virus containing lacZ gene was isolated from BmN-4 cells coinfected with transfer vectro pBmKSK1-LacZ and wild type BmNPV genome, and analysed by Southern blotting. The expression of ${\beta}$-galactosidase was characterized by SDS-PAGE, Western blotting and ${\beta}$-galactosidase activity assay. The results showed that the level of expression in silkworm larvae was higher than that of BmN-4 cells.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제4권1호
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pp.57-62
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2002
Cationic liposomes complexed with DNA have been extensively utilized for the delivery of reporter or therapeutic genes both in culture and in vivo. We investigated and determined the optimum conditions of a cationic liposome, composed of dimethyldioctadecy-lammonium bromide (DDAB) and dioleoyl phosphati-dylethanolamine UOPE), mediated a reporter plasmid expressing luciferase into insect cell lines (Sf-21 and Bm-N) and silkworm larvae. Together the data demonstrated that Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) genomic DNA (128 kb) was successfully transfected into Bm-5 cells using this liposome. These results suggest that DDAB/DOPE liposome will be useful as delivery agents for gene transfer to insect cells both in vitro and in vivo.
A chitinase cDNA named CHT1 was cloned from the hard tick, Haemaphysalis longicornis, and the enzymatic properties of its recombinant proteins were characterized. The CHT1 cDNA encodes 930 amino-acid (aa) residues including a 22 aa putative signal peptide, with the calculated molecular mass of the putative mature protein 104 kDa. The E coli-expressed rCHT1 exhibited weak chitinolytic activity against $4MU-(GlcNAc)_3$. The rCHT1 protein with higher activity was obtained using recombinant Autographa californica multiple nuclear polyhedrosis virus (AcMNPV), which expresses rCHT1 under polyhedrin promoter. These findings suggest that the rCHT1 expressed in baculovirus-mediated Sf 9 cells has a high activity than E coli-expressed rCHT1.
Heliothis zea (HzAM1) insect cells were immobilized in microspheres by sodium-cellulosesulfate (NaCS) and polydiallyldimethylammoniumchloride (PDADMAC). The highest HzAMl cell density was $7.5{\times}10^7$ cells/mL in the microspheres. After infection of the immobilized cells by Heliothis zea single nuclear polyhedrosis virus (HzSNPV), the highest concentration of HzSNPV (polyhedral inclusion bodies: PIBs) produced was $2.87{\times}10^{10}$ PIBs/mL in the microspheres.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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