${\beta}Pix$ is a guanine nucleotide exchange factor for the Rho family small GTPases, Rac1 and Cdc42. It is known to regulate focal adhesion dynamics and cell migration. However, the in vivo role of ${\beta}Pix$ is currently not well understood. Here, we report the production and characterization of ${\beta}Pix$-KO mice. Loss of ${\beta}Pix$ results in embryonic lethality accompanied by abnormal developmental features, such as incomplete neural tube closure, impaired axial rotation, and failure of allantois-chorion fusion. We also generated ${\beta}Pix$-KO mouse embryonic fibroblasts (MEFs) to examine ${\beta}Pix$ function in mouse fibroblasts. ${\beta}Pix$-KO MEFs exhibit decreased Rac1 activity, and defects in cell spreading and platelet-derived growth factor (PDGF)-induced ruffle formation and chemotaxis. The average size of focal adhesions is increased in ${\beta}Pix$-KO MEFs. Interestingly, ${\beta}Pix$-KO MEFs showed increased motility in random migration and rapid wound healing with elevated levels of MLC2 phosphorylation. Taken together, our data demonstrate that ${\beta}Pix$ plays essential roles in early embryonic development, cell spreading, and cell migration in fibroblasts.
Cho, Hye Won;Ko, Kyoung Rae;Kim, Mi Kyoung;Lee, Jae Ik;Sin, Su Il;Lee, Dong Hyung;Kim, Ki Hyung;Lee, Kyu Sup
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.32
no.2
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pp.133-147
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2005
Objectives: This study was carried out to establish human embryonic stem cells derived from frozen-thawed embryos using mouse embryonic fibroblasts (mEFs), human fetal skin and muscle fibroblasts as feeder cells, and to identify the characteristic of embryonic stem cells. Methods: When primary mEFs, human fetal skin and muscle fibroblasts were prepared, passaging on 4 days from replating could have effective trypsinization and clear feeder layers. Eight of 23 frozenthawed 4~8 cell stage embryos donated from consenting couples developed to blastocysts. Inner cell mass (ICM) was isolated by immunosurgery. ICM was co-cultured on mEFs, human fetal skin or muscle fibroblasts. The ICM colonies grown on mEFs, human fetal skin or muscle fibroblasts were tested the expression of stage specific embryonic antigen-3, -4 (SSEA-3, -4), octamer binding transcription factor-4 mRNA (Oct-4) and alkaline phosphatase surface marker. Results: We obtained 1 ICM colony from 2 ICM co-cultured on mEFs as feeder cells and did not obtain any ICM colony from 6 ICM clumps co-cultured on human fetal skin or muscle fibroblasts. The colony formed on mEFs could be passaged 30 times every 5 days with sustaining undifferentiated colony appearance. When the colonies cultured on mEFs were grown on human fetal skin or muscle fibroblasts, the colonies could be passaged 15 times every 9 days with sustaining undifferentiated colony appearance. The colonies grown on mEFs and human fetal fibroblasts expressed SSEA-4 and alkaline phosphatase surface markers and positive for the expression of Oct-4 by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). The produced embryoid body differentiated spontaneously to neural progenitorlike cells, neuron-like cells and beating cardiomyocyte-like cells, and frozen-thawed embryonic stem cells displayed normal 46,XX karyotype. Conclusions: The human embryonic stem cells can be established by using mEFs and human fetal fibroblasts produced in laboratory as feeder cells.
To establish rabbit Embryonic Stem (ES) cells, rabbit one-cell embryos were collected and cultured in vitro to blastocysts. Blastocysts were co-cultured with mouse embryonic fibroblasts (MEF), rabbit embryonic fibroblasts (REF) or 570 cells expressing LIF (SNL). Although rabbit ES cells were isolated with low efficiencies, total 8 ES cell lines were kept in vitro with normal colony shape. The MEF was the best feeder for rabbit ES cell isolation in regard to growth rate and undifferentiated morphology. The doubling time of rabbit ES cells in MEF was about 84 hours and the undifferentiated morphology was maintained following passing and freezing processes. These rabbit ES cells were differentiated into embryoid body following the culture in the uncoated dishes, indicating that they were undifferentiated stem cells.
Liver transplantation is recommended for patients with liver failure, but liver donors are limited. This necessitates the development of artificial livers, and hepatocytes are necessary to develop such artificial livers. Although induced hepatocyte-like cells are used in artificial livers, the characteristics of mouse induced hepatocyte-like cells (miHeps) reprogrammed with embryonic fibroblasts have not yet been clarified. Therefore, this study investigated the mechanisms underlying the survival, function, and death of miHeps. miHeps showed decreased cell viability, increased cytotoxicity, decreased hepatic function, and albumin and urea secretion at passage 14. Addition of necrostatin-1 (NEC-1) to miHeps inhibited necrosome formation and reactive oxygen species generation and increased cell survival. However, NEC-1 did not affect the hepatic function of miHeps. These results provide a basis for development of artificial livers using hepatocytes.
As the first stage of development of an artificial skin, fibroblasts were cultured in the collagen matrices to make a living dermal equivalent. Mouse embryonic fibroblasts were incorporated into a collagen matrices on plastic dishes containing concentrated DMEM culture media supplemented with sodium bicarbonate, hepes, antibiotics and fetal bovine serum. As the growth stimulation components, glycosaminoglycans were added: hyaluronic acid, chondroitin sulfate, heparin, chitosan were incorporated into the media at a concentration of either 1% or 5% w/w/ to collagen in order to investigate the effect on development of dermal equivalent. After the few days of incubation, gel matrics were contracted and firm dermal equivalent were formed. And the keratinocytes were cultured on top of dermal equivalent and make a three dimensional artificial skin tissue.
Kim, Gil Ah;Lee, Seung Tae;Lee, Eun Ju;Choi, Jung Kyu;Lim, Jeong Mook
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.22
no.3
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pp.343-349
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2009
This study was designed to simplify a cryopreservation program for embryonic stem cells (ESCs) by selection of cooling method and cryoprotectant. Commercially available mouse E14 embryonic stem cells (ESCs) were cryopreserved with various protocols, and morphology and viability of the frozen-thawed ESCs and their reactive oxygen species (ROS) production were subsequently monitored. Post-thaw colony-formation of ESCs was detected only after a slow freezing using dimethyl sulfoxide (DMSO) by stepwise placement of a freezing container into a $-80^{\circ}C$ deep freezer and subsequently into -$196^{\circ}C$ liquid nitrogen, while no proliferation was detected after vitrification. When the simplified protocol was employed, the replacement of DMSO with a mixture of DMSO and ethylene glycol (EG) further improved the post-thaw survival. ROS generation in ESCs frozen-thawed with the optimized protocol was not increased compared with non-frozen ESCs. The use of fresh mouse embryonic fibroblasts as feeder cells for post-thaw subculture did not further increase post-thaw cell viability. In conclusion, a simplified slow-freezing program without employing programmable freezer but using DMSO and EG was developed which maintains cell viability and colony-forming activity of ESCs during post-thaw subculture.
Tadi, Surendar;Kim, Soung Jung;Ryu, Min Jeong;Park, Taeseong;Jeong, Ji-Seon;Kim, Young Hwan;Kweon, Gi Ryang;Shong, Minho;Yim, Yong-Hyeon
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.34
no.1
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pp.35-41
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2013
Metabolic analysis of CR6 interacting factor 1 (Crif1) deficient mouse embryonic fibroblasts with impaired oxidative phosphorylation has been carried out using LC-MS/MS and GC-MS methods. Metabolic profiles of the Crif1 deficient cells were comprehensively obtained for the first time. Loss of oxidative phosphorylation functions in mitochondria resulted in cancer-like metabolic reprogramming with consumption of majority of glucose carbon from up-regulated glycolysis to produce lactate, suppressed utilization of glucose carbon in the TCA cycle, increased amounts of amino acids. The changes in metabolic profile of the Crif1 deficient cells are most probably a consequence of metabolic reprogramming to meet the needs of energy balance and anabolic precursors in compensation for the loss of major oxidative phosphorylation functions.
Kim, Seong-Gon;Kim, Jae-Young;Ryoo, Zae-Young;Lee, Sang-Gyu
Biomolecules & Therapeutics
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v.19
no.4
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pp.451-459
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2011
Peroxiredoxins (Prxs) have a critical role in protecting cells against oxidative damage generated by reactive oxygen species (ROS). PrxI and PrxII are more than 90% homologous in their amino acid sequences, and both proteins reduce $H_2O_2$. In this study, an over-expression plasmid carrying PrxI was transfected into $PrxII^{-/-}$ mouse embryonic fibroblasts (MEFs) to investigate potential compensatory relationships between PrxI and PrxII. ROS levels induced by oxidative stress were increased in $PrxII^{-/-}$ MEFs as compared to wild-type MEFs. Moreover, exposure of $PrxII^{-/-}$ MEFs to $H_2O_2$ caused a reduction in cell viability of about 10%, and the proportion of cell death was increased compared to mock-treated $PrxII^{-/-}$ MEFs. However, transient over-expression of PrxI in $PrxII^{-/-}$ MEFs conferred increased resistance against the oxidative damage, as evidenced by increased cell viability and reduced intracellular ROS levels under $H_2O_2$ stress conditions. The findings suggest that over-expressed PrxI can partly compensate for the loss of PrxII function in PrxII-deficient MEFs.
Matrix metalloproteinases (MMPs) have been known to affect to cell migration, proliferation, morphogenesis and apoptosis by degrading the extracellular matrix. In the previous studies, undifferentiated mouse embryonic stem cells (ESCs) were successfully proliferated inside the extracellular matrix (ECM) analog-conjugated three-dimensional (3D) poly ethylene glycol (PEG)-based hydrogel. However, there is no report about MMP secretion in ESCs, which makes it difficult to understand and explain how ESCs enlarge space and proliferate inside 3D PEG-based hydrogel constructed by crosslinkers containing MMP-specific cleavage peptide sequence. Therefore, we investigated what types of MMPs are released from undifferentiated ESCs and how extracellular signals derived from various niche conditions affect MMP expression of ESCs at the transcriptional level. Results showed that undifferentiated ESCs expressed specifically MMP2 and MMP3 mRNAs. Transcriptional up-regulation of MMP2 was caused by the 3D scaffold, and activation of integrin inside the 3D scaffold upregulated MMP2 mRNAs synergistically. Moreover, mouse embryonic fibroblasts (MEFs) on 2D matrix and 3D scaffold induced upregulation of MMP3 mRNAs, and activation of integrins through conjugation of extracellular matrix (ECM) analogs with 3D scaffold upregulated MMP3 mRNAs synergistically. These results suggest that successful proliferation of ESCs inside the 3D PEG-based hydrogel may be caused by increase of MMP2 and MMP3 expression resulting from 3D scaffold itself as well as activation of integrins inside the 3D PEG-based scaffold.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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