Phytobiotics, also known as phytochemicals or phytogenics, have a wide variety of biological activities and have recently emerged as alternatives to synthetic antibiotic growth promoters. Numerous studies have reported the growth-promoting effects of phytobiotics in chickens, but their precise mechanism of action is yet to be elucidated. Phytobiotics are traditionally known for their antioxidant activity. However, extensive investigations have shown that these compounds also have anti-inflammatory, antimicrobial, and transcription-modulating effects. Phytobiotics are non-nutritive constituents, and their bioavailability is low. Nonetheless, their beneficial effects have been observed in several tissues or organs. The health benefits of the ingestion of phytobiotics are attributed to their antioxidant activity. However, several studies have revealed that not all these benefits could be explained by the antioxidant effects alone. In this review, I focused on the bioavailability of phytobiotics and the possible mechanisms underlying their overall effects on intestinal barrier functions, inflammatory status, gut microbiota, systemic inflammation, and metabolism, rather than the specific effects of each compound. I also discuss the possible mechanisms by which phytobiotics contribute to growth promotion in chickens.
Schematic diagram of the interaction between the intestinal muscularis externa (MMΦ) macrophages and the enteric nervous system (ENS) neurons during different developmental periods. At the early postnatal stage, MMΦs play a critical role in ENS maturation and refinement through synaptic pruning and enteric neuron phagocytosis. In addition, during the adult stage, a specific MMΦ subset named neuron-associated (NA)-MMΦ, supports enteric neuronal survival and functions. Conversely, enteric neurons promote the phenotypic MMΦ changes by secreting transforming growth factor-β (TGFβ), transitioning them from a phagocytic phenotype in the early postnatal period to a neuroprotective and immune-surveillant phenotype in the young adult period. Disruptions in these interactions could lead to alterations in the enteric neuron numbers, ultimately resulting in reduced gut motility.
The goal of this study was to elucidate the expression and segmental distribution of the glomerular cationic amino acid metabolism transporter-2 (CAT-2) and thus to improve our understanding of porcine cationic amino acid transporters and amino acid absorption. Porcine CAT-2 was cloned, sequenced and characterized. The predicted amino acid sequence of porcine CAT-2 shared 86.1% and 92.1% identity with human and mouse CAT-2A, respectively. The tissue distribution patterns and ontogenic changes of CAT-2 mRNAs were determined by real-time Q-PCR. The results showed that porcine CAT-2 was highly expressed in the heart and intestinal tract (duodenum, ileum and jejunum). In addition, the mRNA of CAT-2 was found in liver, lung, kidney, brain and muscle. Within the intestinal tract, CAT-2 mRNA was most abundant in the ileum and rarely expressed in the duodenum. In the duodenum, the levels of CAT-2 mRNA reached their peak on day 7 (p<0.05) while in the jejunum, levels were low on day 1 and 7 and increased rapidly after day 26 before peaking on days 30 and 60 (p<0.05). The levels then dramatically decreased by day 90 (p<0.05). In the ileum, levels achieved their maximum on day 30 and then decreased significantly on day 60 (p<0.05).
Anethole and garlic have an immune modulatory effects on avian coccidiosis, and these effects are correlated with gene expression changes in intestinal epithelial lymphocytes (IELs). In this study, we integrated gene expression datasets from two independent experiments and investigated gene expression profile changes by anethole and garlic respectively, and identified gene expression signatures, which are common targets of these herbs as they might be used for the evaluation of the effect of plant herbs on immunity toward avian coccidiosis. We identified 4,382 and 371 genes, which were differentially expressed in IELs of chickens supplemented with garlic and anethole respectively. The gene ontology (GO) term of differentially expressed genes (DEGs) from garlic treatment resulted in the biological processes (BPs) related to proteolysis, e.g., "modification-dependent protein catabolic process", "proteolysis involved in cellular protein catabolic process", "cellular protein catabolic process", "protein catabolic process", and "ubiquitin-dependent protein catabolic process". In GO analysis, one BP term, "Proteolysis", was obtained. Among DEGs, 300 genes were differentially regulated in response to both garlic and anethole, and 234 and 59 genes were either up- or down-regulated in supplementation with both herbs. Pathway analysis resulted in enrichment of the pathways related to digestion such as "Starch and sucrose metabolism" and "Insulin signaling pathway". Taken together, the results obtained in the present study could contribute to the effective development of evaluation system of plant herbs based on molecular signatures related with their immunological functions in chicken IELs.
Cytokines play a central role in the mucosal immune response and are involved in regulation of nutrient absorption, metabolism and animal growth. This study investigated the effect of diet manipulation with specialized protein or peptide sources on expression of cytokine (IL-1, IL-6, IL-10, and TNF-${\alpha}$) mRNA abundance in different intestinal regions and at different ages post-weaning in piglets. A total of 48 (17 days of age, $6.16{\pm}0.34kg\;BW$) weanling pigs were fed either a corn-soy/whey protein basal diet, the basal diet supplemented with spray-dried plasma protein (SDPP), or the basal diet supplemented with $Peptiva^{(R)}$, a hydrolyzed marine plant protein. A fourth treatment group was fed the SDPP diet, but the feed intake level was limited (SDPP-LF). Pigs were killed at 3 and 10 d, and intestinal cytokine mRNA was measured by real-time PCR using the relative quantification method. The SDPP-LF group exhibited an increased TNF-${\alpha}$ mRNA abundance compared with the ad libitum SDPP group (p<0.05). The TNF-${\alpha}$ and IL-10 mRNA abundance increased from the proximal to distal part of the intestine, and the mRNA abundance was greater (p<0.01) in the distal intestine as compared with the proximal and middle intestine. The cytokines IL-1-${\beta}$, IL-10 and TNF-${\alpha}$ mRNA abundance also increased from d3 to d10 postweaning (p<0.01). In summary, restricted feeding increased the TNF-${\alpha}$ mRNA abundance in the small intestine, however neither SDPP nor peptide supplementation affected cytokine mRNA expression. Abundance of mRNA for most cytokines examined in this study increased with age post-weaning, suggesting that during 10 d after weaning the mucosal immune system is still under development.
The present study was designed to define whether dietary conjugated linoleic acid (CLA) could affect antioxidant enzymes including superoxide dismutase (SOD), glutathione peroxidase (GSH-Px), catalase (CAT), and glutathione S transferase (GST), and the level of malondialdehyde (MDA), a marker of lipid peroxidation, in the small intestine and liver from broiler chickens. A total of twenty-four 3 wk-old male broiler chickens were assigned to three dietary treatments (1.5% corn oil, 0.75% corn oil plus 0.75% CLA, and 1.5% CLA, isocalorically), and fed a grower-finisher diet from 22 to 35 days. In the small intestinal mucosae, the specific activities of SOD, GSH-Px, CAT, and GST, and the level of MDA were not substantially influenced by dietary CLA. In the liver, the specific activities of SOD, GSH-Px, and GST, and the level of MDA were also unaffected by dietary CLA at the level of either 0.75% or 1.5% compared with corn oil at the level of 1.5%. However, the broiler chickens fed the diet containing 1.5% CLA resulted in a significant increase in peroxisomal CAT activity and a marked decrease in total lipid and non-esterified fatty acids (NEFA) from liver tissues compared with those fed the diet containing 1.5% corn oil. In conclusion, ability of CLA to increase hepatic CAT activity suggest that dietary CLA may affect, at least in part, antioxidant defense system as well as lipid metabolism in the liver of broiler chickens.
The purpose of this study was to investigate the effect of atorvastatin on the pharmacokinetics of nifedipine (6 mg/kg) after oral administration of nifedipine with or without atorvastatin (0.5 and 2.0 mg/kg) in rats, and also was to evaluate to the effect of atorvastatin on the CYP3A4 activity. The 50% inhibiting concentration ($IC_{50}$) values of atorvastatin on CYP3A4 activity is 46.1 ${\mu}M$. Atorvastatin inhibited CYP3A4 enzyme activity in a concentration-dependent manner. Coadministration of atorvastatin increased significantly (p<0.05, 2.0 mg/kg) the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentration ($C_{max}$) of nifedipine compared to the control group. The relative bioavailability (RB%) of nifedipine was increased from 1.15- to 1.37-fold. Coadministration of atorvastatin did not significantly change the terminal half-life ($T_{1/2}$) and the time to reach the peak concentration ($T_{max}$) of nifedipine. Based on these results, we can make a conclusion that the significant changes of these pharmacokinetic parameters might be due to atorvastatin, which possesses the potency to inhibit the metabolizing enzyme (CYP3A4) in the liver and intestinal mucosa, and also inhibit the P-glycoprotein (P-gp) efflux pump in the intestinal mucosa. It might be suggested that atorvastatin altered disposition of nifedipine by inhibition of both the first-pass metabolism and P-glycoprotein efflux pump in the small intestine of rats. In conclusion, the presence of atorvastatin significantly enhanced the oral bioavailability of nifedipine, suggesting that concurrent use of atorvastatin with nifedipine should require close monitoring for potential drug interation.
The link between antibiotic treatment and IF-associated liver disease (IFALD) is unclear. Here, we study the effect of antibiotic treatment on bile acid (BA) metabolism and investigate the involved mechanisms. The results showed that pediatric IF patients with cholestasis had a significantly lower abundance of BA-biotransforming bacteria than patients without cholestasis. In addition, the BA composition was altered in the serum, feces, and liver of pediatric IF patients with cholestasis, as reflected by the increased proportion of primary BAs. In the ileum, farnesoid X receptor (FXR) expression was reduced in patients with cholestasis. Correspondingly, the serum FGF19 levels decreased significantly in patients with cholestasis. In the liver, the expression of the rate-limiting enzyme in bile salt synthesis, cytochrome P450 7a1 (CYP7A1), increased noticeably in IF patients with cholestasis. In mice, we showed that oral antibiotics (gentamicin, GM or vancomycin, VCM) reduced colonic microbial diversity, with a decrease in both Gram-negative bacteria (GM affected Eubacterium and Bacteroides) and Gram-positive bacteria (VCM affected Clostridium, Bifidobacterium and Lactobacillus). Concomitantly, treatment with GM or VCM decreased secondary BAs in the colonic contents, with a simultaneous increase in primary BAs in plasma. Moreover, the changes in the colonic BA profile especially that of tauro-beta-muricholic acid ($T{\beta}MCA$), were predominantly associated with the inhibition of the FXR and further altered BA synthesis and transport. In conclusion, the administration of antibiotics significantly decreased the intestinal microbiota diversity and subsequently altered the BA composition. The alterations in BA composition contributed to cholestasis in IF patients by regulating FXR signaling.
The intake of probiotic lactic acid bacteria not only promotes digestion through the microbiome regulated host intestinal metabolism but also improves diseases such as irritable bowel syndrome and inflammatory bowel disease, and suppresses pathogenic harmful bacteria. This investigation aimed to evaluate the immunomodulatory effects in intestinal epithelial cells and to study the clinical efficacy of the selected the Bifidobacterium breve and Bifidobacterium longum groups. The physiological and biochemical properties were characterized, and immunomodulatory activity was measured against pathogenic bacteria. In order to find out the mechanism of inflammatory action of the eight viable and sonicated Bifidobacterium spp., we tried to confirm the changes in the pro-inflammatory cytokines (TNF-α, interleukin (IL)-6, IL-12) and anti-inflammatory cytokine (IL-10), and chemokines, (monocyte chemoattractant protein-1, IL-8) and inflammatory enzymatic mediator (nitric oxide) against Enterococcus faecalis ATCC 29212 infection in Caco-2 cells and RAW 264.7 cells. The clinical efficacy of the selected B. breve and B. longum group was studied as a probiotic adjuvant for acute diarrhea in children by oral administration. The results showed significant immunomodulatory effects on the expression levels of TNF-α, IL-6, IL-12, MCP-1, IL-8 and NO, in sonicated Bifidobacterium extracts and viable bifidobacteria. Moreover, each of the Bifidobacterium strains was found to react more specifically to different cytokines. However, treatment with sonicated Bifidobacterium extracts showed a more significant effect compared to treatment with the viable bacteria. We suggest that probiotics functions should be subdivided according to individual characteristics, and that personalized probiotics should be designed to address individual applications.
Salmonella enterica serovar Typhimurium isolate HJL777 is a virulent bacterial strain in pigs. The high rate of salmonella infection are at high risk of non-typhoidal salmonella gastroenteritis development. Salmonellosis is most common in young pigs. We investigated changes in gut microbiota and biological function in piglets infected with salmonella via analysis of rectal fecal metagenome and intestinal transcriptome using 16S rRNA and RNA sequencing. We identified a decrease in Bacteroides and increase in harmful bacteria such as Spirochaetes and Proteobacteria by microbial community analysis. We predicted that reduction of Bacteroides by salmonella infection causes proliferation of salmonella and harmful bacteria that can cause an intestinal inflammatory response. Functional profiling of microbial communities in piglets with salmonella infection showed increasing lipid metabolism associated with proliferation of harmful bacteria and inflammatory responses. Transcriptome analysis identified 31 differentially expressed genes. Using gene ontology and Innate Immune Database analysis, we identified that BGN, DCN, ZFPM2 and BPI genes were involved in extracellular and immune mechanisms, specifically salmonella adhesion to host cells and inflammatory responses during infection. We confirmed alterations in gut microbiota and biological function during salmonella infection in piglets. Our findings will help prevent disease and improve productivity in the swine industry.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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