Gi Beom Keum;Eun Sol Kim;Jinho Cho;Minho Song;Kwang Kyo Oh;Jae Hyoung Cho;Sheena Kim;Hyeri Kim;Jinok Kwak;Hyunok Doo;Sriniwas Pandey;Hyeun Bum Kim;Ju-Hoon Lee
Journal of Animal Science and Technology
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v.65
no.1
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pp.175-182
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2023
Antibiotics have been used in livestock production for not only treatment but also for increasing the effectiveness of animal feed, aiding animal growth, and preventing infectious diseases at the time when immunity is lowered due to stress. South Korea and the EU are among the countries that have prohibited the use of antibiotics for growth promotion in order to prevent indiscriminate use of antibiotics, as previous studies have shown that it may lead to increase in cases of antibiotic-resistant bacteria. Therefore, this study evaluated the number of antibiotic resistance genes in piglets staging from pre-weaning to weaning. Fecal samples were collected from 8 piglets just prior to weaning (21 d of age) and again one week after weaning (28 d of age). Total DNA was extracted from the 200 mg of feces collected from the 8 piglets. Whole metagenome shotgun sequencing was carried out using the Illumina Hi-Seq 2000 platform and raw sequence data were imported to Metagenomics Rapid Annotation using Subsystem Technology (MG-RAST) pipeline for microbial functional analysis. The results of this study did not show an increase in antibiotic-resistant bacteria although confirmed an increase in antibiotic-resistant genes as the consequence of changes in diet and environment during the experiment.
Animesh Kumar;Espen M. Robertsen;Nils P. Willassen;Juan Fu;Erik Hjerde
Genomics & Informatics
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v.21
no.4
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pp.49.1-49.11
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2023
Recent advances in sequencing technologies and platforms have enabled to generate metagenomics sequences using different sequencing platforms. In this study, we analyzed and compared shotgun metagenomic sequences generated by HiSeq3000 and BGISEQ-500 platforms from 12 sediment samples collected across the Norwegian coast. Metagenomics DNA sequences were normalized to an equal number of bases for both platforms and further evaluated by using different taxonomic classifiers, reference databases, and assemblers. Normalized BGISEQ-500 sequences retained more reads and base counts after preprocessing, while a slightly higher fraction of HiSeq3000 sequences were taxonomically classified. Kaiju classified a higher percentage of reads relative to Kraken2 for both platforms, and comparison of reference database for taxonomic classification showed that MAR database outperformed RefSeq. Assembly using MEGAHIT produced longer assemblies and higher total contigs count in majority of HiSeq3000 samples than using metaSPAdes, but the assembly statistics notably improved with unprocessed or normalized reads. Our results indicate that both platforms perform comparably in terms of the percentage of taxonomically classified reads and assembled contig statistics for metagenomics samples. This study provides valuable insights for researchers in selecting an appropriate sequencing platform and bioinformatics pipeline for their metagenomics studies.
Hyeri Kim;Eun Sol Kim;Jin Ho Cho;Minho Song;Jae Hyoung Cho;Sheena Kim;Gi Beom Keum;Jinok Kwak;Hyunok Doo;Sriniwas Pandey;Seung-Hwan Park;Ju Huck Lee;Hyunjung Jung;Tai Young Hur;Jae-Kyung Kim;Kwang Kyo Oh;Hyeun Bum Kim;Ju-Hoon Lee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.1
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pp.51-60
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2023
The foodborne illness is the important public health concerns, and the livestock feces are known to be one of the major reservoirs of foodborne pathogens. Also, it was reported that 45.5% of foodborne illness outbreaks have been associated with the animal products contaminated with the livestock feces. In addition, it has been known that the persistence of a pathogens depends on many potential virulent factors including the various virulent genes. Therefore, the first step to understanding the public health risk of livestock feces is to identify and describe microbial communities and potential virulent genes that contribute to bacterial pathogenicity. We used the whole metagenome shotgun sequencing to evaluate the prevalence of foodborne pathogens and to characterize the virulence associated genes in pig and chicken feces. Our data showed that the relative abundance of potential foodborne pathogens, such as Bacillus cereus was higher in chickens than pigs at the species level while the relative abundance of foodborne pathogens including Campylobacter coli was only detected in pigs. Also, the microbial functional characteristics of livestock feces revealed that the gene families related to "Biofilm formation and quorum sensing" were highly enriched in pigs than chicken. Moreover, the variety of gene families associated with "Resistance to antibiotics and toxic compounds" were detected in both animals. These results will help us to prepare the scientific action plans to improve awareness and understanding of the public health risks of livestock feces.
Purpose: Culture-based methods for microbiological diagnosis and antibiotic susceptibility tests have limitations in the management of orofacial infections. We aimed to profile pus microbiota and identify antibiotic resistance genes (ARGs) using a culture-independent approach. Materials and Methods: Genomic DNA samples extracted from the pus specimens of two patients with orofacial abscesses were subjected to shotgun sequencing on the NovaSeq system. Taxonomic profiling and prediction of ARGs were performed directly from the metagenomic raw reads. Result: Taxonomic profiling revealed obligate anaerobic polymicrobial communities associated with infections of odontogenic origins: the microbial community of Patient 1 consisted of one predominant species (Prevotella oris 74.6%) with 27 minor species, while the sample from Patient 2 contained 3 abundant species (Porphyromonas endodontalis 33.0%; P. oris 31.6%; and Prevotella koreensis 13.4%) with five minor species. A total of 150 and 136 putative ARGs were predicted in the metagenome of each pus sample. The coverage of most predicted ARGs was less than 10%, and only the CfxA2 gene identified in Patient 1 was covered 100%. ARG analysis of the seven assembled genome/metagenome datasets of P. oris revealed that strain C735 carried the CfxA2 gene. Conclusion: A metagenomics-based approach is useful to profile predominantly anaerobic polymicrobial communities but needs further verification for reliable ARG detection.
In this study, protein domains with cellulase activity in goat rumen microbes were investigated using metagenomic and bioinformatic analyses. After the complete genome of goat rumen microbes was obtained using a shotgun sequencing method, 217,892,109 pair reads were filtered, including only those with 70% identity, 100-bp matches, and thresholds below $E^{-10}$ using METAIDBA. These filtered contigs were assembled and annotated using blastN against the NCBI nucleotide database. As a result, a microbial community structure with 1431 species was analyzed, among which Prevotella ruminicola 23 bacteria and Butyrivibrio proteoclasticus B316 were the dominant groups. In parallel, 201 sequences related with cellulase activities (EC.3.2.1.4) were obtained through blast searches using the enzyme.dat file provided by the NCBI database. After translating the nucleotide sequence into a protein sequence using Interproscan, 28 protein domains with cellulase activity were identified using the HMMER package with threshold E values below $10^{-5}$. Cellulase activity protein domain profiling showed that the major protein domains such as lipase GDSL, cellulase, and Glyco hydro 10 were present in bacterial species with strong cellulase activities. Furthermore, correlation plots clearly displayed the strong positive correlation between some protein domain groups, which was indicative of microbial adaption in the goat rumen based on feeding habits. This is the first metagenomic analysis of cellulase activity protein domains using bioinformatics from the goat rumen.
Woojung Lee;Min-Hee Kim;Juyeon Park;You Jin Kim;Eiseul Kim;Eun Jeong Heo;Seung Hwan Kim;Gyungcheon Kim;Hakdong Shin;Soon Han Kim;Hae-Yeong Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.2
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pp.219-227
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2023
Lettuce is one of the most consumed vegetables worldwide. However, it has potential risks associated with pathogenic bacterial contamination because it is usually consumed raw. In this study, we investigated the changes in the bacterial community on lettuce (Lactuca sativa L.) in Chungcheong-do, South Korea, and the prevalence of foodborne pathogens on lettuce in different seasons using 16S rRNA gene-based sequencing. Our data revealed that the Shannon diversity index showed the same tendency in term of the number of OTUs, with the index being greatest for summer samples in comparison to other seasons. Moreover, the microbial communities were significantly different between the four seasons. The relative abundance of Actinobacteriota varied according to the season. Family Micrococcaceae was most dominant in all samples except summer, and Rhizobiaceae was predominant in the microbiome of the summer sample. At the genus level, the relative abundance of Bacillus was greatest in spring samples, whereas Pseudomonas was greatest in winter samples. Potential pathogens, such as Staphylococcus and Clostridium, were detected with low relative abundance in all lettuce samples. We also performed metagenome shotgun sequencing analysis on the selected summer and winter samples, which were expected to be contaminated with foodborne pathogens, to support 16S rRNA gene-based sequencing dataset. Moreover, we could detect seasonal biomarkers and microbial association networks of microbiota on lettuce samples. Our results suggest that seasonal characteristics of lettuce microbial communities, which include diverse potential pathogens, can be used as basic data for food safety management to predict and prevent future outbreaks.
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