The purpose of this preliminary study is to improve the efficiency of gene transfer of nonviral plasmid DNA by in vivo electroporation in ischemic hindlimb muscle, tibialis anterior. Hindlimb ischemic model was aseptically made by excision of left femoral artery. Each $50\;{\mu}g$ of pEGFP-C1 and pGL3-control in $100\;{\mu}l$ 0.9% NaCl was injected in tibialis anterior muscle. In vivo electroporation was applied on the same site with 10 mm-distance 2 needle array electrodes and ECM830. In 3 groups of normal rat with different electric field strength 0, 200 and 800 V/cm, the expression of pEGFP-C1 was comparatively evaluated. In 8 groups of normal rats, the expression of pGL3-control was evaluated in 0, 40, 50, 80, 100, 150, 200 and 300 V/cm of electric field strength. In 5 groups of ischemic models, the expression of pGL3-control was analyzed on 0, 4, 7, 10 and 14 days elapsed after making ischemic models. In 9 groups of ischemic rats, the expression of pGL3-control was analyzed in the electric field strength 0, 60, 70, 80, 100, 150, 200, 250 and 300 V/cm. GFP expressions in normal tibialis anterior were high in the extent and degree in order of electric field strength of 200, 800 and 0 V/cm. Luciferase value was highest in $50{\sim}100\;V/cm$ electric field strength. In the case of ischemic models, luciferase expression was significantly increasing in the order elapsed time after making the model. The degree of luciferase expression was higher in cases of application of in vivo electroporation than in that of non-application and was highest in $100{\sim}150\;V/cm$. In conclusion, in vivo electroporation is effective in transfer and expression of plasmid DNA in normal and ischemic tibialis anterior of rat.
The present study was conducted to investigate effects and mechanisms of action of phenolic alkaloids of Menispermum dauricum (PAMD) on gastric cancer in vivo. In vitro, cell apoptosis of human gastric cancer cell line SGC-7901 was observed using fluorescence staining. In vivo, a mice model was constructed to observe tumor growth with different doses. Cell apoptosis was examined using flow cytometry and K-RAS protein expression using Western blotting. The mRNA expression of P53, BCL-2, BAX, CASPASE-3, K-RAS was examined by real-time PCR. PAMD significantly suppressed tumor growth in the xenograft model of gastric cancer in a dose-dependent manner (p<0.01). Functionally, PAMD promoted cell apoptosis of the SGC-7901 cells and significantly increased the rate of cell apoptosis of gastric tumor cells (p<0.05). Mechanically, PAMD inhibited the expression of oncogenic K-RAS both at the mRNA and protein levels. In addition, PAMD affected the mRNA expression of the cell apoptosis-related genes (P53, BCL-2, BAX, CASPASE-3). PAMD could suppress gastric tumor growth in vivo, possibly through inhibiting oncogenic K-RAS, and induce cell apoptosis possibly by targeting the cell apoptosis-related genes of P53, BCL-2, BAX, CASPASE-3.
The objective of this study was to determine the mRNA expression patterns of several putative imprinted genes in in vivo and in vitro fertilized, parthenogenetic, and cloned porcine preimplantation embryos. Both maternally (Dlk1, IGF2, Peg1/Mest and Ndn) and paternally (IGF2r, H19 and Xist) imprinted genes were selected. We have used reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) to investigate gene expression patterns in the porcine embryos. IGF2 transcripts were detected in the most of embryos. In nuclear transfer (NT), Peg1/MEST transcripts showed fluctuating pattern. Dlk1 was only expressed partially from the morula and blastocyst stage of NT embryos. Ndn gene expression was started somewhat early for in vivo embryos. However, the expressions of maternally imprinted genes were similar in all types of blastocysts (NT, in vivo and in vitro fertilized, and parthenogenetic embryos). The IGF2R gene expression level was somewhat irregular and varied among samples. However, for the majority samples of all types of embryos, IGF2R expression was diminished after one- to two-cell stages and reappeared at the morulae or blastocyst stage embryos. H19 gene was only expressed early in parthenogenetic and in vivo embryos. For NT embryos, H19 was only expressed in blastocysts. Xist expression was detected in all blastocysts with the earliest being in vivo 8-cell stage embryos and the last one being NT blastocysts. These putative imprinted genes appeared to have stage specific expression patterns with a fluctuating pattern for some genes (Peg/Mest, IGF2r, H19). These results suggest that stage specific presence of imprinted genes can affect the embryo implantation and fetal development.
As it is needed to assay possible feasibility of extrapolation between in vivo and in vitro systems and to develop a new in vitro method for toxicity testing, we investigated global gene expression from both animal and cell line treated with thioacetamide (TAA) and compared between in vivo and in vitro genomic profiles. For in vivo study, mice were orally treated with TAA and sacrificed at 6 and 24 h. For in vitro study, TAA was administered to a mouse hepatic cell line, BNL CL.2 and sampling was carried out at 6 and 24 h. Hepatotoxicity was assessed by analyzing hepatic enzymes and histopathological examination (in vivo) or lactate dehydrogenase (LDH) assay and morphological examination (in vitro). Global gene expression was assessed using microarray. In high dose TAA-treated group, there was centrilobular necrosis (in vivo) and cellular toxicity with an elevation of LDH (in vitro) at 24 h. Statistical analysis of global gene expression identified that there were similar numbers of altered genes found between in vivo and in vitro at each time points. Pathway analysis identified several common pathways existed between in vivo and in vitro system such as glutathione metabolism, bile acid biosynthesis, nitrogen metabolism, butanoate metabolism for hepatotoxicty caused by TAA. Our results suggest it may be feasible to develop toxicogenomics biomarkers by comparing in vivo and in vitro genomic profiles specific to TAA for application to prediction of liver toxicity.
Objectives This study was performed to decide the bone union effect of Hwaweo-jeon on tibia fractured mice. Methods In this study, laboratory experiments were implemented by the stage of in vitro and in vivo. In in vitro, MC3T3-E1 cells were treated with various concentration of Hwaweo-jeon extract (HWJ). To investigate effect of HWJ for osteoblast, relative mRNA expression of 5 substances (alkaline phosphatase [ALP], runt-related transcription factor 2 [Runx2], osteocalcin [OCN], osterix [OSX] and collagen type II alpha 1 chain [Col2a1]) was used as a marker of osteogenesis. In order to determine HWJ's effect for fracture healing, relative gene expression level of ALP, Runx2, OCN, OSX and Col2a1 were used to find out the influence to osteoblast. Furthermore, receptor activator of nuclear factor kappa-B ligand and osteoprotegerin relative mRNA expression were used to estimate the impact to osteoclast. Also, X-ray was used for the purpose of identifying bone union in tibia-fracture mouse model. Results In in vitro experiment, most part of relative mRNA expression were increased compared to control group. In in vivo and in vitro experiment, HWJ induced osteoblast activitation by verifying relative mRNA expression of 5 substances. And in vivo experiment, we can also identify that HWJ triggered osteoclast activation during early stage of tibia fracture. Furthermore, X-ray pictures show noticeable recovery of tibia fracture. Conclusions HWJ extract promotes bone union by facilitating the osteoblast. But, HWJ may occur liver & kidney toxicity over specific concentration. Therefore, when HWJ is applied to human body, doctors have to follow up the liver function test & renal function test of patient.
Recent studies have suggested that the RAS protein activator like-1 (RASAL1) functions as a tumor suppressor in vitro and may play an important role in the development of gastric cancer. However, whether or not RASAL1 suppresses tumor growth in vivo remains to be determined. In the present study, we investigated the role of RASAL1 in gastric carcinogenesis using an in vivo xenograft model. A lentiviral RASAL1 expression vector was constructed and utilized to transfect the human poorly differentiated gastric adenocarcinoma cell line, BGC-823. RASAL1 expression levels were verified by quantitative real-time RT-PCR and Western blotting analysis. Then, we established the nude mice xenograft model using BGC-823 cells either over-expressing RASAL1 or normal. After three weeks, the results showed that the over-expression of RASAL1 led to a significant reduction in both tumor volume and weight compared with the other two control groups. Furthermore, in xenograft tissues the increased expression of RASAL1 in BGC-823 cells caused decreased expression of p-ERK1/2, a downstream moleculein the RAS/RAF/MEK/ERK signal pathway. These findings demonstrated that the over-expression of RASAL1 could inhibit the growth of gastric cancer by inactivation of the RAS/RAF/MEK/ERK pathway in vivo. This study indicates that RASAL1 may attenuate gastric carcinogenesis.
This study examined the effect of 3,4-dihydroxytoluene (DHT) on UVB-induced photoaging and determined its molecular mechanisms, using HaCaT human keratinocytes and SKH-1 hairless mice. DHT suppressed UVB-induced matrix metalloproteinase-1 (MMP-1) expression in HaCaT cells. In vivo data from mouse skin supported that DHT decreased UVB-induced wrinkle formation, epidermal thickness, and matrix metalloproteinase-13 (MMP-13) expression. DHT appeared to exert its anti-aging effects by suppressing UVB-induced Raf-1 kinase activity and subsequent attenuation of UVB-induced phosphorylation of MEK, ERK, and p90RSK in HaCaT cells. In vitro and in vivo pull-down assays revealed that DHT bound with Raf-1 in ATP-noncompetitive manner. Overall, DHT appears to anti-photoaging effects in vitro and in vivo through the suppression of Raf-1 kinase activity and may have potential as a treatment for the prevention of skin aging.
Kwon, Han Ol;Lee, Minhee;Kim, Ok-Kyung;Ha, Yejin;Jun, Woojin;Lee, Jeongmin
Nutrition Research and Practice
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제10권3호
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pp.265-273
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2016
BACKGROUND/OBJECTIVES: The inhibitory effect of Hijikia fusiforme (HF) extracts on degenerative osteoarthritis was examined in primary cultured rat cartilage cells and a monosodium iodoacetate (MIA)-induced osteoarthritis rat model. MATERIALS/METHODS: In vitro, cell survival and the expression of matrix metalloproteinases (MMPs), collagen type I, collagen type II, aggrecan, and tissue inhibitor of metalloproteinases (TIMPs) was measured after $H_2O_2$ ($800{\mu}M$, 2 hr) treatment in primary chondrocytes. In vivo animal study, osteoarthritis was induced by intra-articular injection of MIA into knee joints of rats, and then RH500, HFE250 and HFE500 were administered orally once a day for 28 days. To determine the anti-inflammatory effects of HFE, nitric oxide (NO), prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) expression were measured. In addition, real-time PCR was performed to measure the genetic expression of MMPs, collagen type I, collagen type II, aggrecan, and TIMPs. RESULTS: In the in vitro assay, cell survival after $H_2O_2$ treatment was increased by HFE extract (20% EtOH). In addition, anabolic factors (genetic expression of collagen type I, II, and aggrecan) were increased by HFE extract (20% EtOH). However, the genetic expression of MMP-3 and 7, known as catabolic factors were significantly inhibited by treatment with HFE extract (20% EtOH). In the in vivo assay, anabolic factors (genetic expression of collagen type I, II, aggrecan, and TIMPs) were increased by oral administration of HFE extract. However, the genetic expression of MMP-3 and 7, known as catabolic factors, and production of NO and $PGE_2$ were significantly inhibited by treatment with oral administration of HFE extract. CONCLUSION: HFE extract inhibited articular cartilage degeneration through preventing extracellular matrix degradation and chondrocyte injury.
As a possible feasibility of the extrapolation between in vivo and in vitro systems, we investigated the global gene expression from both mouse liver and mouse hepatic cell line treated with hepatotoxic chemical, acetaminophen (APAP), and compared between in vivo and in vitro genomic profiles. For in vivo study, mice were orally treated with APAP and sacrificed at 6 and 24 h. For in vitro study, APAP were administered to a mouse hepatic cell line, BNL CL.2 and sampling was carried out at 6 and 24 h. Hepatotoxicity was assessed by analyzing hepatic enzymes and histopathological examination (in vivo) or lactate dehydrogenase (LDH) assay and morphological examination (in vitro). Global gene expression was assessed using microarray. In high dose APAPtreated group, there was centrilobular necrosis (in vivo) and cellular toxicity with the elevation of LDH (in vitro) at 24 h. Statistical analysis of global gene expression identified that there were similar numbers of altered genes found between in vivo and in vitro at each time points. Pathway analysis identified glutathione metabolism pathway as common pathways for hepatotoxicty caused by APAP. Our results suggest it may be feasible to develop toxicogenomics biomarkers or profiles by comparing in vivo and in vitro genomic profiles specific to this hepatotoxic chemical for application to prediction of liver toxicity.
Although tectorigenin (TG), a major compound in the rhizome of Belamcanda chinensis, is conventionally used for the treatment of inflammatory diseases, its effects on osteogenesis and osteoclastogenesis have not been reported. The objective of this study was to investigate the effects and possible underlying mechanism of TG on in vitro osteoblastic differentiation and in vivo bone formation, as well as in vitro osteoclast differentiation and in vivo bone resorption. TG promoted the osteogenic differentiation of primary osteoblasts and periodontal ligament cells. Moreover, TG upregulated the expression of the BMP2, BMP4, and Smad-4 genes, and enhanced the expression of Runx2 and Osterix. In vivo studies involving mouse calvarial bone defects with ${\mu}CT$ and histologic analysis revealed that TG significantly increased new bone formation. Furthermore, TG treatment inhibited osteoclast differentiation and the mRNA levels of osteoclast markers. In vivo studies of mice demonstrated that TG caused the marked attenuation of bone resorption. These results collectively demonstrated that TG stimulated osteogenic differentiation in vitro, increased in vivo bone regeneration, inhibited osteoclast differentiation in vitro, and suppressed inflammatory bone loss in vivo. These novel findings suggest that TG may be useful for bone regeneration and treatment of bone diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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