We developed and subsequently characterized mouse monoclonal antibodies (MAbs) against nervous necrosis virus (NNV, RGNNV genotype). We established six hybridoma clones secreting MAbs against NNV antigen: 2B1, 2B11, 2C12, 13C1-1, 13C1-2 and 14D11. All six MAbs belonged to the IgG2a isotype with a kappa light chain and their reactivity recognized against the 41 kDa coat protein of NNV by Western blot analysis. The affinity constants of the six MAbs were measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). All six MAbs reacted with two NNV isolates (SgNag05 and Gemunodo06), while no reactivity was observed with five know fish viruses, namely marine birnavirus, infectious pancreatic necrosis virus, viral hemorrhagic septicemia virus, hirame rhabdovirus, and infectious hematopoietic necrosis virus. Moreover, high ELISA optical density (OD) values (0.87-1.42) were observed in the brain tissues of NNV-infected sevenband grouper, while low OD values (less than 0.12) were recorded in the brain tissues of uninfected fish. These results suggest that these six MAbs are highly competent and useful for the detection of NNV with the RGNNV genotype.
In order to use nervous necrosis virus (NNV) virus-like particles (VLPs) as a delivery tool for heterologous antigens or plasmids, we attempted to produce red-spotted grouper nervous necrosis virus (RGNNV) VLPs displaying a partial region of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) glycoprotein at the surface and VLPs that are harboring DNA vaccine plasmids within the VLP. A peptide encoding 105 amino acids of VHSV glycoprotein was genetically inserted in the loop region of NNV capsid gene, and VLPs expressing the partial part of VHSV glycoprotein were successfully produced. However, in the transmission electron microscope analysis, the shape and size of the partial VHSV glycoprotein-expressing NNV VLPs were irregular and variable, respectively, indicating that the normal assembly of capsid proteins was inhibited by the relatively long foreign peptide (105 aa) on the loop region. To encapsulate by simultaneous transformation with both NNV capsid gene expressing plasmids and DNA vaccine plasmids (having an eGFP expressing cassette under the CMV promoter), NNV VLPs containing plasmids were produced. The encapsulation of plasmids in the NNV VLPs was demonstrated by PCR and cells exposed to the VLPs encapsulating DNA vaccine plasmids showed fluorescence. These results suggest that the encapsulation of plasmids in NNV VLPs can be done with a simple one-step process, excluding the process of disassembly-reassembly of VLPs, and NNV VLPs can be used as a delivery tool for DNA vaccine vectors.
Viral nervous necrosis (VNN) is a serious disease of sevenband grouper Epinephelus septemfasciatus in Korean aquaculture farms. However, we suggest the following preventative methods for hatcheries: 1) disinfecting rearing water, 2) selecting spawners via ELISA and PCR, 3) selecting eggs via PCR, 4) disinfecting fertilized eggs, and 5) proper facilities management. When these methods are implemented, nervous necrosis virus (NNV)-free fish are produced because vertical and horizontal transmission is prevented. However, horizontal transmission of NNV through rearing seawater sourced from the environment during grow-out stages in sea cages can still occur. Live NNV vaccines with a low rearing temperature or Poly(I:C) immunization are very effective at preventing horizontal transmission of NNV in rearing farms. Furthermore, even after VNN is contracted, fish mortality can be reduced by administering Poly(I:C).
We investigated the infection of nervous necrosis virus (NNV) in seven band grouper Hyporthodus septemfasciatus broodstocks, which have been reared in aquaculture farms in South Korea during 2012-2014. To investigate the prevalence of NNV within the broodstock, egg, sperm, and blood were sampled in the spawning season. The egg and sperm samples were subjected to a nested reverse transcription (RT) polymerase chain reaction (PCR) assay to detect NNV and were inoculated on SSN-1 cells to culture the virus. Blood samples were used to detect antibodies against NNV using enzyme linked immunosorbent assay (ELSIA). Positive values from ELISA were found in 39 of 162 samples (24%) in 2012, and 13 of 28 samples (46%) in 2014. Additionally, 4 of 34 broodstocks (11%) investigated in 2013-2014 were determined to be carriers from the nested RT-PCR and in vitro cultivation. The broodstocks in which antibodies against NNV were detected by ELISA, or in which NNV was detected by the nested RT-PCR assay, posed a risk of vertical transmission of NNV. Therefore, it is necessary to select virus-free broodstocks in seed production to reduce the possibility of the vertical transmission of NNV.
본 연구에서는 2006-2008년 남해안 일대의 해상가두리에서 사육중인 능성어에서 발생하는 viral nervous necrosis (VNN)의 발생양상을 조사하였다. VNN은 사육 수온이 $24-26^{\circ}C$ 범위인 8월부터 발생하기 시작하여 수온이 $20-25^{\circ}C$ 범위인 9-10월까지 지속되었고, 성어보다는 치어에서 폐사율이 높게 나타나는 것으로 확인되었다. 폐사되는 패턴으로는 급성으로 인한 대량폐사와 소량으로 지속적으로 폐사되는 경우가 확인되었다. 능성어로부터 분리된 NNV 분리주들의 coat protein gene을 계통분석한 결과, 분리주들은 모두 RGNNV 유전자형에 속하였다. 이상의 결과로 능성어 양식장에서의 VNN은 RGNNV type의 NNV에 의해 여름철 7-9월(사육수온: 약 $24^{\circ}C$)에 치어뿐만 아니라 성어에서 발생하는 것으로 확인되었다.
2017년 1월에서 4월까지 강원도 고성에서 사육중인 명태 친어로부터 수정란을 채집하여 신경괴사증바이러스(nervous necrosis virus, NNV)의 검출을 시도하였다. 매 회 50 mg씩 수정란을 채집하여 이를 1 set로 간주하였으며 총 37 set를 제작하였다. RNA를 추출하고 cDNA를 합성하여 NNV를 대상으로 reverse transcriptase PCR을 실시하였다. 그 결과, one-step PCR법으로는 37 set의 시료가 모두 음성이었으며, two-step PCR법으로는 5.4% (2/37)의 시료가 양성을 나타내었다. 그러나, band의 농도가 매우 낮아 시퀀싱은 불가능하였다. 본 연구의 결과 및 이전 연구의 결과로부터 현재 국내에서 양식하고 있는 명태에서 NNV 감염에 의한 폐사는 발생하지 않는 것으로 추정된다. 하지만, 지속적인 모니터링 및 양성 개체 출현 시 바이러스 분리의 시도 등은 필요할 것으로 생각된다.
본 연구에서는 무지개송어의 해수면 양식장으로의 이동에 따라 나타날 수 있는 어류 병원성 바이러스의 영향을 알아보기 위해, 담수 무지개송어 유래 병원체인 infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV)와 infectious pancreatic necrosis virus (IPNV)를 사용하여 주요 해산 양식 어종인 넙치, 조피볼락, 돌돔, 참돔 및 능성어에 주사한 후 병원성 및 감염 여부를 조사하였으며, 또한 해산 양식 어종 유래 병원체인 marine birnavirus (MABV), hirame rhabdovirus (HIRRV) 및 nervous necrosis virus (NNV)를 사용하여 무지개송어에 대한 병원성 및 감염 여부를 조사하였다. IHNV와 IPNV는 주요 해산 양식 어종에 감염되는 것으로 확인되었으며, 또한 무지개송어는 해산 유래 위해 병원체인 MABV와 NNV에 감염되거나 HIRRV에 의해 폐사되는 것으로 확인되었다. 이상의 연구 결과, 해수사육 무지개송어는 어류 병원성 바이러스들에 의해 영향 받을 수 있을 것으로 사료되었다.
Grouper nervous necrosis virus (GNNV) infection causes mass grouper mortality, leading to substantial economic loss in Taiwan. Traditional methods of controlling GNNV infections involve the challenge of controlling disinfectant doses; low doses are ineffective, whereas high doses may cause environmental damage. Identifying potential methods to safely control GNNV infection to prevent viral outbreaks is essential. We engineered a virus-binding bacterium expressing a myxovirus resistance (Mx) protein on its surface for GNNV removal from phosphate-buffered saline (PBS), thus increasing the survival of grouper fin (GF-1) cells. We fused the grouper Mx protein (which recognizes and binds to the coat protein of GNNV) to the C-terminus of outer membrane lipoprotein A (lpp-Mx) and to the N-terminus of a bacterial autotransporter adhesin (Mx-AIDA); these constructs were expressed on the surfaces of Escherichia coli BL21 (BL21/lpp-Mx and BL21/Mx-AIDA). We examined bacterial surface expression capacity and GNNV binding activity through enzyme-linked immunosorbent assay; we also evaluated the GNNV removal efficacy of the bacteria and viral cytotoxicity after bacterial adsorption treatment. Although both constructs were successfully expressed, only BL21/lpp-Mx exhibited GNNV binding activity; BL21/lpp-Mx cells removed GNNV and protected GF-1 cells from GNNV infection more efficiently. Moreover, salinity affected the GNNV removal efficacy of BL21/lpp-Mx. Thus, our GNNV-binding bacterium is an efficient microparticle for removing GNNV from 10‰ brackish water and for preventing GNNV infection in groupers.
Kim, Jong-Oh;Kim, Jae-Ok;Kim, Wi-Sik;Oh, Myung-Joo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권10호
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pp.1761-1767
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2015
Sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus, is becoming an important aquaculture species in Korea. However, viral nervous necrosis disease is a large problem causing mass mortality in sevenband grouper aquaculture. Recombinant protein vaccines are one of the best methods to reduce these economic losses. However, the cell-based expression method mainly produces inclusion bodies and requires additional procedures. In this study, we expressed a recombinant viral coat protein of sevenband grouper nervous necrosis virus (NNV) using a cell-free protein synthesis system. The purified recombinant NNV coat protein (rNNV-CP) was injected into sevenband grouper at different doses followed by a NNV challenge. Nonimmunized fish in the first trial (20 μg/fish) began to die 5 days post-challenge and reached 70% cumulative mortality. In contrast, immunized fish also starting dying 5 days postchallenge but lower cumulative mortality (10%) was observed. Cumulative morality in the second trial with different doses (20, 4, and 0.8 μg/fish) was 10%, 40%, and 50%, respectively. These results suggest that rNNV-CP can effectively immunize sevenband grouper depending on the dose administered. This study provides a new approach to develop a recombinant vaccine against NNV infection for sevenband grouper.
홍민어의 종묘 생산 중에 자어의 대량 폐사를 일으키는 nervous necrosis virus (NNV)의 감염에 의한 피해를 방지하기 위하여 NNV 미감염 친어의 선발에 의한 종묘 생산을 시도함과 동시에 수정란, 부화자어, 먹이생물, 사육 용수 등의 NNV 감염 여부를 확인하였다. RT-PCR법에 의한 홍민어 친어의 바이러스 감염 여부를 확인한 결과, 총 40마리의 검사어 중에서 양성인 개체가 18마리, 음성인 개체는 22마리였다. 시험어로부터 자연 산란된 수정란 및 경과 단계별 부화 자어로부터 PCR법을 이용한 NNV 감염 확인 결과, 미감염 친어로부터의 수정란에서는 바이러스가 확인되지 않았으나, 감염된 친어로부터의 수정란에서는 바이러스 감염이 확인되었다. 또한 자어의 먹이생물인 클로렐라, 로티퍼, 알테미아 및 사육 용수를 대상으로 한 NNV 검출 결과, 모두 음성으로 나타났다. 부화 후 8주간의 감염 및 미감염 자치어의 사육 결과에 있어서는 초기 2주째까지의 생존율이 각각 80%, 85%로서 양호하였으나, 부화 후 25일째부터 폐사가 일어나기 시작하였다. 감염 친어구의 경우 41일째에 100% 폐사한 반면, 미감염 친어구는 최종적으로 18.3%의 생존율을 보여, 이러한 결과는 친어에 대한 NNV 검사를 실시하여 바이러스에 감염되지 않은 홍민어 종묘를 생산할 수 있다는 것을 제시한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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