The number of patients with coronary artery disease and peripheral vascular disease are increasing, and the need of small diameter vessel is also increasing. We developed small diameter artificial vessel and experimented in vivo. We got allogenic valve from mongrel dogs, and removed all cells from the allogenic valve. Then, we seeded autologous bone marrow cells onto the decellularized scaffold. After implantation of artificial vessel into the canine carotid artery, we performed angiography regularly. In case of vessel occlusion or at 8 weeks after operation, we euthanized dogs, and retrieved the implanted artificial vessels. Control vessels were all occluded except one (which developed aneurysmal dilatation). But autologous cell seeded vascular graft were patent by 4 weeks in one, by 6 in one and by 8 weeks in two. Histologic examination of patent vessel revealed similar structure to native artery. Tissue-engineered vascular graft manufactured with decellularized allogenic matrix and autologous bone marrow cells showed that tissue engineered graft had similar structure to native artery.
The impact of storage conditions on the permeability of porcine buccal mucosa to [$^3H$]water and [$^{14}C$]mannitol was assessed. The fresh pocine buccal tissue (fresh tissue) was obtained by utilizing pig heads within 24 hours of slaughter. The stored and frozen porcine buccal tissues (stored tissue and frozen tissue) were obtained after the storage of the tissue intact in the pig heads at $4^{\circ}C$ or -$20^{\circ}C$, respectively, for 24 h. The results demonstrated that the barrier properties of the porcine buccal mucosa were maintained with regard to [$^3H$]water permeability when stored at $4^{\circ}C$ for 24 h. However, freezing the tissue resulted in tissue damage illustrated by a significant increase in [$^3$H]water permeability. [$^{14}C$]Mannitol does not appear to be a suitable model solute to assess the ex vivo permeability of porcine buccal mucosa due to its extremely low permeability.
In vivo clearance of BMS-182874 was primarily due to metabolism via stepwise N-demethylation. Despite in vivo clearance approached ca 50% of the total liver plasma flow, BMS-182874 was completely bioavailable after oral administration in rats. Saturable first-pass metabolism and the role of extrahepatic tissue were evaluated as possible reasons for complete oral bioavailability despite extensive metabolic clearance. Pharmacokinetic parameters were obtained after an intravenous and a range of oral doses of BMS-182874 in rats. Bile and urine were collected from bile-duct cannulated (BDC) rats and the in vivo metabolic pathways of BMS-182874 were evaluated. Pharmacokinetics of BMS-182874 were also compared in nephrectomized (renally impaired) vs. sham-operated control rats. Oral bioavailability of BMS-182874 averaged 100%, indicating that BMS-182874 was completely absorbed and the first-pass metabolism (liver or intestine) was negligible. The AUC and C/sub max/ values increased dose-proportionally, indicating kinetics were linear within the oral dose range of 13 to 290 mmole/kg. After intravenous administration of BMS-182874 to BDC rats, about 2% of intact BMS-182874 was recovered in excreta, indicating that BMS-182874 was cleared primarily via metabolism in vivo. The major metabolite circulating in plasma was the mono-N-desmethyl metabolite and the major metabolite recovered in excreta was the di-N-desmethyl metabolite. In vivo clearance of BMS-182874 was significantly reduced in nephrectomized rats. These observations suggest saturable first-pass metabolism is unlikely to be a mechanism for complete oral bioavailability of BMS-182874. Reduced clearance observed in the nephrectomized rats suggests that extrahepatic tissues (e.g., kidneys) may play an important role in the in vivo clearance of xenobiotics that are metabolized via N-demethylation.
The purpose of this study is to compare the biocompatibility of commercial purity Ti, Ti-6AI-4V and Ti-6AI-7Nb alloy specimens with and without surface treatment in mouse abdominal connective tissue in vivo. Each metal was implanted into specific abdominal subdermal tissue site of female mouse. After 4 weeks, the implants were removed and abdominal tissues were fixed, dehydrated and embedded in glycol methacrylate resin. And the tissues were histologically prepared for microscopical evaluation. It was characterized by the presence of connective tissue with fibrous capsule surrounding the implant. The fibrous tissue surrounding the implant was studied to determine the biocompatibility of implanted metals. The average thickness of the fibrous capsule formed around the implant was much thinner for the hydrogen peroxide added hydrochloric acid solution-treated specimen than for the others. The results of this evaluation indicate that modification of the surface properties of titanium and titanium alloy implants changes the biological properties in the abdominal connective tissue. In conclusion, these observations suggest that the proper surface treatment performed in the study is effective for the improvement of biocompatibility.
Optical measurements of turbid biological tissue have provided a means to study tissue metabolism, tissue blood perfusion and blood oxygenation non-invasively. We used the red light of 660nm and infrared of 880nm to measure the blood fractional volume and oxygen saturation of biological tissue. In vivo reflectance data were obtained the physiological change from the deep tissue in human subject. The data evaluation was assessed by examining the slopes of the plotter index for the changes in oxygen saturation and blood fraction volume. The index is the natural logarithm of the ratio of reflected light intensity from measured medium to reference intensity at each wavelength. According to the experimental results, oxygen index changes significantly in the muscle of calf during exercise.
Plant tissue culture techniques offer quick methods of regeneration of plants of medicinal importance but the survival chances of such plants are always questionable when shifted to the in vivo conditions. The present study enumerates the micromorphological developments in the leaves of in vitro regenerated and field transferred plantlets of Oldenlandia umbellata. The leaves developed in vitro after $4^{th}$ subcultures of multiplication phase and after 6 weeks of field transferred plants were used. Statistically significant differences in the number of stomata, veins, raphides, crystals and trichome density per square mm were observed. The improvements in stomatal apparatus and density (decreased from 41.85 to 32.20), developments in leaf architectural parameters and emergence of defense mechanism through increased numbers of raphides (8 to 15), crystals and trichomes (13.5 to 18.2) proved acclimation of tissue culture raised plantlets from in vitro to the in vivo environments lead to 100 % success in field establishment of the plantlets. The in vitro induced foliar abnormalities (changes in stomata, venation pattern, vein density, trichomes, crystals etc.) were repaired while hardening of plantlets in the greenhouse and finally in the field. The observed micromorphological response of leaves under altered environmental conditions could help in determination of proper stage of field transfer and prediction of survival percentage of in vitro regenerated O. umbellata plantlets.
Purpose : To investigate the phosphorus metabolic abnormalities in skeletal muscle of patients with mitochondrial myopathy using in vivo $^{31}P$ magnetic resonance spectroscopy(MRS). Materials and Methods : Patients with mitochondrial myopathy(N=10) and normal control subjects (N=10) participated. All in vivo $^{31}P$ MRS examinations were performed on 1.5T whole-body MRI/MRS system by using an image selected in vivo spectroscopy (ISIS) pulse sequence that provided a $4{\times}4{\times}4{\;}cm^{3}$ volume of interest (VOI) in the right thigh muscle tissue. Peak areas for each phophorus methabolite were measured using a Marquart algorithm. Results : The specific features in patients with mitochondrial myopathy were a significant increase of Pi/PCr ratio (p=0.003) and a significant decrease of ATP/PCr ratio (p=0.004) as compared with normal controls. In particular, the ${\beta}-ATP/PCr$ ratio between controls and patients with mitochondrial myopathy was predominantly altered. Conclusions : In vivo $^{31}P$ MRS may be a useful modality in the clinical evaluation of patients with mitochondrial myopathy based on ATP/PCr and Pi/PCr ratios in skeletal muscle tissue and provides a valuable information in further understanding disorders of muscle metabolism.
Objectives : The aim of this study is to evaluate the potential biological activity of Veronica incana extracts (VIE) through in vitro, ex vivo, and in vivo experiments. Methods : In vitro, we conducted analyses on the total polyphenol (TP) and total flavonoid (TF) levels, alongside DPPHand ABTS radical scavenging activities. Ex vivo evaluations on adipose tissue measured glycerol release as a marker of lipolysis. In LPS-induced RAW 264.7 cells, we quantified nitric oxide (NO) production. Following H2O2 induction in U2OS cells, we performed mitochondrial assays such as MitoSox and MitoTracker. Moreover, Bodipy assays were conducted in 3T3-L1 cells. In vivo, we performed anti-osteoarthritis effect of VIE against monosodium iodoacetate (MIA)-induced osteoarthritis in rats. Results : The results presented encompass a myriad of models, from cell culture to animal experiments as well as ex vivo studies. VIE demonstrated high TP and TF contents, potent DPPH and ABTS scavenging activities, and regulated glycerol release. Moreover, the inhibition of NO production in LPS-induced inflammation was notably confirmed and the reduction of lipid droplets was distinctly shown. Furthermore, in H2O2-induced U2OS cells, MitoSox was effectively reduced while MitoTracker noticeably increased. In vivo assays confirmed a significant increase in hindpaw weight distribution (HWD) decreased by MIA after VIE treatment. Additionally, VIE inhibited serum inflammatory cytokines (TNF-𝛼, IL-6, and IL-1𝛽) and MDA levels in joint tissue. Conclusion : In conclusion, Veronica incana exhibited various pharmacological effects including antioxidant, anti-obesity, and anti-inflammatory properties.
Aim of the study: An alternative source of adult stem cells that could be obtained in large quantities, under local anesthesia, with minimal discomfort would be advantageous. Adipose tissue could be processed to obtain a fibroblast-like population of cells or adipose tissue-derived stromal cells (ATSCs). This study was performed to confirm the availability of ATSCs in bone tissue engineering. Materials amp; Methods: In this study, adipose tissue-derived mesenchymal stem cell was extracted from the liposuctioned abdominal fat of 24-old human and cultivated, and the stem cell surface markers of CD 105 and SCF-R were confirmed by immunofluorescent staining. The proliferation of bone marrow mesenchymal stem cell and ATSCs were compared, and evaluated the osteogenic differentiation of ATSCs in a specific osteogenic induction medium. Osteogenic differentiation was assessed by von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific BMP-2, ALP, Cbfa-1, Osteopontin and osteocalcin were confirmed by RT-PCR. With differentiation of ATSCs, calcium concentration was assayed, and osteocalcin was evaluated by ELISA (Enzyme-linked immunosorbant assay). The bone formation by 5-week implantation of HA/TCP block loaded with bone marrow mesenchymal stem cells and ATSCs in the subcutaneous pocket of nude mouse was evaluated by histologic analysis. Results: ATSCs incubated in the osteogenic medium were stained positively for von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific genes was also detected. ATSCs could be easily identified through fluorescence microscopy, and bone formation in vivo was confirmed by using ATSC-loaded HA/TCP scaffold. Conclusions: The present results show that ATSCs have an ability to differentiate into osteoblasts and formed bone in vitro and in vivo. So ATSCs may be an ideal source for further experiments on stem cell biology and bone tissue engineering.
Proceedings of the Korean Institute of Surface Engineering Conference
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2017.05a
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pp.3-23
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2017
The achievement of tissue engineering can be highly depending on the capability to generate complicated, cell seeded three dimensional (3D) micro/nano-structures. So, various fabrication techniques that can be used to precisely design the architecture and topography of scaffolding materials will signify a key aspect of multi-functional tissue engineering. Previous methods for obtaining scaffolds based on top-down are often not satisfactory to produce complex micro/nano-structures due to the lack of control on scaffold architecture, porosity, and cellular interactions. However, a bioprinting method can be used to design sophisticated 3D tissue scaffolds that can be engineered to mimic the tissue architecture using computer aided approach. Also, in recent, the method has been modified and optimized to fabricate scaffolds using various natural biopolymers (collagen, alginate, and chitosan etc.). Variation of the topological structure and polymer concentration allowed tailoring the physical and biological properties of the scaffolds. In this presentation, the 3D bioprinting supplemented with a newly designed plasma treatment for attaining highly bioactive and functional scaffolds for tissue engineering applications will be introduced. Moreover, various in vivo and in vitro results will show that the fabricated scaffolds can carry out their structural and biological functionality.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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