The succinic semialdehyde dehydrogenase (SSADH) inhibitory component was isolated from the EtOAc fraction of Lactuca sativa through repeated column chromatography; then, it was identified as phytol, a diterpenoid, based on the interpretation of several spectral data. Incubation of SSADH with the phytol results in a time-dependent loss of enzymatic activity, suggesting that enzyme modification is irreversible. The inactivation followed pseudo-first-order kinetics with the second-rate order constant of $6.15{\times}10^{-2}mM^{-1}min^{-1}.$ Complete protection from inactivation was afforded by the coenzyme $NAD^{+}$, whereas substrate succinic semialdehyde failed to prevent the inactivation of the enzyme; therefore, it seems likely that phytol covalently binds at or near the active site of the enzyme. It is postulated that the phytol is able to elevate the neurotransmitter GABA levels in central nervous system through its inhibitory action on one of the GABA degradative enzymes, SSADH.
Bacterial virus f2 and its RNA were examined to elucidate the mode of ozone utilizing sucrose density gradient analysis and electtron microscopic techniques. the inactivation kinetics of the virus f2 by ozonation showed that the viruses were inactivated during the first 5 sec of the reaction and were further inactivated at a slower rate during the next 10 min at 0.09 and 0.8mg/l ozone concentrations. The virus coat was broken by ozonation into many pieces of protein subunits and the adsorption of the viruses to the host pili was inversely related to the extent of the breakage of the virus. The viral RNA was released from the virus particles during ozone, but ozone inactivation of the RNA enclosed in the protein coat could not ruled out the possibility that the RNA was secondarily sheared by a reaction with the broken coat protein.
Decursin was purified from Angelica gigas Nakai, and its effects on the human Kv1.5 (hKv1.5) currents were recorded in mouse fibroblasts ($Ltk^-$ cells) by whole-cell patch-clamp technique. Decursin inhibited hKv1.5 current in a concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ value of $2.7\;{\mu}M$ at +60 mV. Decursin accelerated the inactivation kinetics of the hKv1.5 channel, and slowed the deactivation kinetics of the hKv1.5 current, resulting in a tail crossover phenomenon. Also, decursin inhibited the hKv1.5 current in a use-dependent manner. These results strongly suggest that decursin is a kind of open-channel blocker of the hKv1.5 channel.
Polyphenol oxidase was purified from acetone powder extract of the root of Ixeris sonchifolia. The enzyme obtained by ammonium sulfate fractionation and sephadex G-200 gelfiltration gave 51-fold purification over the crude extract. The purified enzyme showed activity toward chlorogenic acid, caffeic acid and pyrocatechol. The kinetics of thermal inactivation of the enzyme followed first-order reaction. Potassium cyanide and cysteine were potent inhibitors.
Four peroxidase isozymes from horseradish roots (isozymes A, B, C and D) were isolated by chromatography and were thermally inactivated at $70{\sim}97^{\circ}C$ and pH 7.0. The four isozymes had different inactivation rates and the inactivation of each isozymes did not follow first order kinetics. D values of isozymes A, B, C, D and crude enzyme were 594s, 1850s, 2050s, 78s, 130s and z values were $24.0^{\circ}C$, $12.5^{\circ}C$, $18.0^{\circ}C$, $23.7^{\circ}C$ and $24.0^{\circ}C$, respectively. Sephadex gel chromatogram of the thermally treated isozyme C indicated that the shape and molecular weight of the native isozyme changed during inactivation.
Migraine is a neurological disorder characterized by recurrent and disabling severe headaches. Although several anticonvulsant drugs that block voltagedependent $Na^+$ channels are widely used for migraine, far less is known about the therapeutic actions of carbamazepine on migraine. In the present study, therefore, we characterized the effects of carbamazepine on tetrodotoxin-resistant (TTX-R) $Na^+$ channels in acutely isolated rat dural afferent neurons, which were identified by the fluorescent dye DiI. The TTX-R $Na^+$ currents were measured in medium-sized DiIpositive neurons using the whole-cell patch clamp technique in the voltage-clamp mode. While carbamazepine had little effect on the peak amplitude of transient $Na^+$ currents, it strongly inhibited steady-state currents of transient as well as persistent $Na^+$ currents in a concentration-dependent manner. Carbamazepine had only minor effects on the voltage-activation relationship, the voltage-inactivation relationship, and the use-dependent inhibition of TTX-R $Na^+$ channels. However, carbamazepine changed the inactivation kinetics of TTX-R $Na^+$ channels, significantly accelerating the development of inactivation and delaying the recovery from inactivation. In the current-clamp mode, carbamazepine decreased the number of action potentials without changing the action potential threshold. Given that the sensitization of dural afferent neurons by inflammatory mediators triggers acute migraine headaches and that inflammatory mediators potentiate TTX-R $Na^+$ currents, the present results suggest that carbamazepine may be useful for the treatment of migraine headaches.
Kim, Ji-Mok;Jung, Sung-Jun;Kim, Sang-Jeong;Kim, Jun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.1
no.6
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pp.613-624
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1997
Dorsal root ganglion (DRG) is composed of neuronal cell bodies of primary afferents with diverse functions. Various types of ion channels present on DRG neurons may reflect those functions. In the present study, voltage-gated potassium currents in DRG neurons of neonatal rats were characterized by whole-cell voltage clamp method. Two types of delayed rectifier and three types of transient potassium currents were identified according to their electrophysiological properties. The delayed rectifier currents were named $I_{Ke}$ (early inactivating) and $I_{K1}$ (late inactivating). Steady state inactivation of $I_{Ke}$ began from -100 mV lasting until -20 mV. $I_{K1}$ could be distinguished from $I_{Ke}$ by its inactivation voltage range, from -70 mV to +10 mV. Three transient currents were named $I_{Af}$ (fast inactivation), $I_{Ai}$ (intermediate inactivation kinetics), and $I_{As}$ (slow inactivation). $I_{Af}$ showed fast inactivation with time constant of $10.6{\pm}2.0$ msec, $I_{Ai}$ of $36.9{\pm}13.9$ msec, and $I_{As}$ of $60.6{\pm}2.9$ msec at +30 mV, respectively. They also had distinct steady state inactivation range of each. Each cell expressed diverse combination of potassium currents. The cells most frequently observed were those which expressed both $I_{K1}$ and $I_{Af}$, and they had large diameters. The cells expressing $I_{Ke}$ and expressing $I_{Ke}$, $I_{Ai}$, and $I_{As}$ usually had small diameters. Judging from cell diameter, capsaicin sensitivity or action potential duration, candidates for nociceptor were the cells expressing $I_{Ke}$, expressing $I_{Ke}$ and $I_{Ai}$, and expressing $I_{Ke}$ and $I_{As}$. The types and distribution of potassium currents in neonatal rat DRG were similar to those of adult rat DRG (Gold et al, 1996b).
An apparatus for continuous sterilization of fluids in which heating-up and cooling time are negligible enabled determination of the kinetics of thermal inactivation of peroxidase for the range of temperatures $110{\sim}140^{\circ}C$. The enthalpy of activation was 146.4 kJ/mol; free energy of activation, 113kJ/mol; and the entropy of activation, 82.9J/mol.K. Comparisons of the experimental results with the thermal destruction time curves of microorganisms showed the possibility that the time required to inactivate peroxidase might be taken into account in evaluating thermal processes for commerciel HTST methods.
Essential amino acids involving in the catalytic mechanism of the $\beta$-D-xylosidase of Bacillus stearothermophilus were determined by chemical modification studies. Among various che- mical modifiers tested N-bromosuccinimide (NBS), $\rho$-hydroxymercurybenzoate (PHMB), N-ethylma- leimide, 1-[3-(di-ethylamino)-propyl]$-3-ethylcarbodi-imide (EDC), and Woodward's Reagent K(WRK)inactivated the enzyme, resulting in the residual activity of less than 20%. WRK reduced the enzyme activity by modifying carboxylic amino acids, and the inactivation reacion proceeded in the form of pseudo-first-order kinetics. The double-lagarithmic plot of the observed pseudo-first- order rate constant against the modifier concentration yielded a reaction order of 2, indicating that two carboxylic amino acids were essential for the enzyme activity. The $\beta$-D-xylosidase was also inactivated by N-ethylmaleimide which specifically modified a cysteine residue with a reaction order of 1, implying that one cysteine residue was important for the enzyme activity. Xylobiose protected the enzyme against inactivation by WRK and N-ethylmaleimide, revealing that carboxylic amino acids and a cysteine residue were present at the substrate-binding site of the enzyme molecule.
Incubation of an NADPH-dependent succinic semialdehyde reductase from bovine brain with N-bromosuccinimide (NBS) resulted in a time-dependent loss of enzyme activity. The inactivation followed pseudo-first-order kinetics with the second-order rate constant of $6.8\times{10}^3$$M^-1$$min^{-1}$. The inactivation was prevented by preincubation of the enzyme with substrate succinic semialdehyde, but not with coenzyme NADPH. There was a linear relation-ship between oxindole formation and the loss of enzyme activity. Spectro-photometric studies indicated that about one oxindole group per molecule of the enzyme was formed following complete loss of enzymatic activity. It is suggested that the catalytic function of succinic semialdehyde reductase is modulated by binding of NBS to a specific tryptophan residue at or near the substrate binding site of the enzyme.
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