This study was carried out to examine tne incidences of virus diseases in lily plants cultivated in highland areas, and to develop an effective detection method. Viral symptoms on lilies in the highland areas were differentiated into mosaic, crinkle, mottle, stripe and line pattern. The distribution of symptoms on infected plants was 43.8% of mosaic, 29.2% of crinkle, and 10.9% of mottle symptoms. Six viruses such as Lily symptomless vires(LSV), Cucumber mosaic virus (CMV), Lily mottle virus (LMoV), Lily virus X (LVX, Potexvirus), Tabacco mosaic virus (TMV,Tobamovirus), and Tabacco rattle virus (TRV,Tobravirus) were detected from the infected lilies. Infection rate of Lilium oriental (cvs. Casablanca and Marcopolo) was 2~4 times higher than that of L. asiatic (cvs. Solemio and Prato). Virus detection on lilies by one-step RT-PCR (by using reverse transcription and polymerase chain reaction simultaneously) was more rapid rapid and reliable than by the conventional RT-PCR method.
This paper describes the cloning and sequence analysis of the 5'-terminal region and full-length cDNA production of genomic RNA of Lily symptomless virus (LSV), a Species Of the genus Carlavirus. A sing1e DNA band about 600 bp harboring the 5'-end of genomic RNA of the virus was successfully amplified by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and rapid amplification of cDNA ends (RACE), and was cloned for nucleotide sequence determination. Sequence analysis of selected RACE cDNA clones revealed that the LSV 5'non-translated region consists of 67 nucleotides long of AT rich stretch followed GC rich from the 5'-end. To produce full-length cDNA products for the viral genomic RNA, a set of LSV-specific primers could be designed based on the obtained sequence in this study and the known sequences of 3'-terminal region for the virus. Full-length cDNA copies of LSV, an 8.4 kb long, were directly amplified by the long-template RT-PCR technique from the purified viral genomic RNA samples. This full-length cDNA copies were analyzed by restriction mapping. The molecules produced in this study can be useful for the production of in vitro infectious cDNA clone, as well as, for the completion of genomic RNA sequence and genome structure for the virus.
백합으로부터 total RNA를 분리하여 LSV 외피단백질 유전자의 551 bp에 해당하는 특정 염기서열을 증폭할 수 있는 primer로 RT-PCR를 수행하였다. 그 결과 Lilium oriental hybrid cvs. Miani, Marco Polo, Casablanca, Le Reve 품종에서 551 bp의 DNA 절편이 증폭되었고 이 절편의 염기서열을 분석한 결과 LSV외피단백질 유전자의 일부임을 확인할 수 있었다. 그러므로 RT-PCR 방법으로, 실험에 사용하 s4품종 모두 LSV에 감염되어 있음을 알 수 있었다.
A detection system based on a multiplex reverse transcription (RT) polymerase chain reaction (PCR) was developed to simultaneously identify multiple viruses in the lily plant. The most common viruses infecting lily plants are the cucumber mosaic virus (CMV), lily mottle virus (LMoV), lily symptomless virus (LSV). Leaf samples were collected at lily-cultivation facilities located in the Kangwon province of Korea and used to evaluate the detection system. Simplex and multiplex RT-PCR were performed using virus-specific primers to detect single- or mixed viral infections in lily plants. Our results demonstrate the selective detection of 3 different viruses (CMV, LMoV and LSV) by using specific primers as well as the potential of simultaneously detecting 2 or 3 different viruses in lily plants with mixed infections. Three sets of primers for each target virus, and one set of internal control primers were used to evaluate the detection system for efficiency, reliability, and reproducibility.
Kim, Jin Ha;Yoo, Ha Na;Bae, Eun Hye;Jung, Yong-Tae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.12
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pp.1776-1781
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2012
Multiple viruses such as Lily symptomless virus (LSV), Lily mottle virus (LMoV), and cucumber mosaic virus (CMV) are the most prevalent viruses infecting lilies in Korea. Leaf samples and bulbs showing characteristic symptoms of virus infection were collected from Gangwon, Chungnam, and Jeju provinces of Korea in 2008-2011. Coat protein (CP) genes of LSV and LMoV were amplified from collected samples by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and cloned into a pET21d(+) expression vector to generate recombinant CPs. The resulting carboxy-terminal His-tagged CPs were expressed in Escherichia coli strain BL21(DE3) by isopropyl-1-thio-${\beta}$-D-galactoside induction. The recombinant proteins were purified using Ni-NTA agarose beads, and the purified proteins were used as an immunogen to produce polyclonal antibodies in rabbits. The resulting polyclonal antisera recognized specifically LSV and LMoV from infected plant tissues in Western blotting assays. Indirect enzymelinked immunosorbent assay and immunocapture RT-PCR using these polyclonal antisera were developed for the sensitive, efficient, economic, and rapid detection of Lily viruses. These results suggest that large-scale bulb tests and economic detection of Lily viruses in epidemiological studies can be performed routinely using these polyclonal antisera.
The 3,000 nucleotides of 3'-terminal region of the genomic RNA of a new isolate of carlavirus from a Korean native lily (Lilum lancitoium) was cloned and its nucleotide sequences were determined. The coat protein (CP) gene of the virus showed 72.0% to 72.8% nucleotide sequence identities and 86.9% to 88.0% amino acid sequence identities with those of the four strains (two Korean, one Dutch, and one Japanese isolates) of lily symptomless virus (LSV). Interestingly, different amino acid sequences between the new isolate and LSV strains were located at the N-terminal region of the CP. Pairwise amino acid sequence comparison of the CP gene revealed sequence identities of 22.0% to 71.1% between the virus and other 9 carlavirus species. The 25 kDa and 12 kDa proteins genes of the virus share 30.7% to 76.3% and 31.1% to 85.8% amino acid sequence identities, respectively, with those of 8 other carlaviruses. The 16 kDa protein gene of the virus shares 16.7% to 72.9% amino acid sequence identities with that of 9 other carlaviruses. These data indicate that the virus, designated as lily latent virus (LiLV), is a distinct of the Carlavirus genus and distinguished from the known strains of LSV.
Leaf samples and bulbs showing characteristic symptoms of virus infection were collected from Gang-won, Chung-nam, and Jeju Province of Korea in 2008-2009. Three viruses, Lily symptomless virus (LSV), Lily mottle virus (LMoV), and Cucumber mosaic virus (CMV) were detected by RT-PCR. Virus-infected plant samples were identified; 12 plants with LSV, 20 plants with LMoV, and 1 plant with CMV. Of the twelve LSV infected samples, seven samples were found to be mix-infected with LMoV and LSV. Symptoms of LMoV and LSV mixed infection were fairly severe, like as vein clearing, leaf curling, leaf mottling, leaf mosaic, and yellow streaking. Mixed infection with LMoV and LSV was also found in lily bulbs which have been stored under unfavorable environmental conditions. LMoV predominated in our tests, whereas spread of Lilyvirus X (LVX) was not found. The nucleotide sequences of coat protein (CP) region of seven isolates (4 LMoV, 2 LSV, and 1 CMV) were compared with the corresponding regions of LMoV (AJ564636), LSV (AJ516059) and CMV(AJ296154). The nucleotide sequence homologies between reference viruses and seven isolates were 95-99%. Complete sequencing of seven isolates is necessary to obtain more information on the molecular characteristics of these viruses as well as to increase sensitivity and rapidity of viral detection.
Damages caused by infection with Cucumber mosaic virus (CMV), Lily mottle virus (LMoV) and Lily symptomless virus (LSV) were assessed by comparing growth of plants produced from seeds of Lilium x fomolongi cultivar 'Noesan' both infected and free from infection with those viruses. Symptoms and infection rate were investigated in field-grown lily.Dominant viral infection symptom in the field was mottle on leaves, caused by natural infection with LMoV. Incidence of viral disease caused by mixed infection with two of LMoV, CMV and LSV in field-grown Lilium x fomolongi cultivars, reused for more than 6 years consecutively, was 80 percent. In comparison with healthy Lilium x fomolongi cultivar 'Noesan', plants doubly infected with CMV-Li1 and LMoV-Li diminished their plant height by 14 percent, fresh weight by 38 percent, and flower length by 15 percent. Lily plants singly infected with CMV-Li1 or LMoV-Li significantly reduced their freish weight by 21.8% and 28.4% compared to healthy plants, respectively.
Lily symptomless virus (LSV), Lily mottle virus (LMoV), and Cucumber mosaic virus (CMV) are the most prevalent viruses infecting lilies in Korea. Leaf and bulb samples showing characteristic symptoms of virus infection were collected in 2012, and 80 field samples were analyzed by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). The infection frequencies were 79% for LMoV, 5% for LSV, and 3% for CMV. The LMoV coat protein gene was amplified and cloned into the pET21d(+) expression vector to develop serological diagnostic tools to detect LMoV. The resulting carboxy-terminal His-tagged coat proteins were expressed in Escherichia coli strain BL21 (DE3) by induction with IPTG. The recombinant proteins were purified using Ni-NTA agarose beads and used as an antigen to produce polyclonal antibodies in laying hens. The resulting egg yolk immunoglobulin (IgY) specifically recognized LMoV from infected plant tissues in immunoblotting assays and had comparable sensitivity to that of a mammalian antibody. In addition, method of immunocapture RT-PCR using this IgY was developed for sensitive, efficient, and rapid detection of LMoV. Based on these results, large-scale bulb tests and detection of LMoV in epidemiological studies can be performed routinely using this IgY. This is the first report of production of a polyclonal IgY against a plant virus and its use for diagnosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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