Ling Liew Siew;Mohamad Rosfarizan;Rahim Raha Abdul;Wan Ho Yin;Ariff Arbakariya Bin
Journal of Microbiology
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v.44
no.4
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pp.439-446
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2006
In this study, the growth kinetics of Lactobacillus rhamnosus and lactic acid production in continuous culture were assessed at a range of dilution rates $(0.05 h^{-1}\;to\;0.40h^{-1})$ using a 2L stirred tank fermenter with a working volume of 600ml. Unstructured models, predicated on the Monod and Luedeking-Piret equations, were employed to simulate the growth of the bacterium, glucose consumption, and lactic acid production at different dilution rates in continuous cultures. The maximum specific growth rate of L. rhamnosus, ${\mu}_{max}$, was estimated at $0.40h^{-1}$I, and the Monod cell growth saturation constant, Ks, at approximately 0.25g/L. Maximum cell viability $(1.3{\times}10^{10}CFU/ml)$ was achieved in the dilution rate range of $D=0.28h^{-1}\;to\;0.35h^{-1}$. Both maximum viable cell yield and productivity were achieved at $D=0.35h^{-1}$. The continuous cultivation of L. rhamnosus at $D=0.35h^{-1}$ resulted in substantial improvements in cell productivity, of 267% (viable cell count) that achieved via batch cultivation.
The objective of this study was to assess the characteristics of Sikhe prepared with Astragalus membranaceus water extracts. The pH of the Sikhe increased with increasing amounts of the added extract. The L value (Lightness) decreased with increasing extract content, whereas the a and b values increased with increasing amounts of extracts. The saccharinity of the Sikhe also increased with increasing amounts of the extract. The microbial cell counts of the Sikhe samples presented no distinct differences in the early storage period, but the total microbial cell counts decreased with increasing concentrations of the extract over a longer storage period. Adding the extract did not affect the sensory characteristics of the Sikhe. Thus, according to our results, the addition of Astragalus membranaceus water extract has no impact on the sensory characteristics of Sikhe and can reduce the amount of added sugar. In addition, these results indicate Astragalus membranaceus may inhibit normal microbial growth and extend the shelf life of Sikhe.
Aldehyde production by cells of a methanol utilizing yeast, Hansenula nonfermentans KYP-1 was improved when they were grown in a methanol-limited continuous culture, in comparison with cells grown in a batch culture. A higher cell yield was also obtained in continuous culture than in batch culture. This could be due to the fact that a lower methanol concentration was maintained in the jar fermentor to minimize growth inhibition by methanol. A maximum cell productivity of 0.219 g.$liter^{-1}.hr^{-l}$ and a cell yield of 47% were obtained at dilution rates of 0.1 $hr{-1}$ and 0.06 hr{-1}, respectively. The greatest amount of aldehyde was measured at a dilution rate of 0.08 $hr{-1}$. Under optimum reaction conditions, 915.7 mM of acetaldehyde was produced from 1.5 M ethanol after 21 hours reaction, with a conversion rate of 61%. Propionaldehyde and acrolein were produced with conversion rates of 32.7% and 44%, respectively.
In the present investigation we have studied the effect of bear's gall on mammalian cells and demonstrated that COS-7 cells, which were derived Monkey kidney cells, had shown almost same extent of growth with 78 hrs in 10% FCS Dulbecco's Modified Eagle's medium with bear's gall and without bear's gall. But the hybridoma cells which were fused murine myeloma cells and the rat spleen cells for monoclonal antibody production died almost within 48 hrs. To investigate the effect of biosynthetic mechanism, cDNA were transfected to COS-7 cells, and it was shown that cDNA-transfected COS-7 cell had produced 30-40% less the amount of recombinant protein than the medium without bear's gall.
In the course of screening for microbial metabolites employing human cancer cell line, we identified a mycelial extract of Streptomyces sp. 1365, which are effective on growth inhibition and morphological change of MCF-7, human breasr cancer cell line. By repeased column chromatography and recrystallization process, yellow needle crystals were obtained as an active compound and identified as resistomycin by spectral analysis.
Two experiments were conducted to examine the effects of a range of concentrations of ruminal fluid ammonia ($NH_3$-N) on forage digestibility, microbial growth efficiency and the mix of microbial species. Urea was either continuously infused directly into the rumen of sheep fed 33.3 glh of oaten chaff (Exp. I) or sprayed onto the oaten chaff (750 g/d) given once daily (Exp. 2). Concentrations of $NH_3$-N increased with incremental addition of urea (p < 0.01). Volatile fatty acids (VFA) concentrations and 24 h in sacco organic matter digestibility in the rumen were higher when supplemental urea was given (p < 0.01). The (C2 + C4) : C3 VFA ratio was lower (p < 0.05) when $NH_3$-N was above 200 mgN/I. The fungal sporangia appearing on oat leaf blades were significantly higher when urea was supplemented, indicating that $NH_3$-N was a growthlimiting nutrient for fungi at levels of $NH_3$-N below 30 mgN/l. The density of protozoa was highest when $NH_3$-N concentrations were adjusted to 30 mgN/I for continuously fed ($4.4{\times}10^5/ml$) and to 168 mgN/1 for once daily feeding ($2.9{\times}10^5/ml$). Thereafter increasing concentrations of $NH_3$-N, were associated with a concomitant decline in protozoal densities. At the concentration of $NH_3$-N above 200 mgN/l, the density of protozoa was similar to the density of protozoa in ruminal fluid of the control sheep ($1.8{\times}10^5/ml$). The efficiency of net microbial protein synthesis in the rumen calculated from purine excretion was 17-47% higher when the level of $NH_3$-N was above 200 mgN/1. The possibilities are that 1) there is less bacterial cell lysis in the rumen because of the concomitant decrease in the protozoal pool and/or 2) microbial growth per se in the rumen is more efficient with increasing $NH_3$-N concentrations.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.4
no.4
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pp.387-390
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2003
The microbiological stability was examined by detecting the growth of microorganisms in the closed bottles under anaerobic long-term storage at $25^{\circ}C$ and 35$^{\circ}C$. Microbial growth was examined by a microscope and total cell number on a plate medium was quantitatively measured. There was no observed microbial growth in biodiesel for 90 days.
A series of experiments was carried out to determine the possibility for the non-ionic surfactant (NIS) as a feed additive for ruminant animals. The effect of the NIS on (1) the enzyme distribution in the rumen fluids of Hereford bulls, (2) the growth of pure culture of rumen bacteria and (3) rumen anaerobic fungi, (4) the ruminal fermentation characteristics of Korean native cattle (Hanwoo), and (5) the performances of Holstein dairy cows were investigated. When NIS was added to rumen fluid at the level of 0.05 and 0.1% (v/v), the total and specific activities of cell-free enzymes were significantly (p<0.01) increased, but those of cell-bound enzymes were slightly decreased, but not statistically significant. The growth rates of ruminal noncellulolytic species (Ruminobacter amylophilus, Megasphaera elsdenii, Prevotella ruminicola and Selenomonas ruminantium) were significantly (p<0.01) increased by the addition of NIS at both concentrations tested. However, the growth rate of ruminal cellulolytic bacteria (Fibrobacter succinogenes, Ruminococcus albus, Ruminococcus flavefaciens and Butyrivibrio fibrisolvens) were slightly increased or not affected by the NIS. In general, NIS appears to effect Gram-negative bacteria more than Gram-positive bacteria; and non-cellulolytic bacteria more than cellulolytic bacteria. The growth rates of ruminal monocentric fungi (Neocallimastix patriciarum and Piromyces communis) and polycentric fungi (Orpinomyces joyonii and Anaeromyces mucronatus) were also significantly (p<0.01) increased by the addition of NIS at all concentrations tested. When NIS was administrated to the rumen of Hanwoo, Total VFA and ammonia-N concentrations, the microbial cell growth rate, CMCase and xylanase activities in the rumen increased with statistical difference (p<0.01), but NIS administration did not affect at the time of 0 and 9 h post-feeding. Addition of NIS to TMR resulted in increased TMR intake and increased milk production by Holstein cows and decreased body condition scores. The NEFA and corticoid concentrations in the blood were lowered by the addition of NIS. These results indicated that the addition of NIS may greatly stimulate the release of some kinds of enzymes from microbial cells, and stimulate the growth rates of a range of anaerobic ruminal microorganisms, and also stimulate the rumen fermentation characteristics and animal performances. Our data indicates potential uses of the NIS as a feed additive for ruminant animals.
Electricity generation of microbial fuel cells (MFC) is greatly affected by the kind of feed substrates because substrates would change microbial community of electrochemically active bacteria (EAB) able to transfer electrons to electrode. The effect of different substrates on electricity generation and microbial community of MFC was investigated. Two-chamber MFCs fed with acetate (A-MFC), butyrate (B-MFC), propionate (P-MFC), glucose (G-MFC) and a mixture (M-MFC) of the 4 substrates (acetate : butyrate : propionate : glucose = 1 : 1 : 1 : 1 as $COD_{Cr}$ base) were operated under continuous mode. The maximum power density was found from the M-MFC ($190W/m^3$) which showed the lowest internal resistance ($89{\Omega}$). The maximum power densities of the pure substrates feed MFCs were in order of A-MFC ($25W/m^3$), P-MFC ($21W/m^3$), B-MFC ($20W/m^3$) and G-MFC ($9W/m^3$). In DGGE analysis, the microbial community structure in suspension was quite different from each others depending on feed substrates, while the community structure in the biofilm was relatively similar regardless of the substrates. This result suggests that the feed substrates would affect the microbial community of suspended growth bacteria than attached growth bacteria resulting in difference of electricity generation in MFCs.
The conversion of a cellulose-producing cell ($Cel^+$) from Gluconacetobacter hansenii PJK (KCTC 10505 BP) to a non-cellulose-producing cell ($Cel^-$) was investigated by measuring the colony forming unit (CFU). This was achieved in a shaking flask with three slanted baffles, which exerted a strong shear stress. The addition of organic acid, such as glutamic acid and acetic acid, induced the conversion of microbial cells from a wild type to $Cel^-$ mutants in a flask culture. The supplementation of $1\%$ ethanol to the medium containing an organic acid depressed the con-version of the microbial cells to $Cel^-$ mutants in a conventional flask without slanted baffles. The addition of ethanol to the medium containing an organic acid; however, accelerated the conversion of microbial cells in the flask with slanted baffles. The $Cel^+$ cells from the agitated culture were not easily converted into $Cel^-$ mutants on the additions of organic acid and ethanol to a flask without Slanted baffles, but some portion of the $Cel^+$ cells were converted to $Cel^-$ mutants in a flask with slanted baffles. The conversion ratio of $Cel^+$ cells to $Cel^-$ mutants was strongly re-lated to the production of bacterial cellulose independently from the cell growth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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