Recent reports suggest that floral organs such as sepals, petals, stamens, and carpels are specified by quaternary MADS protein complexes with different combinations. The formation of quaternary complexes of ABCDE MADS proteins may be the molecular basis of ABCDE model for the floral organ development. The MADS complexes involved in each floral organ development seem to be conserved in at least dicot species although detailed molecular mechanism is slightly different depending on species. Even in monocot, at least rice, MADS complexes similar to those in dicot exist, suggesting that the floral organ specification by MADS protein complexes may be conserved in most of plants. The MADS protein complexes may have more specific recognition of target genes or more transcription activation ability than monomers or dimers, resulting in finely regulated floral organ development.
Background: Heat-shock protein70 (HSP70) are intracellular protein chaperones, with emerging evidence of their association with various diseases. We have previously reported significantly elevated plasma-HSP70 (pHSP70) in pancreatic cancer. Current methods of pHSP70 isolation are ELISA-based which lack specificity due to cross-reactivity by similarities in the amino-acid sequence in regions of the protein backbone resulting in overestimated HSP70 value. Materials and Methods: This study was undertaken to develop a methodology to capture all isoforms of pHSP70, while further defining their tyrosine and serine phosphorylation status. Results: The methodology included gel electrophoresis on centrifuged supernatant obtained from plasma incubated with HSP70 antibody-coupled beads. After blocking non-specific binding sites, blots were immunostained with monoclonal-antibody specific for human-HSP70, phosphoserine and phosphotyrosine. Conclusions: Our novel immunocapture approach has distinct advantages over the commercially available methods of pHSP70 quantification by allowing isolation of molecular aggregates of HSP70 with additional ability to precisely distinguish phosphorylation state of HSP70 molecules at serine and tyrosine residues.
IciA protein has been shown as an inhibitor for the initiation of E. coli chromosomal DNA replication at oriC. IciA protein binds the AT-rich region in oriC and then blocks the initiation of chromosomal DNA replication. Two binding sites for IciA protein were identified in dnaA gene, encoding the initiator for the E. coli chromosomal replication, promoter region by gel-shift assay and DNase I footprinting, One, named as IciA site I, is located upstream of the dnaA promoter 1P. The other, named as IciA site II, is located downstream of the dnaA promoter 2P. The sequence comparison of the regions protected from the DNase I cleavage did not result in a clear consensus sequence for the binding of IciA protein, suggesting that IciA protein may be a member of multimeric complex dsDNA binding proteins. This study provided information about the binding mode of IciA protein. Even though the IciA site II and IciA binding site in oriC seem to be composed of two IciA binding units, one binding unit is likely enough to cause the binding of IciA protein to the IciA site I. The binding of IciA protein to the dna4 promoter implies that IciA protein may involve not only the control of the initiation of chromosomal DNA replication but also the control of the dna4 gene expression.
Fusion ferritin (heavy chain ferritin, $F_H+$ light chain ferritin, $F_L$), an iron-binding protein, was primarily purified from recombinant Escherichia coli by two-step sonications with urea [1]. Unfolded ferritin was refolded by gel filtration chromatography (GFC) with refolding enhancer, where 50 mM Na-phosphate (pH 7.4) buffer containing additives such as Tween 20, PEG, and L-arginine was used. Ferritin is a multimeric protein that contains approximately 20 monomeric units for full activity. Fusion ferritin was expressed in the form of inclusion bodies (IBs). The IBs were initially solubilized in 4 M urea denaturant. The refolding process was then performed by decreasing the urea concentration on the GFC column to form protein multimers. The combination of the buffer-exchange effect of GFC and the refolding enhancers in refolding buffer resulted in an efficient route for producing properly folded fusion ferritin.
Human prostatic acid phosphatase (PAP), with comprehensive homology to glandular kallikrein, are representative serum biomarkers of prostate cancer. Dendritic cell (DC), which is the potent antigen-presenting cells(APC) in the immune system, can induce strong T cell responses against viruses, microbial pathogens, and tumors. Therefore, the immunization using DC loaded with tumor-associated antigens is a powerful method for inducing anti-tumor immunity. The CTP (Cytoplasmic Transduction Peptide) technology developed by Creagene which can transport attached bio-polymers like nucleic acids or proteins into the cell with high permeation efficiency. As the active forms of PAP can mediate apoptotic processing, we used multimer forms of PAP as an inactive form for antigen pulsing of DCs. In this study, multimeric forms of CTP-rhPAP was obtained according to the advanced purification process and subsequently confirmed by gel filtration chromatography, western blot and Dynamic Light Scattering. Therefore, CTP-conjugated PA multimers transduced into the cytoplasm were efficiently presented on the cell surface without any harm effect on cells via MHC class I molecules and result in induction of a large number of effector cell.
The syndecan family consists of four transmembrane heparan sulfate proteoglycans present in most cell types and each syndecan shares a common structure containing a heparan sulfate modified extracellular domain, a single transmembrane domain and a C-terminal cytoplasmic domain. To get a better understanding of the mechanism and function of syndecan-4 which is one of the syndecan family, it is crucial to investigate its three-dimensional structure. Unfortunately, it is difficult to prepare the peptide because it is membrane-bound protein that transverses the lipid bilayer of the cell membrane. Here, we optimize the expression, purification, and characterization of transmembrane, cytoplasmic and short extracellular domains of syndecan4 (syndecan-4 eTC). Syndecan-4 eTC was successfully obtained with high purity and yield from the M9 medium. The structural information of syndecan-4 eTC was investigated by MALDI-TOF mass (MS) spectrometry, circular dichroism (CD) spectroscopy, and nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. It was confirmed that syndecan-4 eTC had an ${\alpha}$-helical multimeric structure like transmembrane domain of syndecan-4 (syndecan-4 TM) in membrane environments.
A novel protein (HEAAE, High Essential Amino Acid Encoding Protein), rich in essential amino acids ($75{\%}$ of total), was designed and constructed in our laboratory. The designed peptides were analyzed by SYBLE and stable secondary and tertiary structures were predicted. The monomeric form (HEAAE-1) of the protein consists of 20 amino acid residues with four additional amino acids comprising a potential ${\beta}$-turn (HEAAE-4). Size exclusion analysis demonstrated that the monomer is self-aggregates in aqueous solution to form higher ordered multimeric structures, which are very reminiscent of natural plant storage proteins. The DNA encoding this amino acid sequence was synthesized, and from this monomeric gene fragment (heaae-1), the stable tetrameric form of the gene (heaae-4) was generated by subcloning into the E. coli expression vector pKK223-3. A clear 6 kDa polypeptide band corresponding to the molecular weight of the dimeric form (HEAAE-2) was detected. The smeared band which appeared around the molecular weight corresponding to HEAAE-4 of 11 kDa suggested that the tetramer form of this protein might be processed into smaller size products.
Autodisplay of a multimeric protein complex on a cell surface is limited by intrinsic factors such as the types and orientations of anchor modules. Moreover, improper folding of proteins to be displayed often hinders functional cell surface display. While overcoming these drawbacks, we ultimately extended the applicability of the autodisplay platform to the display of a protein complex. We designed and constructed a cell surface attachment (CSA) system that uses a non-covalent protein-protein interaction. We employed the high-affinity interaction mediated by an orthogonal cohesin-dockerin (Coh-Doc) pair from Archaeoglobus fulgidus to build the CSA system. Then, we validated the orthogonal Coh-Doc binding by attaching a monomeric red fluorescent protein to the cell surface. In addition, we evaluated the functional anchoring of proteins fused with the Doc module to the autodisplayed Coh module on the surface of Escherichia coli. The designed CSA system was applied to create a functional attachment of dimeric α-neoagarobiose hydrolase to the surface of E. coli cells.
Cloned myo-inositol-1-phosphate synthase (INOS) of Drosophila melanogaster was expressed in Escherichia coli, and purified using a His-affinity column. The purified INOS required NAD$\^$+/ for the conversion of glucose-6-phosphate to inositol-1-phosphate. The optimum pH for myo-inositol-1-phosphate synthase is 7.5, and the maximum activity was measured at 40$^{\circ}C$. The molecular weight of the native enzyme, as determined by gel filtration, was approximately M$\_$r/ 271,000${\pm}$15,000. A single subunit of approximately M$\_$r/ 62,000${\pm}$5,000 was detected upon SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The Michaelis ($K_{m}$) and dissociation constants for glucose-6-phosphate were 3.5 and 3.7 mM, whereas for the cofactor NAD$\^$+/ these were 0.42 and 0.4 mM, respectively.
Bacillus subtilis spore surface display (BSSD) technology is considered to be one of the most promising approaches for expressing heterologous proteins with high activity and stability. Currently, this technology is used for various purposes, such as the production of enzymes, oral vaccines, drugs and multimeric proteins, and the control of environmental pollution. This paper presents an overview of the latest developments in BSSD technology and its application in protein engineering. Finally, the major limitations of this technology and future directions for its research are discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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