Since the 2009 pandemic human H1N1 influenza A virus emerged in April 2009, novel reassortant strains have been identified throughout the world. This paper describes the detection and isolation of reassortant strains associated with human pandemic influenza H1N1 and swine influenza H1N2 (SIV) viruses in swine populations in South Korea. Two influenza H1N2 reassortants were detected, and subtyped by PCR. The strains were isolated using Madin-Darby canine kidney (MDCK) cells, and genetically characterized by phylogenetic analysis for genetic diversity. They consisted of human, avian, and swine virus genes that were originated from the 2009 pandemic H1N1 virus and a neuraminidase (NA) gene from H1N2 SIV previously isolated in North America. This identification of reassortment events in swine farms raises concern that reassortant strains may continuously circulate within swine populations, calling for the further study and surveillance of pandemic H1N1 among swine.
Wang, Jing;Jiao, HongBo;Zhang, XinFeng;Zhang, YuanQing;Sun, Na;Yang, Ying;Wei, Yi;Hu, Bin;Guo, Xi
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.31
no.9
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pp.1191-1199
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2021
Enteropathogenic Escherichia coli (EPEC), which belongs to the attaching and effacing diarrheagenic E. coli strains, is a major causative agent of life-threatening diarrhea in infants in developing countries. Most EPEC isolates correspond to certain O serotypes; however, many strains are non-typeable. Two EPEC strains, EPEC001 and EPEC080, which could not be serotyped during routine detection, were isolated. In this study, we conducted an in-depth characterization of their putative O-antigen gene clusters (O-AGCs) and also performed constructed mutagenesis of the O-AGCs for functional analysis of O-antigen (OAg) synthesis. Sequence analysis revealed that the occurrence of O-AGCs in EPEC001 and E. coli O132 may be mediated by recombination between them, and EPEC080 and E. coli O2/O50 might acquire each O-AGC from uncommon ancestors. We also indicated that OAg-knockout bacteria were highly adhesive in vitro, except for the EPEC001 wzy derivative, whose adherent capability was less than that of its wild-type strain, providing direct evidence that OAg plays a key role in EPEC pathogenesis. Together, we identified two EPEC O serotypes in silico and experimentally, and we also studied the adherent capabilities of their OAgs, which highlighted the fundamental and pathogenic role of OAg in EPEC.
Escherichia coli, particularly multidrug-resistant (MDR) strains, is a serious cause of healthcare-associated infections. Development of novel antimicrobial agents or restoration of drug efficiency is required to treat MDR bacteria, and the use of natural products to solve this problem is promising. We investigated the antimicrobial activity of dried green coffee (DGC) beans, coffee pulp (CP), and arabica leaf (AL) crude extracts against 28 isolated MDR E. coli strains and restoration of ampicillin (AMP) efficiency with a combination test. DGC, CP, and AL extracts were effective against all 28 strains, with a minimum inhibitory concentration (MIC) of 12.5-50 mg/ml and minimum bactericidal concentration of 25-100 mg/ml. The CP-AMP combination was more effective than CP or AMP alone, with a fractional inhibitory concentration index value of 0.01. In the combination, the MIC of CP was 0.2 mg/ml (compared to 25 mg/ml of CP alone) and that of AMP was 0.1 mg/ml (compared to 50 mg/ml of AMP alone), or a 125-fold and 500-fold reduction, respectively, against 13-drug resistant MDR E. coli strains. Time-kill kinetics showed that the bactericidal effect of the CP-AMP combination occurred within 3 h through disruption of membrane permeability and biofilm eradication, as verified by scanning electron microscopy. This is the first report indicating that CP-AMP combination therapy could be employed to treat MDR E. coli by repurposing AMP.
Listeria monocytogenes is a foodborne pathogen of considerable genetic diversity with varying pathogenicity. Initially, we found that the strain M7 was far less pathogenic than the strain Lm850658 though both are serovar 4a strains belonging to the lineage III. Comparative genomic approaches were then attempted to decipher the genetic basis that might govern the strain-dependent pathotypes. There are 2,761 coding sequences of 100% nucleotide identity between the two strains, accounting for 95.7% of the total genes in Lm850658 and 92.7% in M7. Lm850658 contains 33 specific genes, including a novel 20K prophage whereas strain M7 has 130 specific genes, including two large prophages (38K and 44K). To examine the roles of these specific prophages in pathogenicity, the 20K and 38K prophages were deleted from their respective strains. There were virtually no differences of pathogenicity between the deletion mutants and their parent strains, although some putative virulent factors like VirB4 are present in the 20K region or holin-lysin in the 38K region. In silico PCR analysis of 29 listeria genomes show that only strain SLCC2540 has the same 18 bp integration hotspot as Lm850658, whereas the sequence identity of their 20K prophages is very low (21.3%). The 38K and 44K prophages are located in two other different hotspots and are conserved in low virulent strains M7, HCC23, and L99. In conclusion, the 20K and 38K prophages of L. monocytogenes serovar 4a strains Lm850658 and M7 are not related to virulence but contribute to genetic diversity.
The goal of this study was to investigate the diversity of wild yeasts from the waters and soils of Haegeumgang in Gyungsangnam-do, and Namdaecheon and Geumsancheon in upstream of Geumgang, Korea and to characterize any previously unrecorded wild yeast strains. In total, 52 strains comprising 22 different species of wild yeasts were isolated from 35 samples obtained from Haegeumgang. Forty three and sevent nine wild yeast strains were isolated from 90 samples taken from Namdaecheon and Geumsancheon, respectively. Among the total 174 isolated wild yeast strains, 4 strains, i.e., Exobasidium rhododendri HGG10-5 (NNIBR2022633FG1), Udeniomyces pyricola NDC29-1 (NNIBR2022633FG2), Diddensiella caesifluorescens GSC2-2 (NNIBR2022633FG5) and Pichia scaptomyzae BAC2-3 (NNIBR2022633FG4) were previously unrecorded yeasts were oval or spherical in shape, only Pichia scaptomyzae BAC 2-3 formed ascospores. Three strains with the exception of Udeniomyces pyricola NDC 29-1 grew well in vitamin-free medium and Exobasidium rhododendri HGG 10-5 grew well in YPD medium containing 10% NaCl. All four novel strains assimilated fructose, lactose, raffinose, starch and xylose.
While searching for the bacteria which are responsible for degradation of pesticide in soybean field soil, a novel bacterial strain, designated 5-5T, was isolated. The cells of the strain were Gram-staining-positive, aerobic and non-motile rods. Growth occurred at 10-42℃ (optimum, 30℃), pH 5.5-9.0 (optimum, pH 7.0-7.5), and 0-2% (w/v) NaCl (optimum, 1%). The predominant fatty acids were C15:0 anteiso, C17:0 anteiso, and summed feature 8 (C18:1 ω7c and/or C18:1 ω6c). The predominant menaquinone was MK-9 (H2). Diphosphatidylglycerol, glycolipids, phosphatidylinositol, and phosphatidylglycerol were the major polar lipids. Phylogenetic analysis of 16S rRNA gene sequences indicated that strain 5-5T is a member of the genus Sinomonas and its closest relative is Sinomonas humi MUSC 117T, sharing a genetic similarity of 98.4%. The draft genome of strain 5-5T was 4,727,205 bp long with an N50 contig of 4,464,284 bp. Genomic DNA G+C content of strain 5-5T was68.0 mol%. The average nucleotide identity (ANI) values between strain 5-5T and its closest strains S. humi MUSC 117T and S. susongensis A31T were 87.0, and 84.3 % respectively. In silico DNA-DNA hybridization values between strain 5-5T and its closest strains S. humi MUSC 117T and S. susongensis A31T were 32.5% and 27.9% respectively. Based on the ANI and in silico DNA-DNA hybridization analyses, the 5-5T strain was considered as novel species belonging to the genus Sinomonas. On the basis of the results from phenotypic, genotypic and chemotaxonomic analyses, strain 5-5T represents a novel speciesof the genus Sinomonas, for which the name Sinomonas terrae sp. nov. is proposed. The type strain is 5-5T (=KCTC 49650T =NBRC 115790T).
Streptococcus mutans has the capacity of inducing dental caries. Thus, to develop a novel way of preventing dental caries, a cell wall hydrolase-producing strain was isolated and its characteristics were investigated. Among 200 alkalophilic strains isolated from soil, 8 strains exhibited lytic activities against Streptococcus mutans. However, strain YU5215 with the highest cell wall hydrolase activity was selected for further study. Strain YU5215 was identified as a novel strain of Bacillus based on analyzing its 16S rDNA sequence and Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, and thus designated as Bacillus mutanolyticus YU5215. The optimal conditions for the production of the cell wall hydrolase from Bacillus mutanolyticus YU5215 consisted of glucose ($0.8\%$), yeast extract ($1.2\%$), polypeptone ($0.5\%$), $K_{2}HPO_{4}\;(0.1\%$), $MgSO_{4}{\cdot}7H_{2}O$ ($0.02\%$), and $Na_{2}CO_{3}\;(1.0\%$) at pH 10.0. Bacillus mutanolyticus YU5215 was cultured at 30^{circ}C for 72 h to produce the cell wall hydrolase, which was then purified by acetone precipitation and CM-agarose column chromatography. The molecular weight of the lytic enzyme was determined as 22,700 Da by SDS-PAGE. When the cell wall peptidoglycan of Streptococcus mutans was digested with the lytic enzyme, no increase in the reducing sugars was observed, while the free amino acids increased, indicating that the lytic enzyme had an endopeptidase-like property. The amino terminus of the cell wall peptidoglycan digested by the lytic enzyme was determined as a glutamic acid, while the lytic site of the lytic enzyme in the Streptococcus mutans peptidoglycan was identified as the peptide linkage of L-Ala and D-Glu.
Lipases are industrially useful versatile enzymes that catalyze numerous different reactions including hydrolysis of triglycerides, transesterification, and chiral synthesis of esters under natural conditions. Although lipases from various sources have been widely used in industrial applications, such as in food, chemical, pharmaceutical, and detergent industries, there are still substantial current interests in developing new microbial lipases, specifically those functioning in abnormal conditions. We screened 17 lipase-producing yeast strains, which were prescreened for substrate specificity of lipase from more than 500 yeast strains from the Agricultural Research Service Culture Collection (Peoria, IL, U.S.A.), and selected Yarrowia lipolytica NRRL Y-2178 as a best lipase producer. This report presents new finding and optimal production of a novel extracellular alkaline lipase from Y. lipolytica NRRL Y-2178. Optimal culture conditions for lipase production by Y. lipolytica NRRL Y-2178 were 72 h incubation time, $27.5^{\circ}C$, pH 9.0. Glycerol and glucose were efficiently used as the most efficient carbon sources, and a combination of yeast extract and peptone was a good nitrogen source for lipase production by Y. lipolytica NRRL Y-2178. These results suggested that Y. lipolytica NRRL Y-2178 shows good industrial potential as a new alkaline lipase producer.
The antimicrobial effects of the natural flavonoids kaempferol, quercetin, apigenin, and naringenin as well as a novel flavonoid 7-O-butyl naringenin against the growth of four meat-born Staphylococcus aureus strains were evaluated. First, the flavonoids were screened for inhibitory effects against the growth of each strain using the paper disc diffusion method. Second, the growth inhibitory effects of flavonoids that showed antimicrobial activity were measured using the microplate method. Third, the bactericidal effects of flavonoids were evaluated in a 0.8% (w/v) NaCl solution. All flavonoids showed bacteriostatic effects at >20 mM. Among the flavonoids studied, quercetin was more effective than the others tested. However, the inhibitory effect of 7-O-butyl naringenin on growth of S. aureus KCCM 32395 was greater than that of quercetin at the same concentration. Additionally, 7-O-butyl naringenin exhibited significant bactericidal effects at >25 ${\mu}M$. When bacterial cells were examined using scanning electron microscopy, it appeared that the S. aureus membranes were damaged or morphologically changed when treated with quercetin and 7-O-butyl naringenin at 200 ${\mu}M$.
A novel bioactive molecule produced by Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki Bn1 (Bt-Bn1), isolated from a common pest of hazelnut, Balaninus nucum L. (Coleoptera: Curculionidae), was determined, purified, and characterized in this study. The Bt-Bn1 strain was investigated for antibacterial activity with an agar spot assay and well diffusion assay against B. cereus, B. weinhenstephenensis, L. monocytogenes, P. savastanoi, P. syringae, P. lemoignei, and many other B. thuringiensis strains. The production of bioactive molecule was determined at the early logarithmic phase in the growth cycle of strain Bt-Bn1 and its production continued until the beginning of the stationary phase. The mode of action of this molecule displayed bacteriocidal or bacteriolytic effect depending on the concentration. The bioactive molecule was purified 78-fold from the bacteria supernatant with ammonium sulfate precipitation, dialysis, ultrafiltration, gel filtration chromatography, and HPLC, respectively. The molecular mass of this molecule was estimated via SDS-PAGE and confirmed by the ESI-TOFMS as 3,139 Da. The bioactive molecule was also determined to be a heat-stable, pH-stable (range 6-8), and proteinase K sensitive antibacterial peptide, similar to bacteriocins. Based on all characteristics determined in this study, the purified bacteriocin was named as thuricin Bn1 because of the similarities to the previously identified thuricin-like bacteriocin produced by the various B. thuringiensis strains. Plasmid elution studies showed that gene responsible for the production of thuricin Bn1 is located on the chromosome of Bt-Bn1. Therefore, it is a novel bacteriocin and the first recorded one produced by an insect originated bacterium. It has potential usage for the control of many different pathogenic and spoilage bacteria in the food industry, agriculture, and various other areas.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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