Neutral protease which was obtained from a genus of Aspergilli as the crystal form were investigated for their purification and properties. The results of biochemical and enzymatic studies for their purification and properties in this enzyme were as follows. 1) On the wheat media containing 70%-water and $CaCo_{3}$, Aspergilus oryzae S.H.W. 131 is satisfactorily grown under the basic optimum conditions temperature $27^{\circ}C$- $30^{\circ}C$at relative humidity 100% for three days. 2) The enzyme solution extracted with water is successively purified through the passing on column of Asmti-177N for decolorization of it. And ion exchanger such as DEAAE Sphadex A-50 or Shepadex G-100 and fraction collector is necessary for the sepearte treatments of this enzyme. After washing it with organic solvents as aceton-EtOH, etc., it should be dried on the vacuum dryer at $40^{\circ}C$) The protease activity is determined by the amounts of amino acids, tyrosine. 4) The optimum pH of neutral protease is 6.0-8.0. 5) In effectively decomposing with this neutral protease, the optimum temperature is $35^{\circ}C$. 6) It is interesting that the amounts of metal ion affects the activity of neutral protease. For examples, if it were treated with manganic ion, its activity would be more effective than any other that.
This study was undertaken to investigate the proteolytic enzyme from Neungee mushroom [Sarcodon aspratus (Berk) S. Ito]. The proteolytic activity of Neungee was higher than other several edible mushrooms under various pHs. The potency of proteolytic enzyme of Neungee was same as the digestive drugs containing protease. So the proteolytic activity of the enzyme was increased in neutral or weak alkaline pH, whose characteristics would be alkaline protease. The specific activity of the purified enzyme obtained by using Tris acryl CM-cellulose ion exchange increased 20 times as compared with that of the crude extract. The proteolytic enzyme was stable at room temperature, but decomposition was fast when incubated at higher temperature more than $40^{\circ}C$. The half life of the enzyme was longest in neutral pH and rate constant was increased in acidic or alkaline solution.
Toxeplasma의 추출액을 3H-casein을 기질로 반응시켰을 때, pH 6.0과 PH 8.5에서 casein을 분해하였으며, pH 6.0에서는 cysteinyl protease의 억제제 인 iodoacetamide(rAh)에 의해 억제되 었고, 활성제 인 dithiothreitol (DTT)에 의해 환성이 증가하였다. 또 pH 8.5에서는 serine protease의 억제제인 phenylmethylsulfonil fluoride (PMSF)에 의해 활성이 억제되었으며, ATP를 첨가할 때 그 활성이 증가하여 ATP 의존성 효소임을 알 수 있었다. 위의 단백질 분해 효소를 부분 정제하기 위해 여러 chromatography를 실시하였는데, 먼저 DE52 (2.Sfx40 cm)에 통과시켰을 때, 0.05M-0.IM NaCl에 의해 유출되는 분획이 pH 6.0에서 황성을 나타내었으며, 0.25V- 0.3M에서 유출되는 분획이 pH 8.5에서 황성을 나타내었다. 이 분회들을 각각 Sephadex G-200 ($2.50{\phi}{\times}40cm$) 에 통과시켜 pH 6.0에서 활성을 나타내는 분획은 exclusion limit내에서, pH 8.5의 분획은 exclusion limit 외에서 분획을 얻었다. 이들을 각각 hydroxylapatite ($2.50{\phi}{\times}10cm$과 $2.5{\phi}{\times}20cm$)를 통과시켜 각각을 0.05M Phosphate로 유출되는 분회에서 높은 환성을 얻었다. 부분 정제된 분획들의 특성을 검토하기 위하여 억제제를 농도별로 처리하였을 때, pH 0.0에서의 분해 효소는 10-3M IAA에 의해 활성이 반감되어 cysteinyl acid protease임을 알 수 있었다. pH 8.5에서의 분해 효소는 10-5M PMSF에 의해 활성이 반감되었고, ATP에 의해 활성이 증가(ATP의 농도가 2.0mM 이상에서는 억제)하여 ATP-dependent neutral serine protease임을 알 수 있었다.
Fibrinolytic protease activity was detected in the fruit body of Pleurotus sajor-caju using a fibrin plate method. Two fibrinolytic activities (FPI and Ⅱ) were found at the regions of 14.5 and 86.0 kDa by using gel-filtration column chromatography. FPⅡ was identified as an alkaline protease, whereas FPⅠ was a neutral protease. Both were inhibited by phenanthrolin and EDTA, suggesting that they are metalloprotease. Inactivated enzyme activities were restored by adding Co/sup 2+/ or Zn/sup 2+/. Iodoacetate inhibited FPⅠ, but not FPⅡ. Both enzymes cleaved B/sub β/ and γ chains of the human fibrinogen. FPⅡ showed a preference to hydrophobic and bulky residues of nitroanilidine compounds as substrates, whereas FPⅠ preferred positively charged residues.
세포 외로 단백질분해효소를 생산하는 효모 균주 CO-1을 대나무 부산물에서 분리하였다. CO-1은 원형 또는 타원형($3.1-4.0{\times}3.8-4.4{\mu}m$)으로, 생장을 위한 최적 온도는 $30^{\circ}C$, 초기 pH는 4.0이었다. 그리고 최대 15.0% (w/v)의 NaCl과 9.0%(v/v)의 ethanol 농도에서 생장하였다. 형태적, 생리 생화학적 특성 및 18S rRNA 유전자 염기서열을 통한 계통분석을 이용하여 동정을 실시한 결과 Pichia anomala로 판명되었다. P. anomala CO-1 단백질분해효소를 부분 정제한 결과 수율은 7.2%였으며, 정제 전에 비해 약 14.6배 정제되었다. Zymogram으로 측정한 효소의 분자량은 약 30 kDa으로 확인되었다. 본 균주는 배지 중에 탄소원과 질소원, 무기염으로 1.0%(w/v) CMC와 1.0%(w/v) yeast extract, 0.3%(w/v) $MnSO_4$를 사용하였을 경우 가장 높은 단백질분해효소 활성을 나타내었다. P. anomala CO-1이 생산하는 단백질분해효소의 최적 활성 pH와 온도는 각각 7.0과 $30^{\circ}C$였다. 또한 본 효소는 pH 4.0-10.0에서 75%의 안정성을 나타내었으며, $65^{\circ}C$에서 1시간 가열하여도 60% 전후의 활성을 유지하였다. 균주의 효소 생산은 생육과 비례하였으며 대수증식기 후반에 최대의 효소 생산을 나타내었다.
A collagenolytic enzyme, produced by Vibrio vulnificus CYK279H, was purified by ultrafiltration, dialysis, Q-Sepharose ion exchange and Superdex-200 gel chromatography. The enzyme from the supernatant was purified 13.2 fold, with a yield of 11.4%. The molecular weight of the purified enzyme was estimated by SDS-PAGE to be approximately 35.0kDa. The N-terminal sequence of the enzyme was determined as Gly-Asp-Pro-Cys-Met-Pro-Ile-Ile-Ser-Asn. The optimum temperature and pH for the enzyme activity were $35^{\circ}C$ and 7.5, respectively. The enzyme activity was stable within the pH and temperature ranges 6.8-8.0 and $20{\sim}35^{\circ}C$, respectively. The purified enzyme was strongly activated by $Zn^{2+},\;Li^{2+},\;and\;Ca^{2+}$, but inhibited by $Cu^{2+}$. In addition, the enzyme was strongly inhibited by 1, 10-phenanthroline and EDTA. The purified enzyme was suggested to be a neutral metalloprotease.
뽕나무버섯 추출물에서 fibrinolytic enzyme을 분리 정제하였다. 이 효소의 분자량은 약 19800Da 이고 pH 7.0에서 최고의 활성을 보여주는 neutral protease로 $55^{\circ}C$에서 최대 활성을 나타냈다. EDTA에 의해 활성이 저해되는 것으로 보아 metalloprotease로 추정되며 $Hg^{+2}$의 영향을 받아 활성이 상실되었다. N-terminal amino acid 분석 결과 15번째까지의 아미노산 잔기 순서는 X-X-T-N-G-X-T-X-S-R-Q-T-T-L-V 이었으며 지금까지 알려진 것과는 다른 새로운 효소이다.
In this study we purified a fibrinolytic enzyme from Cordyceps militaris using a combination of ion-exchange chromatography on a DEAE Sephadex A-50 column, gel filtration chromatography on a Sephadex G-75 column, and FPLC on a HiLoad 16/60 Superdex 75 column. This purification protocol resulted in a 191.8-fold purification of the enzyme and a final yield of 12.9 %. The molecular mass of the purified enzyme was estimated to be 52 kDa by SDS-PAGE, fibrin-zymography, and gel filtration chromatography. The first 19 amino acid residues of the N-terminal sequence were ALTTQSNV THGLATISLRQ, which is similar to the subtilisin-like serine protease PR1J from Metarhizium anisopliae var. anisopliase. This enzyme is a neutral protease with an optimal reaction pH and temperature of 7.4 and $37^{\circ}C$, respectively. Results for the fibrinolysis pattern showed that the enzyme rapidly hydrolyzed the fibrin $\alpha$-chain followed by the $\gamma$-$\gamma$ chains. It also hydrolyzed the $\beta$-chain, but more slowly. The A$\alpha$, B$\beta$, and $\gamma$ chains of fibrinogen were also cleaved very rapidly. We found that enzyme activity was inhibited by $Cu^{2+}$ and $Co^{2+}$, but enhanced by the additions of $Ca^{2+}$ and $Mg^{2+}$ ions. Furthermore, fibrinolytic enzyme activity was potently inhibited by PMSF and APMSF. This enzyme exhibited a high specificity for the chymotrypsin substrate S-2586 indicating it's a chymotrypsin-like serine protease. The data we present suggest that the fibrinolytic enzyme derived from the edible and medicinal mushroom Cordyceps militaris has fibrin binding activity, which allows for the local activation of the fibrin degradation pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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