Yun, Young-Shik;Kang, Eun-Hye;Yun, In Sik;Kim, Yong Oock;Yeo, Jong-Souk
Journal of International Society for Simulation Surgery
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v.4
no.1
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pp.1-8
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2017
In the field of tissue engineering, researches have been actively conducted to regulate stem cell fate by understanding the interaction between cell and materials. This approach is expected as a promising therapeutic method in the future medicine by utilizing differentiation of stem cells into desired cells or tissues using biomaterial. For this regenerative medicine, there exist lots of attempts to construct optimized structures of various shapes and sizes that can regulate the stem cell fate. In this review, we will empathize the topographic effect as stem cell niche on the mesenchymal stem cell (MSC) response (cell attachment, proliferation, and differentiation) according to the shape and size of the structure of the substrates, and comprehensively analyze the importance and the effect of shape and size of the surface topography.
Adefovir dipivoxil (ADV) is used for the treatment of hepatitis and acquired immunodeficiency syndrome, but long-term use can cause osteoporosis. In this study, the effect of ADV on the osteocyte maturation process was evaluated at the level of undifferentiated cells using mesenchymal stem cells (MSCs) and osteoblasts (MG63). First, MSCs and MG63 cells were treated with ADV at different concentrations, and then a Cell Counting Kit-8 analysis was performed to determine the effect on the proliferation of each cell. Additionally, crystal violet and Hoechst staining were performed for the morphological analysis of each cell and nucleus. To determine the cause of cell hypertrophy, the transforming growth factor-beta (TGF-β) expression was investigated, and alkaline phosphatase (ALP) staining and activity were measured to determine the degree of differentiation of the MSCs and MG63 cells into mature osteocytes. The results confirmed that the ADV increases the expression of TGF-β in MSCs and MG63 cells, causing cellular and nuclear hypertrophy, and can cause osteoporosis by inhibiting cell proliferation and affecting the differentiation of mature osteocytes. Therefore, it is believed that these results can be used as a basis for understanding the adverse effects of ADV at a cytological level in basic medicine and clinical research.
Hypoxic culture is widely recognized as a method to efficiently expand human mesenchymal stem cells (MSCs) without loss of stem cell properties. However, the molecular basis of how hypoxia priming benefits MSC expansion remains unclear. In this report, our systemic quantitative proteomic and RT-PCR analyses revealed the involvement of hypoxic conditioning activated genes in the signaling process of the mitotic cell cycle. Introduction of screened two mitotic cyclins, CCNA2 and CCNB1, significantly extended the proliferation lifespan of MSCs in normoxic condition. Our results provide important molecular evidence that multipotency of human MSCs by hypoxic conditioning is determined by the mitotic cell cycle duration. Thus, the activation of mitotic cyclins could be a potential strategy to the application of stem cell therapy.
Mesenchymal stem cells (MSCs) are often known to have a therapeutic potential in the cell-mediated repair for fatal or incurable diseases. In this study, canine umbilical cord MSCs (cUC-MSCs) were isolated from umbilical cord matrix (n = 3) and subjected to proliferative culture for 5 consecutive passages. The cells at each passage were characterized for multipotent MSC properties such as proliferation kinetics, expression patterns of MSC surface markers and self-renewal associated markers, and chondrogenic differentiation. In results, the proliferation of the cells as determined by the cumulative population doubling level was observed at its peak on passage 3 and stopped after passage 5, whereas cell doubling time dramatically increased after passage 4. Expression of MSC surface markers (CD44, CD54, CD61, CD80, CD90 and Flk-1), molecule (HMGA2) and pluripotent markers (sox2, nanog) associated with self-renewal was negatively correlated with the number of passages. However, MSC surface marker (CD105) and pluripotent marker (Oct3/4) decreased with increasing the number of subpassage. cUC-MSCs at passage 1 to 5 underwent chondrogenesis under specific culture conditions, but percentage of chondrogenic differentiation decreased with increasing the number of subpassage. Collectively, the present study suggested that sequential subpassage could affect multipotent properties of cUC-MSCs and needs to be addressed before clinical applications.
The beneficial paracrine roles of mesenchymal stem cells (MSCs) in tissue repair have potential in therapeutic strategies against various diseases. However, the key therapeutic factors secreted from MSCs and their exact molecular mechanisms of action remain unclear. In this study, the cell-free secretome of umbilical cord-derived MSCs showed significant anti-fibrotic activity in the mouse models of liver fibrosis. The involved action mechanism was the regulation of hepatic stellate cell activation by direct inhibition of the $TGF{\beta}$/Smad-signaling. Antagonizing the milk fat globule-EGF factor 8 (MFGE8) activity blocked the anti-fibrotic effects of the MSC secretome in vitro and in vivo. Moreover, MFGE8 was secreted by MSCs from the umbilical cord as well as other tissues, including teeth and bone marrow. Administration of recombinant MFGE8 protein alone had a significant anti-fibrotic effect in two different models of liver fibrosis. Additionally, MFGE8 downregulated $TGF{\beta}$ type I receptor expression by binding to ${\alpha}v{\beta}3$ integrin on HSCs. These findings revealed the potential role of MFGE8 in modulating $TGF{\beta}$-signaling. Thus, MFGE8 could serve as a novel therapeutic agent for liver fibrosis.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.16
no.3
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pp.1964-1971
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2015
Human bone marrow or human umbilical cord vein derived-mesenchymal stem cells (hBM-MSCs or hUC-MSCs) have known as a potentially useful cell type for clinical therapeutic applications. We investigated two-pore domain potassium (K2P) channels in these cells. K2P channels play a major role in setting the resting membrane potential in many cell types. Among them, TREK1 is targets of hydrogen, hypoxia, polyunsaturated fatty acids, antidepressant, and neurotransmitters. We investigated whether hBM-MSCs and hUC-MSCs express functional TREK1 channel using RT-PCR analysis and patch clamp technique. Potassium channel with a single channel conductance of 100 pS was found in hUC-MSCs and BM-MSCs and the channel was activated by membrane stretch (-5 mmHg ~ -15 mmHg), arachidonic acid ($10{\mu}M$) and intracellular acidosis (pH 6.0). These electrophysiological properties were similar to those of TREK1. Our results suggest that TREK1 is functionally present in hBM-MSCs and hUC-MSCs, where they contribute to its resting membrane potential.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.38
no.6
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pp.343-353
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2012
Objectives: This aim of this study was to effectively isolate mesenchymal stem cells (hSMSCs) from human submandibular skin tissues (termed hSMSCs) and evaluate their characteristics. These hSMSCs were then chemically induced to the neuronal lineage and analyzed for their neurogenic characteristics in vitro. Materials and Methods: Submandibular skin tissues were harvested from four adult patients and cultured in stem cell media. Isolated hSMSCs were evaluated for their multipotency and other stem cell characteristics. These cells were differentiated into neuronal cells with a chemical induction protocol. During the neuronal induction of hSMSCs, morphological changes and the expression of neuron-specific proteins (by fluorescence-activated cell sorting [FACS]) were evaluated. Results: The hSMSCs showed plate-adherence, fibroblast-like growth, expression of the stem-cell transcription factors Oct 4 and Nanog, and positive staining for mesenchymal stem cell (MSC) marker proteins (CD29, CD44, CD90, CD105, and vimentin) and a neural precursor marker (nestin). Moreover, the hSMSCs in this study were successfully differentiated into multiple mesenchymal lineages, including osteocytes, adipocytes, and chondrocytes. Neuron-like cell morphology and various neural markers were highly visible six hours after the neuronal induction of hSMSCs, but their neuron-like characteristics disappeared over time (24-48 hrs). Interestingly, when the chemical induction medium was changed to Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) supplemented with fetal bovine serum (FBS), the differentiated cells returned to their hSMSC morphology, and their cell number increased. These results indicate that chemically induced neuron-like cells should not be considered true nerve cells. Conclusion: Isolated hSMSCs have MSC characteristics and express a neural precursor marker, suggesting that human skin is a source of stem cells. However, the in vitro chemical neuronal induction of hSMSC does not produce long-lasting nerve cells and more studies are required before their use in nerve-tissue transplants.
This study was undertaken to examine the effects and to investigate the relevant mechanisms of overexpressing stromal cell-derived factor-1 (SDF-1) produced by engineered mesenchymal stem cells, in a neurogenic bladder (NB) rat model. Sprague-Dawley (SD) rats (N=48) were randomly divided into 4 groups comprising 12 rats each: control group, Injury group, Injury+imMSC group, and Injury+SDF-1 eMSC group. Rats in the Injury+imMSC group were treated with imMSCs, whereas the Injury+SDF-1 eMSC group were administered SDF-1 eMSCs. After 4-weeks therapy, the bladder and pelvic nerve (PN) tissues were examined by subjecting to Masson's trichrome staining and immunofluorescence. Administration of SDF-1 eMSC resulted in improved smooth muscle content in the bladder tissue, significantly increased β-III tubulin expression of the PN, and enhanced SDF-1 expression (P<0.05). The bladder wall repair can be attributed to the overexpression of SDF-1 by SDF-1 eMSCs. Significantly increased SDF-1 expression was obtained in the Injury+SDF-1 eMSC group (P<0.05). The crushed PN also showed significant recovery in the Injury+SDF-1 eMSC group (P<0.05). In conclusion, our results indicate that SDF-1 eMSCs express more SDF-1 in vivo, thereby facilitating the repair of injured nerve and recovery of NB in rats.
Jung, Soo-Kyung;Park, Mi Jeong;Lee, Jienny;Byeon, Jeong Su;Gu, Na-Yeon;Cho, In-Soo;Cha, Sang-Ho
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.44
no.3
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pp.383-390
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2016
Mesenchymal stem cells (MSCs) are multipotent stem cells that can be differentiated into a variety of cell types, including adipocytes, osteoblasts, chondrocytes, β-pancreatic islet cells, and neuronal cells. MSCs have been reported to exhibit immunomodulatory effects in many diseases. Many studies have reported that MSCs have distinct roles in modulating inflammatory and immune responses by releasing bioactive molecules. Exosomes are cell-derived vesicles present in biological fluids, including the blood, urine, and cultured medium of cell cultures. In this study, we investigated the immunomodulatory effects of mouse adipose tissue-derived MSCs (mAD-MSCs), cultured medium (MSC-CM) of mAD-MSCs, and mAD-MSC-derived exosomes (MSC-Exo) on lipopolysaccharide (LPS)-induced RAW 264.7 cells. We observed that the expression levels of IL-1β, TNF-α, and IL-10 were significantly increased in LPS-stimulated RAW 264.7 cells compared to those in LPS-unstimulated RAW 264.7 cells. Additionally, these values were significantly (p < 0.05) decreased in mAD-MSCs-RAW 264.7 cell co-culture groups, MSC-CM-treated groups, and MSC-Exo-treated groups. MSCs can modulate the immune system in part by secreting cytokines and growth factors. We observed that immunomodulatory factors such as IL-1β, TNF-α, and IL-10 were secreted by mAD-MSCs under co-culturing conditions of mAD-MSCs with activated RAW 264.7 cells. In addition, mAD-MSC-derived exosomes exhibited similar immunomodulatory effects in activated RAW 264.7 cells. Therefore, our results suggest that mAD-MSCs have an immunomodulatory function through indirect contact.
Park, Jae-Hyun;Ryu, Chung Heon;Kim, Mi Jin;Jeun, Sin-Soo
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.57
no.5
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pp.323-328
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2015
Objective : Malignant gliomas are the most common primary tumors of the central nervous system and the prognosis of patients with gliomas is poor. The combination of interferon-bata (IFN-${\beta}$) and temozolomide (TMZ) has shown significant additive antitumor effects in human glioma xenograft models. Considering that the poor survival of patients with human malignant gliomas relates partly to the inability to deliver therapeutic agents to the tumor, the tropism of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSC) for malignant gliomas can be exploited to therapeutic advantages. We investigated the combination effects of TMZ and MSCs that secrete IFN-${\beta}$ on gliomas. Methods : We engineered human MSCs to secret mouse IFN-${\beta}$ (MSC-IFN-${\beta}$) via adenoviral transduction and confirmed their secretory capacity using enzyme-linked immunosorbent assays. In vitro and in vivo experiments were performed to determine the effects of the combined TMZ and MSC-IFN-${\beta}$ treatment. Results : In vitro, the combination of MSC-IFN-${\beta}$ and TMZ showed significantly enhanced antitumor effects in GL26 mouse glioma cells. In vivo, the combined MSC-IFN-${\beta}$ and TMZ therapy significantly reduced the tumor size and improved the survival rates compared to each treatment alone. Conclusion : These results suggest that MSCs can be used as an effective delivery vehicle so that the combination of MSC-IFN-${\beta}$ and TMZ could be considered as a new option for the treatment of malignant gliomas.
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