Objective: The prevalence of metabolic syndrome and type 2 diabetes is increasing worldwide. Mitochondrial dysfunction is known to be involved in insulin resistance and obesity, researches have been increasing highly. Astragali Radix extract (ARE) or its main components have been shown to perform comparably to insulin by significantly reducing blood glucose levels in animal models however, the influence on mitochondrial dysfunction are not well understood. Methods: ARE (0.2, 0.5 and 1.0 mg/ml) or metformin (2.5 mM) were treated in C2C12 after 6 day-differentiation. The expressions of adenosine monophosphate (AMP)-activated protein kinase (AMPK) and phosphorylation AMPK, peroxisome proliferators-activated receptror ${\gamma}$ coactivator $1{\alpha}$ ($PGC1{\alpha}$), nuclear respiratory factors 1 (NRF1), mitochondrial transcription factor (Tfam) and myosin heavy chain were detected with western blotting or polymerase chain reaction analysis. The morphological changes were also investigated. Results: ARE dose dependently increased phosphorylation of AMPK and respectively activated mRNA expressions of $PGC1{\alpha}$, NRF1 and Tfam which are mitochondrial biogenesis regulators. Furthermore, there were some morphologic differences of differentiated cells between ARE treatment and control. Conclusions: This study suggests that ARE has the potential to increase muscle mitochondrial function by activating AMPK and $PGC1{\alpha}$.
Mitophagy, the selective degradation of damaged or surplus mitochondria using core autophagy machinery, plays an essential role in maintaining cellular mitochondrial function. Impaired mitophagy is closely linked to various human diseases, including neurodegenerative diseases, cardiovascular diseases, cancers and kidney disease. Defective mitophagy induces the accumulation of damaged mitochondria and thereby results in a decline in cellular survival and tissue function. Accordingly, enhancement of mitophagy has been proposed as a novel strategy for the treatment of human diseases closely linked to mitochondrial dysfunction. Recent studies showing that the stimulation of mitophagy has a therapeutic effect on several disease models highlight the possibility of disease treatment using mitophagy. The development of mitophagy inducers with toxicity and the identification of molecular mechanisms will enable the clinical application of mitophagy-based treatments.
Mitochondrial quality control systems are essential for the maintenance of functional mitochondria. At the organelle level, they include mitochondrial biogenesis, fusion and fission, to compensate for mitochondrial function, and mitophagy, for degrading damaged mitochondria. Specifically, in mitophagy, the target mitochondria are recognized by the autophagosomes and delivered to the lysosome for degradation. In this review, we describe the mechanisms of mitophagy and the factors that play an important role in this process. In particular, we focus on the roles of mitophagy adapters and receptors in the recognition of damaged mitochondria by autophagosomes. In addition, we also address a functional association of mitophagy with mitochondrial dynamics through the interaction of mitophagy adaptor and receptor proteins with mitochondrial fusion and fission proteins.
Mitochondrion is an intracellular organelle with its own genome. Its function in cellular metabolism is indispensable that mitochondrial dysfunction gives rise to multisystemic failure. The manifestation is most prominent with tissues of high energy demand such as muscle and nerve. Mitochondrial myopathies occur not only by mutations in mitochondrial genome, but also by defects in nuclear genes or secondarily by toxic insult on mitochondrial replication. Currently curative treatment modality does not exist and symptomatic treatment remains mainstay. Administration of L-arginine holds great promise according to the recent reports. Advances in mitochondrial RNA import might enable a new therapeutic strategy.
The decrease of metabolism in the brain has been observed as the important lesions of Alzheimer's disease (AD) from the early stages of diagnosis. The cumulative evidence has reported that the failure of mitochondria, an organelle involved in diverse biological processes as well as energy production, maybe the cause or effect of the pathogenesis of AD. Both amyloid and tau pathologies have an impact upon mitochondria through physical interaction or indirect signaling pathways, resulting in the disruption of mitochondrial function and dynamics which can trigger AD. In addition, mitochondria are involved in different biological processes depending on the specific functions of each cell type in the brain. Thus, it is necessary to understand mitochondrial dysfunction as part of the pathological phenotypes of AD according to each cell type. In this review, we summarize that 1) the effects of AD pathology inducing mitochondrial dysfunction and 2) the contribution of mitochondrial dysfunction in each cell type to AD pathogenesis.
Mitochondrial injury in renal tubule has been recognized as a major contributor in acute kidney injury (AKI) pathogenesis. Ischemic insult, nephrotoxin, endotoxin and contrast medium destroy mitochondrial structure and function as well as their biogenesis and dynamics, especially in renal proximal tubule, to elicit ATP depletion. Mitochondrial fatty acid ${\beta}$-oxidation (FAO) is the preferred source of ATP in the kidney, and its impairment is a critical factor in AKI pathogenesis. This review explores current knowledge of mitochondrial dysfunction and energy depletion in AKI and prospective views on developing therapeutic strategies targeting mitochondrial dysfunction in AKI.
Although the antioxidant and cardioprotective effects of NecroX-5 on various in vitro and in vivo models have been demonstrated, the action of this compound on the mitochondrial oxidative phosphorylation system remains unclear. Here we verify the role of NecroX-5 in protecting mitochondrial oxidative phosphorylation capacity during hypoxia-reoxygenation (HR). Necrox-5 treatment ($10{\mu}M$) and non-treatment were employed on isolated rat hearts during hypoxia/reoxygenation treatment using an ex vivo Langendorff system. Proteomic analysis was performed using liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS) and non-labeling peptide count protein quantification. Real-time PCR, western blot, citrate synthases and mitochondrial complex activity assays were then performed to assess heart function. Treatment with NecroX-5 during hypoxia significantly preserved electron transport chain proteins involved in oxidative phosphorylation and metabolic functions. NecroX-5 also improved mitochondrial complex I, II, and V function. Additionally, markedly higher peroxisome proliferator-activated receptor-gamma coactivator-$1{\alpha}$ ($PGC1{\alpha}$) expression levels were observed in NecroX-5-treated rat hearts. These novel results provide convincing evidence for the role of NecroX-5 in protecting mitochondrial oxidative phosphorylation capacity and in preserving $PGC1{\alpha}$ during cardiac HR injuries.
This study was investigated the effects of exercise and supplementation of L-carnitine and antioxidants on hepatic mitochondrial function, especially oxidative phosphorylation (OXPHOS). Isolated hepatic mitochondria from 4 rat groups were functionally tested by an analysis of respiration and the coupling of this process to ATP synthesis in the presence of ADP. Four groups were non-trained, non-supplemented group (NTNS), non-trained, supplemented group (NTS), long term-trained, non-supplemented group (LTNS) , and long term-trained, supplemented group (LTS). The trained rats run on a treadmill (grade 10°,20 m/min) for 60min/day for 8 weeks. The supplemented rats were treated with L-carnitine (0.5% diet), vitamin E(0.5mg/g BW), vitamin C (0.5mg/g BW) and melatonin (1 $\mu$ g/g BW) for 8 weeks. There were exercise effects on improving mitochondrial OXPHOS. Within non-supplemented groups, exercised rats resulted in a significant decrease in state 4 oxygen consumption, which increased the respiratory control (RC) ratio and ADP : O (P/O) ratio. There were supplementation effects on improving mitochondrial OXPHOS, too. Within non-exercised rats, supplemented rats resulted in a significant decrease in state 4 oxygon consumption. which increased the RC ratio and P/O ratio. There were additive effects of exercise and supplementation on OXPHOS. Within supplemented rats, exercise resulted in an increase in RC ratio. Significant effects of exercise-supplement interaction on improving OXPHOS were identified. It suggests that exercise and supplementation of L-carnitine and antioxidants might improve more efficiently the impaired OXPHOS efficiency in mitochondrial dysfunction that recognized as is an important cause of degenerative diseases. (J Community Nutrition 4(3) : 187∼194, 2002)
Exposure of isolated intact mitochondria to near UV to visible light resulted in not only loss of respiration, the most well-documented phenomenon regarding phototoxic effects in the respiring organelles, but also lipid peroxidation of membranes and mitochondrial swelling; these turned out to be O$_2$-dependent and thus prevented by anaerobiosis, enhanced by a partial deuteration of the suspension medium, and suppressed by the presence of a singlet oxygen ($^1O_2$) scavenger. Measurements of the spectral dependence of such detrimental effects of light on mitochondrial structure and function revealed that all the resulting spectra bear a significant resemblance to the action spectrum for photogeneration of $^1O_2$ from mitochondrial membranes, which in turn carries the spectral characteristics of light absorption by mitochondrial Fe-S centers. Futhermore, destructing the Fe-S centers by a mercurial treatment of mitochondria brought about a striking reduction of the light-induced membrane peroxidation and swelling of mitochondria. These results are consistent with the suggestion that the impairment of functional, structural integrity of mitochondria caused by strong irradiation is directly related to the production of $^1O_2$ in mitochondria, photosensitized by the Fe-S centers. This paper also presents kinetic data which indicate that, among various membrane-bound protein systems associated with mitochondrial energy metabolism, the respiratory chain is the primary target for photodamage.
The mitochondrial plasmid pMLP1 from a white-rot fungus, Pleurotus ostreatus, is a double-stranded DNA containing 381 bp terminal inverted repeat (TIR) whose 5'-ends are covalently bound by terminal proteins. The plasmid contains two major open reading frames (ORFs), encoding putative DNA and RNA polymerases, and a minor ORF encoding a small, highly basic protein. To identify the DNA binding activity that recognizes the TIR region of pMLP1, gel retardation assays were performed with mitochondrial extracts. A specific protein binding to a region between 123 and 248 nt within TIR was observed. We examined whether the gene product of mORF1 bindes to this region specifically. E. coli cell extract which contains an overproduced mORF1 protein formed a complex specific to the region between 123 and 248 nt. Inclusion of mORF1 protein in the specific complex formed between P. ostreatus mitochondrial extract and TIR was confirmed by a supershift assay using polyclonal antibodies against the mORF1 protein. Our result suggest that the product of mORF1 may function as a terminal region recognition factor (TRF), recognizing an internal region in TIR.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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