Objective : Adipose tissue is derived from the embryonic mesoderm and contains a heterogenous stromal cell population. Authors have tried to verify the characteristics of stem cell of adipose derived stromal cells (ADSCs) and to investigate immunohistochemical findings after transplantation of ADSC into rat brain to evaluate survival, migration and differentiation of transplanted stromal cells. Methods : First ADSCs were isolated from human adipose tissue and induced adipose, osseous and neuronal differentiation under appropriate culture condition in vitro and examined phenotypes profile of human ADSCs in undifferentiated states using flow cytometry and immunohistochemical study. Human ADSCs were transplanted into the healthy rat brain to investigate survival, migration and differentiation after 4 weeks. Results : From human adipose tissue, adipose stem cells were harvested and subcultured for several times. The cultured ADSCs were differentiated into adipocytes, osteoctye and neuron-like cell under conditioned media. Flow cytometric analysis of undifferentiated ADSCs revealed that ADSCs were positive for CD29, CD44 and negative for CD34, CD45, CD117 and HLA-DR. Transplanted human ADSCs were found mainly in cortex adjacent to injection site and migrated from injection site at a distance of at least 1 mm along the cortex and corpus callosum. A few transplanted cells have differentiated into neuron and astrocyte. Conclusion : ADSCs were differentiated into multilineage cell lines through transdifferentiation. ADSCs were survived and migrated in xenograft without immunosuppression. Based on this data, ADSCs may be potential source of stem cells for many human disease including neurologic disorder.
Regenerative therapy holds great promise in the development of cures of some untreatable diseases such as cardiovascular diseases, and pluripotent stem cells (PSCs) including induced PSCs (iPSCs) are the most important regenerative seed cells. Recently, differentiation of human PSCs into functional tissues and cells in vitro has been widely reported. However, although porcine reports are rare they are quite essential, as the pig is an important animal model for the in vitro generation of human organs. In this study, we reprogramed porcine embryonic fibroblasts into porcine iPSCs (piPSCs), and differentiated them into cluster of differentiation 31 (CD31)-positive endothelial cells (ECs) (piPSC-derived ECs, piPS-ECs) using an optimized single-layer culture method. During differentiation, we observed that a combination of GSK3β inhibitor (CHIR99021) and bone morphogenetic protein 4 (BMP4) promoted mesodermal differentiation, resulting in higher proportions of CD31-positive cells than those from separate CHIR99021 or BMP4 treatment. Importantly, the piPS-ECs showed comparable morphological and functional properties to immortalized porcine aortic ECs, which are capable of taking up low-density lipoprotein and forming network structures on Matrigel. Our study, which is the first trial on a species other than human and mouse, has provided an optimized single-layer culture method for obtaining ECs from porcine PSCs. Our approach can be beneficial when evaluating autologous EC transplantation in pig models.
An in vitro construct of three dimensional artificial skin equivalent has been engineered using human cervical epithelial cells and human foreskin fibroblasts with a matrix of bovine type I collagen. Two cell lines were established from cervical uteri cancer tissues which have the HPV(human papillomavirus)18 genome. These two cell lines came from the same origin but have slight differencies in growth rate and tumorigenicity. The organotypic raft culturing of epithelial cells were accomplished at air-liquid interface. The differentiation related characteristics were examined by immunohistochemistry using monoclonal antibodies against EGFreceptor, cytokeratin 5/6/18 as proliferation markers and against filaggrin, involucrin, and cytokeratin 10/13 as differentiation marker. We have obtained the stratification and the differentiation in the artificial skin equivalent, and differentiation-related proteins were expressed more in the C3-artificial skin, and proteins of proliferation were expressed more in the C3N-artificial skin, relatively. We found that reconstituted artificial skin have the same characteristics of differentiation proteins of original tissue or cells of human body.
Jang, Ji-Hyun;Lee, Hyeon-Woo;Cho, Kyu Min;Shin, Hee-Woong;Kang, Mo Kwan;Park, Sang Hyuk;Kim, Euiseong
Restorative Dentistry and Endodontics
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제41권4호
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pp.283-295
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2016
Objectives: In this study, we characterized human dental pulp cells (HDPCs) obtained by different culture methods to establish the most suitable methodology for dental tissue engineering and regenerative endodontic applications. Materials and Methods: HDPCs were isolated by the outgrowth method (HDPCs-OG), the enzymatic digestion method (collagenase/dispase/trypsin, HDPCs-ED), or the combination of both methods (HDPCs-Combined). The expression of mesenchymal stem cell markers (CD105, CD90, and CD73) was investigated. In vitro differentiation capacities of HDPCs into adipogenic, osteogenic, and chondrogenic lineages were compared. Differentiation markers were analyzed by quantitative reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and western blotting. Results: Our data indicated that whole HDPCs-ED, HPDCs-OG, and HDPCs-Combined could be differentiated into adipogenic, chrondrogenic, and osteogenic cell types. However, we found that the methods for isolating and culturing HDPCs influence the differentiation capacities of cells. HDPCs-OG and HDPCs-ED were preferably differentiated into adipogenic and osteogenic cells, respectively. Differentiation markers shown by RT-PCR and western blotting analysis were mostly upregulated in the treated groups compared with the control groups. Conclusions: Our findings confirmed that cell populations formed by two different culture methods and the combined culture method exhibited different properties. The results of this study could provide an insight into regenerative endodontic treatment using HDPCs.
Extracellular matrix (ECM) proteins play a crucial role in culturing muscle stem cells (MuSCs). However, there is a lack of extensive research on how each of these proteins influences proliferation and differentiation of MuSCs from livestock animals. Therefore, we investigated the effects of various ECM coatings-collagen, fibronectin, gelatin, and laminin-on the proliferation, differentiation, and maturation of porcine MuSCs. Porcine MuSCs, isolated from 14-day-old Berkshire piglets, were cultured on ECM-coated plates, undergoing three days of proliferation followed by three days of differentiation. MuSCs on laminin showed higher proliferation rate than others (p<0.05). There was no significant difference in the mRNA expression levels of PAX7, MYF5, and MYOD among MuSCs on laminin, collagen, and fibronectin (p>0.05). During the differentiation period, MuSCs cultured on laminin exhibited a significantly higher differentiation rate, resulting in thicker myotubes compared to those on other ECMs (p<0.05). Also, MuSCs on laminin showed higher expression of mRNA related with maturated muscle fiber such as MYH1 and MYH4 corresponding to muscle fiber type IIx and muscle fiber type IIb, respectively, compared with MuSCs on other ECM coatings (p<0.05). In summary, our comparison of ECMs revealed that laminin significantly enhances MuSC proliferation and differentiation, outperforming other ECMs. Specifically, muscle fibers cultured on laminin exhibited a more mature phenotype. These findings underscore laminin's potential to advance in vitro muscle research and cultured meat production, highlighting its role in supporting rapid cell proliferation, higher differentiation rates, and the development of mature muscle fibers.
Saururus chinensis is a commonly used folk herb for the treatment of edema and liver diseases in Korea. To study the biological activity of Saururus chinensis in bone metabolism, we evaluated the effect of its extracts on osteoclast differentiation in vitro using primary mouse bone marrow-derived macrophages. Methanol extract (ME) from dried roots of Saururus chinensis was partitioned into methylene chloride (MF), ethyl acetate (EF), n-butanol (BF) and water fractions (WF). Tartrate-resistance acid phosphatase (TRAP) activity assay and western blot analysis were performed to determine the effect on osteoclast differentiation and mitogen-activated protein (MAP) kinases activation. ME, MF and EF dramatically inhibited receptor activator of ${NF-kB}$ ligand (RANKL)-induced formation of multinucleated osteoclasts and activation of MAP kinases. This study firstly demonstrated that ME, MF and EF of Saururus chinensis have the potential to inhibit the osteoclast differentiation, which results from the inhibition of MAP kinases activations in part.
Human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hBMMSCs) must differentiate into osteogenic cells to allow for successful bone regeneration. In this study, we investigated the effects of different combinations of three soluble osteogenic differentiation-inducing factors [L-ascorbic acid (AC), ${\beta}$-glycerophosphate (${\beta}G$), and bone morphogenic protein-2 (BMP-2)] and the presence of a hydroxyapatite (HA) substrate on hBMMSC osteogenic differentiation in vitro. hBMMSCs were cultured in medium containing various combinations of the soluble factors on culture plates with or without HA coating. After 7 days of culture, alkaline phosphatase (ALP) activity, calcium deposition, and osteoprotegerin (OPG) and osteopontin (OPN) expression were measured. The effects of individual and combined factors were evaluated using a factorial analysis method. BMP-2 predominantly affected expression of early markers of osteogenic differentiation (ALP and OPG). HA had the highest positive effect on OPN expression and calcium deposition. The interaction between AC, ${\beta}G$, and HA had the second highest positive effect on ALP activity.
Osteoclasts are bone-resorbing cells of monocyte/macrophage origin and are culprits of bone destruction associated with osteoporosis, rheumatoid arthritis, and cancer bone metastasis. Recent advances in osteoclast biology revealed central roles of various cytokines in regulating osteoclastogenesis both in vitro and in vivo. However, exact underlying mechanisms including signaling pathways downstream of receptor ligation are still under pursuit. In the present review, the role of Jak/STAT proteins and their regulators will be discussed in connection with osteoclastogenesis, since growing evidence indicates that a number of cytokines and growth factors utilizing Jak/STAT signaling pathways affect osteoclastogenesis. A better understanding on the role of Jak/STAT pathways in osteoclast differentiation will not only strengthen our knowledge on osteoclast biology but also provide invaluable insights into the development of anti-resorptive strategies for treating bone-lytic diseases.
네오레게리아(Neoregeria carorinae 'Tricolor')의 기내배양시 무늬소실을 줄일 수 있는 재료의 채취시기와 발근을 위하여 기내에서 처리된 오옥신이 온실에 이식된 식물체의 생육 및 개화에 미치는 영향에 관하여 실험한 결과, 화아분화 4주후(III단계)에 미숙화기를 배양한 것이 분화된 식물체 중 정상 식물체가 67%로 가장 많았고, 화아분화 직후 및 화아분화 5주후에 배양한 것은 모두 반입이 소실되었다. 미숙화기와 액아를 배양하여 나온 식물체중 정상식물체 획득율은 미숙화기 배양에서는 67%, 액아배양에서는 56.2%였다. 미숙화기를 배양하여 얻은 식물체가 액아를 배양하여 얻은 식물체보다 온실재배에서 생육이 월등이 좋았고, 개화율도 미숙화기를 배양하여 얻은 식물체는 27.8%이었으나 액아를 배양하여 얻은 식물체는 전혀 개화하지 않았다. IBA 0.5 mg/L가 첨가된 배지에서 발근시킨 식물체의 기외생육이 왕성하였으며, 기내에서 처리한 오옥신 종류와 농도는 온실에서 재배되고 있는 식물체의 변이에 영향을 미치지는 않았다.
Jeong, Dong Kee;Sharma, Neelesh;Nguyen, Thanh Luan;Kim, Jong Hyun;Oh, Sung Jong
한국수정란이식학회지
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제29권4호
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pp.351-359
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2014
Phasianus colchicus is not only a beautiful bird but also a great value in science and under the threat of endanger. Hence, the aim of this study was to isolate the pheasant male germ cells (mGCs) and then induce them into elongated sperm-like cells in vitro. The mGCs were purified and enriched by a two-step plating method based on the different adherence velocities of mGCs and somatic cells. The percentage of the c-kit positive cells and c-kit negative cells examined by flow cytometry analysis (FCA) was 92.87% and 2.57%, respectively. Subsequently, the mGCs were induced for 48h in DMEM/F12 medium supplemented factors such as retinol acid, testosterone and bovine FSH, followed by 5 weeks in culture. We found that some elongated sperm-like cells appeared initially in vitro under inducement of stimulated factors. The elongated sperm-like cells showed in the expression of changed morphology and post-transcriptional marker such as spermatid associated (SPERT), spermatid perinuclear RNA binding protein (STRBP), round spermatid basic protein 1 (RSBN1) and SPER1L. Moreover, in DNA content identified assay, induced cells showed that the 1C DNA population markedly increased in differentiated group but it was not change in undifferentiated group. Successful in vitro differentiation of pheasant testicular germline cells into spermatids appears to offer extremely attractive potential for the conservation of endangered birds and treatment of male infertility.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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