Kim, Young-Eun;Park, Jeong-A;Park, Sang-Kyu;Kang, Ho-Bum;Kwon, Hyung-Joo;Lee, Younghee
Development and Reproduction
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v.17
no.4
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pp.379-387
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2013
Embryonic stem (ES) cells can self-renew and differentiate to various cells depending on the culture condition. Although ES cells are a good model for cell type specification and can be useful for application in clinics in the future, studies on ES cells have many experimental restraints including low transfection efficiency and transgene expression. Here, we observed that transgene expression after transfection was enhanced by treatment with histone deacetylse (HDAC) inhibitors such as trichostatin A, sodium butyrate, and valproic acid. Transfection was performed using conventional transfection reagents with a retroviral vector encoding GFP under the control of CMV promoter as a reporter. Treatment of ES cells with HDAC inhibitors after transfection increased population of GFP positive cells up to 180% compared with untreated control. ES cells showed normal expression of stem cell markers after treatment with HDAC inhibitors. Transgene expression was further enhanced by modifying transfection procedure. GFP positive cells selected after transfection were proved to have the stem cell properties. Our improved protocol for enhanced gene delivery and expression in mouse ES cells without hampering ES cell properties will be useful for study and application of ES cells.
The differentiation of mouse embryonic stem(ES) cell into smooth muscle cells(SMC) may play a major role in cardiovascular development and under pathophysiological conditions. Therefore, in the present study, we have examined the differentiation of ES cells and its related gene expression. SMC differentiation was indicated by cellular morphology and time-dependent induction of dibutyryl adenosine 3,5-cyclic monophosphate(DBcAMP)and retinoic acid(RA) on smooth muscle ${\alpha}$-actin($SM{\alpha}A$), smooth muscle myosin heavy chain(SMMHC) gene expression. The control was undifferentiated ES cells(protein expressions represent 50-60kDaOct-4). The results of this study show that morphology of embryoid body and confirmation of $SM{\alpha}A$ expression by immunocytochemistry. Moreover, SMMHC and desmin expression was significantly increased by time dependent manner(5, 7, 15 days), in contrast to $SM{\alpha}A$ expression was slightly decreased on 15days. In conclusion, DBcAMP and RA stimulate mouse ES cells differentiation into SMC and enhanced $SM{\alpha}A$, SMMHC and desmin expression.
In mammals, major progress has recently been made with the dissection of early embryonic cell specification, the isolation of stem cells from early embryos, and the production of embryonic-like stem cells from adult cells. These studies have overcome long-standing species barriers for stem cell isolation, have revealed a deeper than expected similarity of embryo cell types across species, and have led to a better understanding of the lineage identities of embryo-derived stem cells, most notably of mouse and human embryonic stem (ES) cells. Thus, it has now become possible to propose a species-overarching classification of embryo stem cells, which are defined here as pre- to early post-implantation conceptus-derived stem cell types that maintain embryonic lineage identities in vitro. The present article gives an overview of these cells and discusses their relationships with each other and the conceptus. Consequently, it is debated whether further embryo stem cell types await isolation, and the study of the earliest extraembryonically committed stem cells is identified as a promising new research field.
Lee Geum-Sil;Kim Eun-Yeong;Min Hyeon-Jeong;Park Se-Pil;Jeong Gil-Saeng;Im Jin-Ho
Proceedings of the KSAR Conference
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2002.06a
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pp.83-83
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2002
This study was to compare the characteristics of parthenogenetic mES (P-mES) cells and in vitro fertilization mES cells. Mouse oocytes were recovered from superovulated 4wks hybrid F1 (C57BL/6xCBA/N) female mice. The oocytes were treated with 7% ethanol for 5 min and 5 ㎍/㎖ cytochalasin-B for 4 h. For IVF, the oocytes were inseminated with epididymal sperm of hybrid Fl male mice (1×10/sup 6//㎖). IVF and parthenogenetic embryos were cultured in M16 medium for 4 days. Cell number count in blastocysts was carried out differential labelling using propidium iodide (red) and bisbenzimide(blue). (omitted)
Sin Hyeon-A;Kim Eun-Yeong;Lee Geum-Sil;Park Eun-Mi;Park Se-Pil;Im Jin-Ho
Proceedings of the KSAR Conference
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2002.06a
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pp.20-20
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2002
This study was to establish the use of parthenogenetic mouse ES (P-mES02) cells as a reproducible differentiation system for mouse cardiomyocytes. To induce differentiation, P-mES02 cells were dispersed by dissociation and the formation of ES cell aggregates in differentiation medium. After 7 days in differentiation culture, the embryoid bodies (EBs) were plated onto gelatin-coated dish. Cultures were observed daily using an inverted light microscope to determine the day of contraction onset and total duration of continuous contractile activity for each contracting focus. (omitted)
Objective : This study was to establish a reproducible differentiation system from the parthenogenetic mouse embryonic stem (P-mES02) cells into functional cardiomyocytes like as in vitro fertilization mouse embryonic stem (mES01) cells. Materials and Methods: To induce differentiation, P-mES02 cells were dissociated and aggregated in suspension culture environment for embryoid body (EB) formation. For differentiation into cardiomyocytes, day 4 EBs were treated with 0.75% dimethyl sulfoxide (DMSO) for another 4 days (4-/4+) and then were plated onto gelatin-coated dish. Cultured cells were observed daily using an inverted light microscope to determine the day of contraction onset and total duration of continuous contractile activity for each contracting focus. This frequency was compared with the results of DMSO not treated P-mES02 group (4-/4-) and mES01 groups (4-/4+ or 4-/4-). For confirm the generation of cardiomyocytes, beating cell masses were treated with trypsin-EDTA, dispersed cells were plated onto glass coverslips and incubated for 48 h. Attached cells were fixed using 4% paraformaldehyde and incubated with specific antibodies (Abs) to detect cardiomyocytes (anti-sarcomeric ? -actinin Ab, 1 : 100; anti-cardiac troponin I Ab, 1 : 2000) for 1 h. And the cells were finally treated with FITC or TRITC labelled 2nd Abs, respectively, then they were examined under fluorescence microscopy. Results: Rhythmically contracting areas in mES01 or P-mES02 cells were firstly appeared at 9 or 10 days after EBs plating, respectively. The highest cumulative frequency of beating EBs was not different in both treatment groups (mES01 and P-mES02, 4-/4+) with the results of 61.3 % at 13 days and 69.8% at 15 days, respectively. Also, the contracting duration of individual beating EBs was different from minimal 7 days to maximal 53 days. However, DMSO not treated groups (mES01 and P-mES02, 4-/4-) also had contracting characteristics although their frequency was a few compared to those of DMSO treated groups (6.0% and 4.0%). Cells recovered from the spontaneously contracting areas within EBs in both treated groups were stained positively with muscle specific anti-sarcomeric ? -actinin Ab and cardiac specific anti-cardiac troponin I Ab. Conclusion: This study demonstrated that the P-mES02 cell-derived cardiomyocytes displayed similarly structural properties to mES01 cell-derived cardiomyocytes and that the DMSO treatment enhanced the cardiomyocytes differentiation in vitro.
Park, Jeong-A;Kim, Young-Eun;Ha, Yang-Hwa;Kwon, Hyung-Joo;Lee, Young-Hee
BMB Reports
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v.45
no.5
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pp.299-304
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2012
The ubiquitin-proteasome system is a major proteolytic system for nonlysosomal degradation of cellular proteins. Here, we investigated the response of mouse embryonic stem (ES) cells under proteotoxic stress. Proteasome inhibitors induced expression of heat shock protein 70 (HSP70) in a concentration- and time-dependent manner, and also induced apoptosis of ES cells. Importantly, more apoptotic cells were observed in ES cells compared with other somatic cells. To understand this phenomenon, we further investigated the expression of HSP70 and pluripotent cell markers. HSP70 expression was more significantly increased in somatic cells than in ES cells, and expression levels of pluripotent cell markers such as Oct4 and Nanog were decreased in ES cells. These results suggest that higher sensitivity of ES cells to proteotoxic stress may be related with lower capacity of HSP70 expression and decreased pluripotent cell marker expression, which is essential for the survival of ES cells.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.06a
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pp.19-25
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2002
Researches on manipulation pluripotent stem cells derived from blastocysts or promordial germ cells (PGCs) have a great advantages for developing innovative technologies in various fields of life science including medicine, pharmaceutics, and biotechnology. Since the first isolation in the mouse embryos, stem cells or stem cell-like colonies have been continuously established in the mouse of different strains, cattle, pig, rabbit, and human. In the animal species, stem cell biology is important for developing transgenic technology including disease model animal and bioreactor production. ES cell can be isolated from the inner cell mass of blastocysts by either mechanical operation or immunosurgery. So, mass production of blastocyst is a prerequisite factor for successful undertaking ES cell manipulation. In the case of animal ES cell research, various protocol of gamete biotechnology can be applied for improving the efficiency of stem cell research. Somatic cell nuclear transfer technique can be applied to researches on animal ES cells, since it is powerful tool for producing clone embryos containing genes of interest. In this presentation, a brief review was made for explaining how somatic cell nuclear transfer technology could contribute to improving stem cell manipulation technology.
Gene targeting are very useful tools for the research on the gene function in vivo, mass production of foreign materials and biomedical approach of therapeutic process. But this process is very complicated and necessary highly skilled technique, because it is very different from ES cell origin, genetic background of embryo, and experimental conditions. We investigated the productivity ability of chimeric mouse after aggregation with TT2 ES cells. Increse of ES cell density caused gradual decrease in embryo development in vitro and in th $\varepsilon$ production of chimeric mice in vivo. One million ES cell density for the aggregation was very efficient to produce high percentage chimeric mice in their coat color. These results suggested that appropriate cell density plays a key role in the development and production of chimeric mice by a 8-cell aggregation method.
DNA methylation is one of the major epigenetic regulations of gene expression. The DNA methylation patterns are dramatically changed during gametogenesis and embryogenesis, and especially, it has been known that embryonic stem cells show a distinct methylation pattern. In this study, we examined the methylation patterns of imprinting genes, H19, Igf2r, and Snrpn, in stem cells induced from fertilized embryo (fES) and somatic cell nuclear transferred embryo (ntES). The methylation pattern of H19 gene in both fES and ntES were similar. However, the methylation patterns of Igf2r and Snrpn in ntES (hypermethylated) were slightly different from fES cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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