Kim, Sae-Hae;Lee, Kyung-Yeol;Kim, Ju;Park, Seung-Moon;Park, Bong Kyun;Jang, Yong-Suk
Molecules and Cells
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v.21
no.2
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pp.244-250
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2006
Gangliosides are receptors for various peptides and proteins including neuropeptides, ${\beta}$-amyloid proteins, and prions. Recently, the role of gangliosides in mucosal immunization has attracted attention due to the emerging interest in oral vaccination. Ganglioside GM1 exists in abundance on the surface of the M cells of Peyer's patch, a well-known mucosal immunity induction site. In the present study we identified a peptide ligand for GM1 and tested whether it played a role in immune induction. GM1-binding peptides were selected from a phage-displayed dodecapeptide library and one peptide motif, GWKERLSSWNRF, was fused to the C-terminus of enhanced green fluorescent protein (EGFP). The fusion protein, but not EGFP fused with a control peptide, was concentrated around Peyer's patch after incubation in the lumen of the intestine ex vivo. Furthermore, oral feeding of the fusion protein but not control EGFP induced mucosal and systemic immune responses against EGFP resembling Th2-type immune responses.
The purpose of this study is to investigate the effect of mucosal vaccine delivery vehicles and adjuvants on the local and systemic antibody responses following mucosal immunization of mice with hepatitis B surface antigen (HBsAg). Mice were immunized on days 0 and 21 by administration of hepatitis B surface antigen B (HBsAg) into the vagina. HBsAg was delivered in saline or poloxamer(Pol)-based vehicle containing mucoadhesive polycarbophil (PC). (omitted)
Shim, Byoung-Shik;Choi, Youngjoo;Cheon, In Su;Song, Man Ki
IMMUNE NETWORK
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v.13
no.3
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pp.81-85
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2013
The mucosal surfaces are constantly exposed to incoming pathogens which can cause infections that result in severe morbidity and/or mortality. Studies have reported that mucosal immunity is important for providing protection against these pathogens and that mucosal vaccination is effective in preventing local infections. For many years, the sublingual mucosa has been targeted to deliver immunotherapy to treat allergic hypersensitivities. However, the potential of vaccine delivery via sublingual mucosal has received little attention until recently. Recent studies exploring such potential have documented the safety and effectiveness of sublingual immunization, demonstrating the ability of sublingual immunization to induce both systemic and mucosal immune responses against a variety of antigens, including soluble proteins, inter particulate antigens, and live-attenuated viruses. This review will summarize the recent findings that address the promising potential of sublingual immunization in proving protection against various mucosal pathogens.
Vaccination is one of the most effective methods available to prevent infectious diseases. Mucosa, which are exposed to heavy loads of commensal and pathogenic microorganisms, are one of the first areas where infections are established, and therefore have frontline status in immunity, making mucosa ideal sites for vaccine application. Moreover, vaccination through the mucosal immune system could induce effective systemic immune responses together with mucosal immunity in contrast to parenteral vaccination, which is a poor inducer of effective immunity at mucosal surfaces. Among mucosal vaccines, oral mucosal vaccines have the advantages of ease and low cost of vaccine administration. The oral mucosal immune system, however, is generally recognized as poorly immunogenic due to the frequent induction of tolerance against orally-introduced antigens. Consequently, a prerequisite for successful mucosal vaccination is that the orally introduced antigen should be transported across the mucosal surface into the mucosa-associated lymphoid tissue (MALT). In particular, M cells are responsible for antigen up-take into MALT, and the rapid and effective transcytotic activity of M cells makes them an attractive target for mucosal vaccine delivery, although simple transport of the antigen into M cells does not guarantee the induction of specific immune responses. Consequently, development of mucosal vaccine adjuvants based on an understanding of the biology of M cells has attracted much research interest. Here, we review the characteristics of the oral mucosal immune system and delineate strategies to design effective oral mucosal vaccines with an emphasis on mucosal vaccine adjuvants.
Application of vaccine materials through oral mucosal route confers great economical advantage in animal farming industry due to much less vaccination cost compared with that of injection-based vaccination. In particular, oral administration of recombinant protein antigen against foot-and- mouth disease virus (FMDV) is an ideal strategy because it is safe from FMDV transmission during vaccine production and can induce antigen-specific immune response in mucosal compartments, where FMDV infection has been initiated, which is hardly achievable through parenteral immunization. Given that effective delivery of vaccine materials into immune inductive sites is prerequisite for effective oral mucosal vaccination, M cell-targeting strategy is crucial in successful vaccination since M cells are main gateway for luminal antigen influx into mucosal lymphoid tissue. Here, we applied previously identified M cell-targeting ligand Co1 to VP1 of FMDV in order to test the possible oral mucosal vaccination against FMDV infection. M cell-targeting ligand Co1-conjugated VP1 interacted efficiently with M cells of Peyer's patch. In addition, oral administration of ligand-conjugated VP1 enhanced the induction of VP1-specific IgG and IgA responses in systemic and mucosal compartments, respectively, in comparison with those from oral administration of VP1 alone. In addition, the enhanced VP1-specific immune response was found to be due to antigen-specific Th2-type cytokine production. Collectively, it is suggested that the M cell-targeting strategy could be applied to develop efficient oral mucosal vaccine against FMDV infection.
Avian pathogenic Escherichia coli (APEC) is a causative agent for a number of extra intestinal diseases and account for significant losses to the poultry industry. Since protective immunity against APEC is largely directed to virulence antigens, we have individually expressed four different viulence antigens, papA, papG, IutA, and CS31A, using an attenuated Salmonella Typhimurium and a plasmid pBB244. Following oral immunization of mice with combination of two or four of these strains, serum IgG and mucosal IgA responses were elicited against each antigen represented in the mixture. The antigen-specific mucosal IgA responses were significantly higher in the group of mice immunized with the heat-labile Escherichia coli enterotoxin B subunit (LTB) strain than those in the group of mice immunized without the LTB strain. While, there was no significant difference between these two groups in antigen-specific serum IgG responses. The results showed that LTB could act as mucosal immune adjuvant. To assess the nature of immunity, the distribution of antigen-specific IgG isotypes was analyzed. All groups promoted Th1-type immunity as determined by the IgG2a/IgG1 ratio. Thus, our findings provided evidence that immunization with a combination of several vaccine strains is one of the strategies of developing effective vaccines against APEC.
Background: The usefulness of DNA vaccine at priming step of heterologous prime-boost vaccination led to DNA vaccine closer to practical reality. DNA vaccine priming followed by recombinant viral vector boosting via systemic route induces optimal systemic immunity but no mucosal immunity. Mucosal vaccination of the reversed protocol (recombinant viral vector priming-DNA vaccine boosting), however, can induce both maximal mucosal and systemic immunity. Here, we tried to address the reason why the mucosal protocol of prime-boost vaccination differs from that of systemic vaccination. Methods: To address the importance of primary immunity induced at priming step, mice were primed with different doses of DNA vaccine or coadministration of DNA vaccine plus mucosal adjuvant, and immunity including serum IgG and mucosal IgA was then determined following boosting with recombinant viral vector. Next, to assess influence of humoral pre-existing immunity on boosting $CD8^+$ T cell-mediated immunity, $CD8^+$ T cell-mediated immunity in B cell-deficient (${\mu}K/O$) mice immunized with prime-boost regimens was evaluated by CTL assay and $IFN-{\gamma}$-producing cells. Results: Immunity primed with recombinant viral vector was effectively boosted with DNA vaccine even 60 days later. In particular, animals primed by increasing doses of DNA vaccine or incorporating an adjuvant at priming step and boosted by recombinant viral vector elicited comparable responses to recombinant viral vector primed-DNA vaccine boosted group. Humoral pre-existing immunity was also unlikely to interfere the boosting effect of $CD8^+$ T cell-mediated immunity by recombinant viral vector. Conclusion: This report provides the important point that optimally primed responses should be considered in mucosal immunization of heterologous prime-boost regimens for inducing the effective boosting at both mucosal and systemic sites.
Dung T. Huynh;W.A. Gayan Chathuranga;Kiramage Chathuranga;Jong-Soo Lee;Chul-Joong Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.34
no.3
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pp.735-745
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2024
Avian influenza is a serious threat to both public health and the poultry industry worldwide. This respiratory virus can be combated by eliciting robust immune responses at the site of infection through mucosal immunization. Recombinant probiotics, specifically lactic acid bacteria, are safe and effective carriers for mucosal vaccines. In this study, we engineered recombinant fusion protein by fusing the hemagglutinin 1 (HA1) subunit of the A/Aquatic bird/Korea/W81/2005 (H5N2) with the Bacillus subtilis poly γ-glutamic acid synthetase A (pgsA) at the surface of Lactobacillus casei (pgsA-HA1/L. casei). Using subcellular fractionation and flow cytometry we confirmed the surface localization of this fusion protein. Mucosal administration of pgsA-HA1/L. casei in mice resulted in significant levels of HA1-specific serum IgG, mucosal IgA and neutralizing antibodies against the H5N2 virus. Additionally, pgsA-HA1/L. casei-induced systemic and local cell-mediated immune responses specific to HA1, as evidenced by an increased number of IFN-γ and IL-4 secreting cells in the spleens and higher levels of IL-4 in the local lymphocyte supernatants. Finally, mice inoculated with pgsA-HA1/L. casei were protected against a 10LD50 dose of the homologous mouse-adapted H5N2 virus. These results suggest that mucosal immunization with L. casei displaying HA1 on its surface could be a potential strategy for developing a mucosal vaccine against other H5 subtype viruses.
Immunositmulation effects of the mice fed with the cell lysate of Lactobacillus plantarum isolated from Kimchi were studied. The mice group fed with cell lysate was different from the control group on the degree of immune responses, e.g. 1) proliferation of splenocytes and Peyer's patch cells, 2) production of nitric oxide (NO) by peritoneal macrophages, 3) production of intestinal secretory lgA (slgA), 4) variation of TNF-${\alpha}$ and IL-2 concentration in blood, 5) production of specific lgG against sheep red blood cells. A general enhancement in enteric and systemic immune responses was observed with a simple oral administration of immunostimulators. With the oral feeding of L. plantarum, not only the total amount of gut secretion antibody, but also the binding capacity of antibodies to the enteric microorganisms including L. plantarum was increased. These experimental results clearly showed that the oral feeding of immunostimulators gave multifunctional effects on the mucosal and systemic immune systems of mice.
Avian pathogenic Escherichia coli (APEC) are known to cause extraintestinal disease in poultry, leading to substantial losses in the industry. IutA, iron-regulated aerobactin receptor is firmly associated with APEC. To assess the potential of IutA to induce protective immune responses, attenuated Salmonella Typhimurium strain expressing IutA was constructed and administered orally to BALB/c mice. The IutA-specific immune responses were measured with sera, vaginal and fecal samples by an enzyme-linked immunosorbent assay. We found that the Salmonella-IutA vaccine induced significantly higher immune responses as compared to the control inoculated with the attenuated S. Typhimurium containing the plasmid only. The IutA-specific immune responses were increased by second immunization at third week after initial immunization, whereas triple immunization induced lower immune responses than those induced by the double immunization. The Salmonella-IutA vaccine induced a nature of immunity biased to the Th1-type, as judged by the ratio of IutA-specific IgG isotypes (IgG2a/IgG1). Overall, these results suggest that the Salmonella-IutA vaccine appear to be suitable candidate for a vaccine against APEC.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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