Chronic gut inflammation promotes the development of metabolic diseases such as obesity. There is growing evidence which suggests that dysbiosis in gut microbiota and metabolites disrupt the integrity of the intestinal barrier and significantly impact the level of inflammation in various tissues, including the liver and adipose tissues. Moreover, dietary sources are connected to the development of leaky gut syndrome through their interaction with the gut microbiota. This review examines the effects of these factors on intestinal microorganisms and the communication pathways between the gut-liver and gut-brain axis. The consumption of diets rich in fats and carbohydrates has been found to weaken the adherence of tight junction proteins in the gastrointestinal tract. Consequently, this allows endotoxins, such as lipopolysaccharides produced by detrimental bacteria, to permeate through portal veins, leading to metabolic endotoxemia and alterations in the gut microbiome composition with reduced production of metabolites, such as short-chain fatty acids. However, the precise correlation between gut microbiota and alternative sweeteners remains uncertain, necessitating further investigation. This study highlights the significance of exploring the impact of diet on gut microbiota and the underlying mechanisms in the gut-liver and gut-brain axis. Nevertheless, limited research on the gut-liver axis poses challenges in comprehending the intricate connections between diet and the gut-brain axis. This underscores the need for comprehensive studies to elucidate the intricate gut-brain mechanisms underlying intestinal health and microbiota.
본 연구의 목적은 LPS로 자극한 RAW264.7 세포를 이용하여 크랜베리에서 분리한 폴리페놀 분획물의 항산화능을 분석하는 것이었다. 크랜베리 분말의 에틸 아세테이트 분획(EF)과 메탄올 분획(MF)은 C18-Sep-Pak 카트리지를 사용하여 분리했다. 20시간 동안 LPS로 자극한 RAW264.7 세포는 활성산소종(ROS)과 DNA 손상이 유의하게 증가하였으며, EF, MF 및 TF(EF+MF)로 전처리하고 LPS로 자극한 RAW264.7 세포에서는 ROS와 DNA 손상이 유의적으로 감소했다. 그러나 superoxide dismutase의 활성에는 차이가 없었다.
Park, Byung Tae;Kim, Byung Sun;Park, Heajin;Jeong, Jaehoon;Hyun, Hanbit;Hwang, Hye Seong;Kim, Ha Hyung
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권6호
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pp.547-551
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2013
We recently reported a Philyra pisum lectin (PPL) that exerts mitogenic effects on human lymphocytes, and its molecular characterization. The present study provides a more detailed characterization of PPL based on the results from a monosaccharide analysis indicating that PPL is a glycoprotein, and circular dichroism spectra revealing its estimated ${\alpha}$-helix, ${\beta}$-sheet, ${\beta}$-turn, and random coil contents to be 14.0%, 39.6%, 15.8%, and 30.6%, respectively. These contents are quite similar to those of deglycosylated PPL, indicating that glycans do not affect its intact structure. The binding properties to different pathogen-associated molecular patterns were investigated with hemagglutination inhibition assays using lipoteichoic acid from Gram-positive bacteria, lipopolysaccharide from Gram-negative bacteria, and both mannan and ${\beta}$-1,3-glucan from fungi. PPL binds to lipoteichoic acids and mannan, but not to lipopolysaccharides or ${\beta}$-1,3-glucan. PPL exerted no significant antiproliferative effects against human breast or bladder cancer cells. These results indicate that PPL is a glycoprotein with a lipoteichoic acid or mannan-binding specificity and which contains low and high proportions of ${\alpha}$-helix and ${\beta}$-structures, respectively. These properties are inherent to the innate immune system of P. pisum and indicate that PPL could be involved in signal transmission into Gram-positive bacteria or fungi.
Recent studies have highlighted that early enhancement of the glycolytic pathway is a mode of maintaining the proinflammatory status of immune cells. Thiamine, a wellknown co-activator of pyruvate dehydrogenase complex, a gatekeeping enzyme, shifts energy utilization of glucose from glycolysis to oxidative phosphorylation. Thus, we hypothesized that thiamine may modulate inflammation by alleviating metabolic shifts during immune cell activation. First, using allithiamine, which showed the most potent anti-inflammatory capacity among thiamine derivatives, we confirmed the inhibitory effects of allithiamine on the lipopolysaccharide (LPS)-induced pro-inflammatory cytokine production and maturation process in dendritic cells. We applied the LPS-induced sepsis model to examine whether allithiamine has a protective role in hyper-inflammatory status. We observed that allithiamine attenuated tissue damage and organ dysfunction during endotoxemia, even when the treatment was given after the early cytokine release. We assessed the changes in glucose metabolites during LPS-induced dendritic cell activation and found that allithiamine significantly inhibited glucose-driven citrate accumulation. We then examined the clinical implication of regulating metabolites during sepsis by performing a tail bleeding assay upon allithiamine treatment, which expands its capacity to hamper the coagulation process. Finally, we confirmed that the role of allithiamine in metabolic regulation is critical in exerting anti-inflammatory action by demonstrating its inhibitory effect upon mitochondrial citrate transporter activity. In conclusion, thiamine could be used as an alternative approach for controlling the immune response in patients with sepsis.
Neuroinflammation is an important process underlying a wide variety of neurodegenerative diseases. Carvacrol (CAR) is a phenolic monoterpene commonly used as a food additive due to its antibacterial properties, but it has also been shown to exhibit strong antioxidative, anti-inflammatory, and neuroprotective effects. Here, we sought to investigate the effects of CAR on inflammation in the hippocampus and prefrontal cortex, as well as the molecular mechanisms underlying these effects. In our study, lipopolysaccharide was injected into the lateral ventricle of rats to induce memory impairment and neuroinflammation. Daily administration of CAR (25, 50, and 100 mg/kg) for 21 days improved recognition, discrimination, and memory impairments relative to untreated controls. CAR administration significantly attenuated expression of several inflammatory factors in the brain, including interleukin-1β, tumor necrosis factor-α, and cyclooxygenase-2. In addition, CAR significantly increased expression of brain-derived neurotrophic factor (BDNF) mRNA, and decreased expression of Toll-like receptor 4 (TLR4) mRNA. Taken together, these results show that CAR can improve memory impairment caused by neuroinflammation. This cognitive enhancement is due to the anti-inflammatory effects of CAR medicated by its regulation of BDNF and TLR4. Thus, CAR has significant potential as an inhibitor of memory degeneration in neurodegenerative diseases.
Macrophages are the cells of the first-line defense system, which protect the body from foreign invaders such as bacteria. However, Gram-negative bacteria have always been the major challenge for macrophages due to the presence of lipopolysaccharides on their outer cell membrane. In the present study, we evaluated the effect of phloretin, a flavonoid commonly found in apple, on the protection of macrophages from Escherichia coli infection. RAW 264.7 cells infected with standard E. coli, or virulent E. coli K1 strain were treated with phloretin in a dose-dependent manner to examine its efficacy in protection of macrophages. Our results revealed that phloretin treatment reduced the production of nitric oxide (NO) and generation of reactive oxygen species along with reducing the secretion of proinflammatory cytokines induced by the E. coli and E. coli K1 strains in a concentration-dependent manner. Additionally, treatment of phloretin downregulated the expression of E. coli-induced major inflammatory markers i.e. cyclooxygenase-2 (COX-2) and hemeoxygenase-1 (HO-1), in a concentration dependent manner. Moreover, the TLR4-mediated NF-κB pathway was activated in E. coli-infected macrophages but was potentially downregulated by phloretin at the transcriptional and translational levels. Collectively, our data suggest that phloretin treatment protects macrophages from infection of virulent E. coli K1 strain by downregulating the TLR4-mediated signaling pathway and inhibiting NO and cytokine production, eventually protecting macrophages from E. coli-induced inflammation.
전통발효 식품인 간장으로부터 chitinase활성이 높으면서 갈변반응을 일으키는 균주인 CJ-3를 분리하여 갈변반응생성물이 면역기능, 항산화력 및 세포활성에 미치는 영향과 생화학적 특성을 규명하였다. 분리된 CJ-3 균주는 16S rDNA 염기서열분석에 의하여 Bacillus atrophaeus로 동정되었으며 분리된 균주의 분자량은 대략 31.0 kDa으로 colloidal chitin(0.5, 1.0, 2.0%)의 첨가에 의하여 chitinase 활성이 현저히 증가되었다 B. atrophaeus CJ-3에 의해서 유도되는 갈변반응물 200${\mu}\ell$ 첨가로 LPS에 의하여 유도되는 nitric oxide (NO) 활성을 45%까지 감소시켰다. MTT 분석을 통한 세포활성에서도 갈변반응물은 LPS에 의하여 세포활성을 정상수준으로 회복하였다. CJ-3. 균주의 DPPH 전자공여능법에 의한 항산화력은 갈변반응에 의하여 약 55% 증가하였다 . 이러한 결과들은 갈변반응생성물은 면역기능 및 세포활성을 증가시키는 것으로 추정된다. 분리된 균주의 최적 생육조건은 최적온도 37$^{\circ}C$, 최적 pH 7.0 및 염 농도는 9% NaCl농도까지는 잘 생육하는 것으로 나타났으며 분리된 균주의 주요 intracellular 유리아미노산은 glutamate로 나타났다.
Jin, Ho-Kyeong;Lee, Young-Hwa;Jeong, So-Yeon;Na, Hee-Sam;Park, Hae-Ryoun;Chung, Jin
International Journal of Oral Biology
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제35권3호
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pp.113-119
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2010
Porphyromonas (P.) gingivalis lipopolysaccharide (Pg LPS) is the major pathogenic component of periodontal disease. In this study, we have attempted to determine the expression profiles of the signal transduction pathway genes induced by Pg LPS in comparison with Escherichia (E.) coli LPS (Ec LPS). DC2.4 cells were treated for two hours with $1\;{\mu}g/ml$ of Pg LPS or $0.5\;{\mu}g/ml$ of Ec LPS. The total RNA from these cells was then isolated and reverse-transcribed. Gene expression profiles were then analyzed with a signal transduction pathway finder GEArray Q series kit and significant changes in expression were confirmed by real-time PCR. The microarray results indicated that several genes, including Tnfrsf10b, Vcam1, Scyb9, Trim25, Klk6, and Stra6 were upregulated in the DC2.4 cells in response to Pg LPS treatment, but were downregulated or unaffected by Ec LPS. Realtime PCR revealed that the expression of Trim25, Scyb9 and Tnfrsf10b was increased over the untreated control. Notably, Trim25 and Tnfrsf10b were more strongly induced by Pg LPS than by Ec LPS. These results provide greater insight into the signal transduction pathways that are altered by P. gingivalis LPS.
Cyclosporine A is an immunosuppressant commonly used for patients receiving organ transplants. Gingival overgrowth is an adverse side-effect seen in about 8-26% of patients taking cyclosporine A which have been shown to increase the DNA synthesis of gingival fibroblast at the concentration of $10^{-9}g/ml$ in vitro. Glycyrrhetinic acid is the active pharmacological ingredients of licorice which exerts steroid-like action and anti-viral activity. Oleanolic acid, which were isolated from Glechoma hederacea, has been shown to act as inhibitors of tumor promotion in vivo and to be less cytotoxic retinoic acid. This study has been performed to evaluate the effects of glycyrrhetinic acid and oleanolic acid on cyclosporine A induced cell activity in vitro. Human gingival fibroblasts were isolated from explant cultures of healthy gingiva of orthodontic patients. Gingival fibroblasts were trypsinized and transferred to the walls of microtest plates. Fibroblasts were cultured in growth medium added $10^{-9}g/ml$ cyclosporineA and $50{\mu}l/ml$ lipopolysaccharides. Cells between the 4th and 6th transfer in culture were used for this study. The morphology of gingival fibroblst were examined by inverted microscope. The effects of cyclosporine A on the time course of DNA sythesis by human gingival fibroblasts were assessed by $[^3H]-thymidine$ uptake assays. Cyclosporine A was found to stimulate DNA synthesis of human gingival fibroblast at a concentration of $10^{-9}g/ml$. In the presence of lipopolysaccharide derived from Fusobacterium nucleatum, addition of cyclosporine A results in reversal of inhibition at the concentration which normally inhibits gingival fibroblast proliferation. The cell acitivities in the presence of glycyrrhetinic acid and oleanolic acid were decreased, and increased cell acitivities by cyclosporine A were decreased by glycyrrhetinic acid and oleanolic acid at the concentration of $200{\mu}g/ml$. These results suggested that the increased cell activities by cyclosporine A modulated by glycyrrhetinic acid and oleanolic acid.
Toll-like receptors (TLRs) induce innate immune responses that are essential for host defenses against invading microbial pathogens, thus leading to the activation of adaptive immune responses. In general, TLRs have two major downstream signaling pathways: the MyD88- and TRIF-dependent pathways, which lead to the activation of $NF-{\kappa}B$ and IRF3. Numerous studies have demonstrated that certain phytochemicals possessing anti-inflammatory effects inhibit $NF-{\kappa}B$ activation induced by pro-inflammatory stimuli, including lipopolysaccharides and $TNF{\alpha}$. However, the direct molecular targets for such anti-inflammatory phytochemicals have not been fully identified. Identifying the direct targets of phytochemicals within the TLR pathways is important because the activation of TLRs by pro-inflammatory stimuli can induce inflammatory responses that are the key etiological conditions in the development of many chronic inflammatory diseases. In this paper we discuss the molecular targets of resveratrol, (-)-epigallocatechin-3-gallate (EGCG), and curcumin in the TLR signaling pathways. Resveratrol specifically inhibited the TRIF pathway in TLR3 and TLR4 signaling, by targetting TBK1 and RIP1 in the TRIF complex. Furthermore, EGCG suppressed the activation of IRF3 by targetting TBK1 in the TRIF-dependent signaling pathways. In contrast, the molecular target of curcumin within the TLR signaling pathways is the receptor itself, in addition to $IKK{\beta}$. Together, certain dietary phytochemicals can modulate TLR-derived signaling and inflammatory target gene expression, and in turn, alter susceptibility to microbial infection and chronic inflammatory diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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