The effects of nitric oxide on the vestibular function recovery following unilateral labyrinthectomy (UL) were studied. Sprague-Dawley male rats, treated with nitric oxide liberating agent sodium nitroprusside (SNP) and NOS inhibitor $N^G$-nitro-L-arginine methyl ester (L-NAME), were subjected to destruction of the unilateral vestibular apparatus, and then spontaneous nystagmus was observed in the rat. To explore the effects of nitric oxide on the neuronal excitability, whole cell patch clamp technique was applied on isolated medial vestibular nuclear neurons. The frequency of spontaneous nystagmus in SNP treated rats was lesser than that of spontaneous nystagmus in control animals. In contrast, pre-UL treatment with L-NAME resulted in a significant increase in spontaneous nystagmus frequency. In addition, SNP increased the frequency of spontaneous action potential in isolated medial vestibular nuclear neurons. Potassium currents of the vestibular nuclear neurons were inhibited by SNP. After blockade of calcium dependent potassium currents by high EGTA (11 mM) in a pipette solution, SNP did not inhibit outward potassium currents. 1H-[1,2,4] oxadiazolo [4,3-a] quinozalin-1-one (ODQ), a specific inhibitor of soluble guanylyl cyclase, inhibited the effects of SNP on the spontaneous firing and the potassium current. These results suggest that nitric oxide after unilateral labyrinthectomy would help to facilitate vestibular compensation by inhibiting calcium-dependent potassium currents through increasing intracellular cGMP, and consequently would increase excitability in ipsilateral vestibular nuclear neurons.
The nature of encoded information in neural circuits is determined by neuronal firing patterns and frequencies. This paper discusses the molecular identity and cellular mechanisms of spike-frequency adaptation in the central nervous system (CNS). Spike-frequency adaptation in thalamocortical (TC) and CA1 hippocampal neurons is mediated by the $Ca^{2+}$-activated $Cl^-$ channel (CACC) anoctamin-2 (ANO2). Knockdown of ANO2 in these neurons results in increased number of spikes, in conjunction with significantly reduced spike-frequency adaptation. No study has so far demonstrated that CACCs mediate afterhyperpolarization currents, which result in the modulation of neuronal spike patterns in the CNS. Our study therefore proposes a novel role for ANO2 in spike-frequency adaptation and transmission of information in the brain.
앞의 연구에서 우리는 진세노사이드가 신경세포에 존재하는 high-threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel을 억제한다는 것을 발표하였다. 그러나, 이러한 연구는 진세노사이드가 여러 칼슘 채널subtypes중 어느 특정 칼슘 채널만을 선택적으로 조절한다는 것을 보여주지는 않았다. 따라서 이 연구에서 우리는 여러 칼슘 채널subtypes에 선택적으로 작용하는 약물 혹은 toxins을 이용하여 진세노사이드가 어느 종류의 칼슘 채널 subtypes를 억제하는가를 bovine chromaffin cell을 이용하여 연구하였다. 사용한 물질은nimodipine(L-type 칼슘 채널 길항제), $\omega$-conotoxin GVIA (N-type $Ca^{2+}$ channel 길항제), $\omega$-agatoxin IVA(P-type 칼슘 채널 길항제)이었다. 연구 결과 진세노사이드는 bovine chromaffin 세포에 존재하는 high-threshold 칼슘 current을 투여 농도별로 억제하였다. $IC_{50}$/은 약 120 $\mu$g/ml인 것으로 나타났다. nimodipine은 진세노사이드에 의한 칼슘 currents억제 작용에 영향을 미치지 않은 것으로 나타났다. 그러나, $\omega$-conotoxin GVIA, $\omega$-agatoxin IVA 및 nimodipine+$\omega$-conotoxin GVIA+$\omega$-agatoxin IVA을 처리한 세포에서는 진세노사이드에 의한 칼슘 currents억제 작용이 현저하게 줄어 들었다. 이러한 연구 결과들은 진세노사이드가 L-type 칼슘 채널은 억제하지 않고, 주로 N-, p-, 및 Q-type칼슘 채널을 억제한다는 것을 보여주고 있다
The action of opioid on the hyperpolarization-activated cation current $(I_h)$ in substantia gelatinosa neurons were investigated by using whole-cell voltage-clamp recording in rat spinal brain slices. Hyperpolarizing voltage steps revealed slowly activating currents in a subgroup of neurons. The half-maximal activation and the reversal potential of the current were compatible to neuronal $I_h.$ DAMGO $(1\;{\mu}M),$ a selective- opioid agonist, reduced the amplitude of $I_h$ reversibly. This reduction was dose-dependent and was blocked by CTOP $(2\;{\mu}M),$ a selective ${\mu}-opioid$ antagonist. DAMGO shifted the voltage dependence of activation to more hyperpolarized potential. Cesium (1 mM) or ZD 7288 $(100\;{\mu}M)$ blocked $I_h$ and the currents inhibited by cesium, ZD 7288 and DAMGO shared a similar time and voltage dependence. These results suggest that activation of ${\mu}-opioid$ receptor by DAMGO can inhibit $I_h$ in a subgroup of rat substantia gelatinosa neurons.
The profile of membrane currents was investigated in differentiated neuronal cells derived from human neural stem cells (hNSCs) that were obtained from aborted fetal cortex. Whole-cell voltage clamp recording revealed at least 4 different currents: a tetrodotoxin (TTX)-sensitive $Na^+$ current, a hyperpolarization-activated inward current, and A-type and delayed rectifier-type $K^+$ outward currents. Both types of $K^+$ outward currents were blocked by either 5 mM tetraethylammonium (TEA) or 5 mM 4-aminopyridine (4-AP). The hyperpolarization-activated current resembled the classical $K^+$ inward current in that it exhibited a voltage-dependent block in the presence of external $Ba^{2+}$ (30 ${\mu}$M) or $Cs^+$ (3${\mu}$M). However, the reversal potentials did not match well with the predicted $K^+$ equilibrium potentials, suggesting that it was not a classical $K^+$ inward rectifier current. The other $Na^+$ inward current resembled the classical $Na^+$ current observed in pharmacological studies. The expression of these channels may contribute to generation and repolarization of action potential and might be regarded as functional markers for hNSCs-derived neurons.
Phasic and tonic ${\gamma}$-aminobutyric acidA ($GABA_A$) receptor-mediated inhibition critically regulate neuronal information processing. As these two inhibitory modalities have distinctive features in their receptor composition, subcellular localization of receptors, and the timing of receptor activation, it has been thought that they might exert distinct roles, if not completely separable, in the regulation of neuronal function. Inhibition should be maintained and regulated depending on changes in network activity, since maintenance of excitation-inhibition balance is essential for proper functioning of the nervous system. In the present study, we investigated how phasic and tonic inhibition are maintained and regulated by different signaling cascades. Inhibitory postsynaptic currents were measured as either electrically evoked events or spontaneous events to investigate regulation of phasic inhibition in layer 2/3 pyramidal neurons of the rat visual cortex. Tonic inhibition was assessed as changes in holding currents by the application of the $GABA_A$ receptor blocker bicuculline. Basal tone of phasic inhibition was maintained by intracellular $Ca^{2+}$ and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II (CaMKII). However, maintenance of tonic inhibition relied on protein kinase A activity. Depolarization of membrane potential (5 min of 0 mV holding) potentiated phasic inhibition via $Ca^{2+}$ and CaMKII but tonic inhibition was not affected. Thus, phasic and tonic inhibition seem to be independently maintained and regulated by different signaling cascades in the same cell. These results suggest that neuromodulatory signals might differentially regulate phasic and tonic inhibition in response to changes in brain states.
Purpose: Recombinant human growth hormone (rhGH) has been widely used to treat short stature. However, there are some concerns that growth hormone treatment may induce skeletal maturation and early onset of puberty. In this study, we investigated whether rhGH can directly affect the neuronal activities of of gonadotropin-releasing hormone (GnRH). Methods: We performed brain slice gramicidin-perforated current clamp recording to examine the direct membrane effects of rhGH on GnRH neurons, and a whole-cell voltage-clamp recording to examine the effects of rhGH on spontaneous postsynaptic events and holding currents in immature (postnatal days 13-21) and adult (postnatal days 42-73) mice. Results: In immature mice, all 5 GnRH neurons recorded in gramicidin-perforated current clamp mode showed no membrane potential changes on application of rhGH (0.4, $1{\mu}g/mL$). In adult GnRH neurons, 7 (78%) of 9 neurons tested showed no response to rhGH ($0.2-1{\mu}g/mL$) and 2 neurons showed slight depolarization. In 9 (90%) of 10 immature neurons tested, rhGH did not induce any membrane holding current changes or spontaneous postsynaptic currents (sPSCs). There was no change in sPSCs and holding current in 4 of 5 adult GnRH neurons. Conclusion: These findings demonstrate that rhGH does not directly affect the GnRH neuronal activities in our experimental model.
Spinal nerve injury causes mechanical allodynia and structural imbalance of neurotransmission, which were typically associated with calcium overload. Storeoperated calcium entry (SOCE) is considered crucial elements-mediating intracellular calcium homeostasis, ion channel activity, and synaptic plasticity. However, the underlying mechanism of SOCE in mediating neuronal transmitter release and synaptic transmission remains ambiguous in neuropathic pain. Neuropathic rats were operated by spinal nerve ligations. Neurotransmissions were assessed by whole-cell recording in substantia gelatinosa. Immunofluorescence staining of STIM1 with neuronal and glial biomarkers in the spinal dorsal horn. The endoplasmic reticulum stress level was estimated from qRT-PCR. Intrathecal injection of SOCE antagonist SKF96365 dose-dependently alleviated mechanical allodynia in ipsilateral hind paws of neuropathic rats with ED50 of 18 ㎍. Immunofluorescence staining demonstrated that STIM1 was specifically and significantly expressed in neurons but not astrocytes and microglia in the spinal dorsal horn. Bath application of SKF96365 inhibited enhanced miniature excitatory postsynaptic currents in a dosage-dependent manner without affecting miniature inhibitory postsynaptic currents. Mal-adaption of SOCE was commonly related to endoplasmic reticulum (ER) stress in the central nervous system. SKF96365 markedly suppressed ER stress levels by alleviating mRNA expression of C/ EBP homologous protein and heat shock protein 70 in neuropathic rats. Our findings suggested that nerve injury might promote SOCE-mediated calcium levels, resulting in long-term imbalance of spinal synaptic transmission and behavioral sensitization, SKF96365 produces antinociception by alleviating glutamatergic transmission and ER stress. This work demonstrated the involvement of SOCE in neuropathic pain, implying that SOCE might be a potential target for pain management.
Sertraline, a selective serotonin reuptake inhibitor (SSRI), has been reported to lead to cardiac toxicity even at therapeutic doses including sudden cardiac death and ventricular arrhythmia. And in a SSRI-independent manner, sertraline has been known to inhibit various voltage-dependent channels, which play an important role in regulation of cardiovascular system. In the present study, we investigated the action of sertraline on Kv1.5, which is one of cardiac ion channels. The effect of sertraline on the cloned neuronal rat Kv1.5 channels stably expressed in Chinese hamster ovary cells was investigated using the whole-cell patch-clamp technique. Sertraline reduced Kv1.5 whole-cell currents in a reversible concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ value and a Hill coefficient of $0.71{\mu}M$ and 1.29, respectively. Sertraline accelerated the decay rate of inactivation of Kv1.5 currents without modifying the kinetics of current activation. The inhibition increased steeply between -20 and 0 mV, which corresponded with the voltage range for channel opening. In the voltage range positive to +10 mV, inhibition displayed a weak voltage dependence, consistent with an electrical distance ${\delta}$ of 0.16. Sertraline slowed the deactivation time course, resulting in a tail crossover phenomenon when the tail currents, recorded in the presence and absence of sertraline, were superimposed. Inhibition of Kv1.5 by sertraline was use-dependent. The present results suggest that sertraline acts on Kv1.5 currents as an open-channel blocker.
Paroxetine, a selective serotonin reuptake inhibitor (SSRI), has been reported to have an effect on several ion channels including human ether-a-go-go-related gene in a SSRI-independent manner. These results suggest that paroxetine may cause side effects on cardiac system. In this study, we investigated the effect of paroxetine on Kv1.5, which is one of cardiac ion channels. The action of paroxetine on the cloned neuronal rat Kv1.5 channels stably expressed in Chinese hamster ovary cells was investigated using the whole-cell patch-clamp technique. Paroxetine reduced Kv1.5 whole-cell currents in a reversible concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ value and a Hill coefficient of $4.11{\mu}M$ and 0.98, respectively. Paroxetine accelerated the decay rate of inactivation of Kv1.5 currents without modifying the kinetics of current activation. The inhibition increased steeply between -30 and 0 mV, which corresponded with the voltage range for channel opening. In the voltage range positive to 0 mV, inhibition displayed a weak voltage dependence, consistent with an electrical distance ${\delta}$ of 0.32. The binding ($k_{+1}$) and unbinding ($k_{-1}$) rate constants for paroxetine-induced block of Kv1.5 were $4.9{\mu}M^{-1}s^{-1}$ and $16.1s^{-1}$, respectively. The theoretical $K_D$ value derived by $k_{-1}/k_{+1}$ yielded $3.3{\mu}M$. Paroxetine slowed the deactivation time course, resulting in a tail crossover phenomenon when the tail currents, recorded in the presence and absence of paroxetine, were superimposed. Inhibition of Kv1.5 by paroxetine was use-dependent. The present results suggest that paroxetine acts on Kv1.5 currents as an open-channel blocker.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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