The purpose of this study was to investigate the effects of morin, an antioxidant, on the bioavailability of doxorubicin (DOX) in rats. Thus, DOX was administered intravenously (10 mg/kg) or orally (50 mg/kg) with or without oral morin (0.5, 3 and 10 mg/kg). In the presence of morin, the total area under the plasma concentration-time curve (AUC) of DOX was significantly greater than that of the control. In the presence of 3 and 10 mg/kg of morin, the peak concentration $C_{MAX}$) was significantly higher than that of the control. Consequently, the absolute bioavailability (AB) of DOX in the presence of morin was 3.7-8.3%, which was significantly enhanced compared with those of the control group (2.7%). The relative bioavailability (RB) of DOX was 1.36 to 3.02 times higher than those of the control group. Compared to the intravenous control, the presence of morin increased the AUC of DOX, but was not significantly affected. The enhanced bioavailability of oral DOX by oral morin may be due to the inhibition of both P-glycoprotein (P-gp) and cytochrome P450 (CYP) 3A in the intestine and/or liver by morin. This result may suggest that the development of oral DOX combination with morin is feasible, which is more convenient than the i.v. dosage forms. The present study raised the awareness about the potential drug interactions by concomitant use of DOX with morin.
The aim of this study was to investigate the effect of morin on the bioavailability of nimodipine after administering nimodipine (15 mg/kg) orally to rabbits either co-administered or pretreated with morin (2, 10 and 20 mg/kg). The plasma concentrations of nimodipine in the rabbits pretreated with morin were increased significantly (p<0.05 at 10 mg/kg, p<0.01 at 20 mg/kg) compared with the control, but the plasma concentrations of nimodipine co-administered with morin were not significant. The areas under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentrations $(C_{max})$ of the nimodipine in the rabbits pretreated with morin were significantly higher (p<0.05 at 10 mg/kg, p<0.01 at 20 mg/kg), but only the $C_{max}$ of nimodipine coadministered with morin 10 mg/kg was increased significantly (p<0.05). The absolute bioavailability $(A.B\%)$ of nimodipine in the rabbits pretreated with morin was significantly (p<0.05 at 10 mg/kg, p<0.01 at 20 mg/kg) higher $(54.1-65.0\%)$ than the control $(36.7\%)$. The increased bioavailability of nimodipine in the rabbits pretreated with morin might have been resulted from the morin, which inhibits the efflux pump P-glycoprotein and the first-pass metabolizing enzyme by cytochrome P-450 3A4 (CYP 3A4).
The purpose of this study was to investigate the effect of morin, a flavonoid, on the pharmacokinetics of diltiazem and one of its metabolites, desacetyldiltiazem in rats. Pharmacokinetic parameters of diltiazem and desacetyldiltiazem were determined after oral administration of diltiazem (15 mg/kg) in rats pretreated with morin (1.5, 7.5, and 15 mg/kg). Compared with the control group (given diltiazem alone), pretreatment of morin significantly increased the absorption rate constant $(K_a)$ and peak concentration $(C_{max})$ of diltiazem (p<0.05, p<0.01). Area under the plasma concentration-time curve (AUC) of diltiazem in rats pretreated with morin were significantly higher than that in the control group (p<0.05, p<0.01), hence the absolute bioavailability $(AB\%)$ of diltiazem was significantly higher than that of the control group (p<0.05, p<0.01). Relative bioavailability $(RB\%)$ of diltiazem in rats pretreated with morin was increased by 1.36- to 2.03-fold. The terminal half-life $(t_{1/2})$ and time to reach the peak concentration $(T_{max})$ of diltiazem were not altered significantly with morin pretreatment. AUC of desacetyldiltiazem was increased significantly (p<0.05) in rats pretreated with morin at doses of 7.5 and 15 mg/kg, but metabolite-parent ratio (MR) of desacetyldiltiazem was decreased significantly (p<0.05), implying that pretreatment of morin could be effective to inhibit the CYP 3A4-mediated metabolism of diltiazem. There were no apparent changes of $T_{max}$ and $t_{1/2}$ of desacetyldiltiazem with morin pretreatment. Collectively, the pretreatment of morin significantly altered pharmacokinetics of diltiazem, which can be attributed to increased intestinal absorption as well as reduced first-pass metabolism. Based on these results, dose modification should be taken into consideration when diltiazem is used concomitantly with morin or morin-containing dietary supplements in clinical setting.
The aim of this study was to investigate the effect of morin on the pharmacokinetics of nifedipine in rats. The pharmacokinetic parameters of nifedipine were measured after the oral administration of nifedipine (5 mg/kg) in the presence or absence of morin (1.5, 7.5 and 15 mg/kg, respectively). Compared to the control groups, the presence of 7.5 mg/kg and 15 mg/kg of morin significantly (p<0.05) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of nifedipine by 48.5${\sim}$68.2%, and the peak concentration (C$_{max}$,) of nifedipine by 59.9~84.2%. The absolute bioavailability(AB%) of nifedipine was significantly (p<0.05) increased by 21.5${\sim}$24.5% compared to the control (14.5%). While there was no significant change in the time to reach the peak plasma concentration (T$_{max}$) and the terminal half-life (T$_{1/2}$) of nifedipine in the presence of morin. It might be suggested that morin altered disposition of nifedipine by inhibition of both the first-pass metabolism and p-glycoprotein (P-gp) efflux pump in the small intestine of rats. In conclusion, the presence of morin significantly enhanced the oral bioavailability of nifedipine, suggesting that concurrent use of morin or morin-containing dietary supplement with nifedipine should require close monitoring for potential drug interaction.
Square-wave anodic stripping voltammetry was applied to the germanium(IV)- Morin complex in 0.5 M sulfuric acid as a supporting electrolyte. The peak potential appeared at - 0.606 V vs. Ag/AgCl. Effects of sulfuric acid concentration, Morin concentration, accumulation potential, and accumulation time on the stripping peak current for the complex of germanium(IV)-Morin were studied. Interferences by other metal cations that affect on stripping peak current were also investigated. The detection limit was found to be $3.76{\times}10^{-7}M(27 {\mu}g/L)$ for germanium(IV) using 60 seconds of accumulation time. The relative standard deviation (n=8) for 0.4 mg/L($5.5{\times}10^{-6}$ M) germanium(IV) was 3.2%.
Morin, a flavonoid found in figs and other Moraceae species, displays a variety of biological actions, exerting anti-oxidant, anti-inflammatory and anti-carcinogenic effects. Here, we investigated the anti-cancer activity of morin focusing on anti-adhesive influence. We performed experiments with MDA-MB-231 human breast cancer cells. Morin inhibited TNF-induced cancer cell adhesion to human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) without showing any toxicity. It further inhibited the expression of VCAM-1 on MDA-MB-231 cells as well as HUVECs. Morin also decreased the expression of N-cadherin on MDA-MB-231 cells. In addition, there was apparent anti-metastatic activity in vivo. In conclusion, this study suggested that morin inhibits cancer cell adhesion to HUVECs by reducing VCAM-1, and EMT by targeting N-cadherin, and that it features anti-metastatic activity in vivo. Further investigation of possible anti-metastatic activity of morin against human breast cancer cells is warranted.
We investigated the effects of naringenin and morin on IL-5 and ROS production in PMA+ionomycin-treated EL-4 cells with the corroboration of their antioxidant and anti-inflammatory properties using an asthma-induced mouse model. The EL-4 cell line was used to study the outcomes of naringenin or morin, followed by cell viability studies. Western blot analysis and ELISA test were used to determine Th2 mediated cytokines. In vivo studies were carried out on BALB/c mice to induce allergic asthma using ovalbumin administered intraperitoneally. Intracellular ROS was determined using 2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate, followed by serum enzymatic (AST and ALT) estimations and inflammatory cell count in the bronchoalveolar lavage fluid (BALF) and lung tissues. Histopathological studies were conducted to examine lung tissue-stained architecture. Our findings suggested that naringenin and morin significantly suppressed IL-5 and ROS production via various pathways. Interestingly, by reducing NFAT activity, naringenin and morin stimulated HO-1 expression, thereby suppressing IL-5 secretion due to regulating the transcription factor Nrf2 via P13/Akt or ERK/JNK signalling pathways in EL-4 cells, demonstrating the involvement of HO-1 expression in inhibiting asthmatic inflammation. The increased inflammatory cells in the BALF were substantially decreased by both naringenin and morin, followed by inhibition in the elevated Th-2 cytokines levels. The TNF-α protein levels in an allergic asthma mouse model were significantly reduced by suppressing Akt phosphorylation and eosinophil formation. Recent findings confirmed that naringenin and morin possess the potential to control asthma-related immune responses through antioxidant and anti-inflammatory properties, indicating potential therapeutic agents or functional foods.
Morin, one of the major natural flavonoids has been reported to exhibit a wide range of pharmacological properties. In this study, we investigated the hepatoprotective effect of morin on the dimethylnitrosamine (DMN)-induced liver damage in rats. Oral administration of morin (10, 20mg/kg daily for 4 weeks) into the DMN-treated rats remarkably prevented the elevation of serum alanine transaminase, aspartate transaminase and alkaline phospatase, and bilirubin levels. Morin also increased serum protein level and reduced the hepatic level of malondialdehyde in DMN-treated rats. (omitted)
This article presents a study on the concept of "Photogenie", which refers to the duality and mentality of the photographic image, with the viewpoint regarding the photographic image by Edgar Morin. First, we will look at the evolution of the concept of "Photogenie". From the field of photography, the term "Photogenie" means objects that produce light, enough to impress the photographic plate. But theorists of cinema at the beginning of the 20th century have changed the meaning of the term. For Louis Delluc, the "Photogenie" means the effect of union between the reproduction of real and artistic genius. For Jean Epstein, the "Photogenie" means mental quality, nonmaterial or inderterminable, of the photographic and cinematographic image. But Morin synthesized the arguements of Delluc and Epstein. For him, the "Photogenie" indicates both a double character of the photographic image and its mental quality. Then, based on this concept of "Photogenie," Morin said on particular aspects in the photographic image. Considering photography as a double in the anthropological sense, it puts emphasis not only the dual nature of the photographic image but also mental and spiritual quality. Combining the theory of the mage Henri Bergson and Jean-Paul Sartre, he builds his own theory of the mage that concerns both photography and cinema. In short, to Morin, the photographic image is a place where coexist absence and presence, the real and the imaginary, perception and memory, the material and mental, as well that a place of mentality which appear all our memories, hallucinations, dreams, imagination etc.
We investigated the effect of dietaty flavonoid, such as CYP1A1 promoter activity, 7-ethoxyresorufin-O-deethylase(EROD) activity and CYP1A1 mRNA expression induced by benzo(k)fluoranthene(B(k)F) in MCF-7 cells. Based on the three criteria of frequency of occurrence in the environment, toxicity and potential exposure to humans, B(k)F is one of the top-listed PAHs. We found that B(k)F significantly up-regulates the level of CYP1A1 promoter activity, EROD and CYP1A1 mRNA. When cells were treated with morin alonem, it was not changed that EROD and CYP1A1 mRNA, compared to that of control. However, morin inhibited the B(k)-induced CYP1A1 prompter activity and mRNA level at high concentration. But morin exhibited stimulatory effects B(k)F-induced CYP1A1 promoter activity and mRNA level at low concentration. Overall, results from these studies demonstrate morin might interfere the action of B(k) with AhR system to stimulate CYP1A1 gene expression. CYP1A1 is known to be inducible by xenobiotic compouds such as polyciclic aromatic hydrocarbons(PAHs) and 2,3,7,8-tetrachloro-dibenzo-p-dioxin(TCDD). These chemicals have been identified worldwide and can have a significant impact on the human health and well being of human and wildlife. Given these issues, the detection and quantification of these chemicals in biological, environmental and food samples is important.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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