Virulent and avirulent H5N1 viruses were inoculated intranasally to BALB/c and immunodeficient mice, and compared the pathogenesis by histology and immunohistochemistry. All of mice infected with virulent virus died by systemic infection at 6 to 7 days postinfection (PI). BALB/c mice infected with avirulent virus survived from the infection, whereas immunodeficient mice showed nervous symptoms in addition to respiratory disease and died at 13 days PI. Viral positive antigens was detected from multiple organs including central nervous system in immunodeficient mice infected with avirulent virus. These results suggest that avirulent H5N1 influenza virus can aquire the multiple tissue tropism under immunosuppresed condition and host immune system is a important factor to protect the development of disease.
The discovery of the immunodeficient mice has provided a tool for establishing animal models as hosts for in vivo analysis of AML. Various model systems have been established in the last few decades, and it is essential that murine AML models are developed to exploit more specific, targeted therapeutics. In this review, we concentrate on the models of AML and discuss the development of immunodeficiency models for understanding of leukemogenesis, describe those now available and their values and document the methods used for establishing and identifying AML mice models, as well as factors influencing engraftment of human AML in immunodeficient mice. Thus, the function of this article is to provide clinicians and experimentalists with a chronological, comprehensive appraisal of all AML model systems.
A humanized mice (hu-mice) model is extremely valuable to verify human cell activity in vivo condition and is regarded as an important tool in examining multimodal therapies and drug screening in tumor biology. Moreover, hu-mice models that simply received human $CD34^+$ blood cells and tissue transplants are also overwhelmingly useful in immunology and stem cell biology. Because generated hu-mice harboring a human immune system have displayed phenotype of human $CD45^+$ hematopoietic cells and when played partly with functional immune network, it could be used to evaluate human cell properties in vivo. Although the hu-mice model does not completely recapitulate human condition, it is a key methodological factor in studying human hematological malignancies with impaired immune cells. Also, an advanced humanized leukemic mice (hu-leukemic-mice) model has been developed by improving immunodeficient mice. In this review, we briefly described the history of development on immunodeficient SCID strain mice for hu-and hu-leukemic-mice model for immunologic and tumor microenviromental study while inferring the potential benefits of hu-leukemic-mice in cancer biology.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제28권1호
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pp.42-45
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2002
Cultures of primary human alveolar bone-derived cells were established from alveolar bone chips obtained from normal individuals undergoing tooth extraction. These cells were expanded in vitro until passage 3 and used for the in vivo assays. Cells were loaded into transplantation vehicles, and transplanted subcutaneously into immunodeficient mice to study the capacities of human alveolar bone-derived cells to form bone in vivo. Transplants were harvested 12 weeks after transplantation and evaluated histologically. Of 10 human alveolar bone-derived cell transplants, two formed a bone-like tissue that featured osteocytes and mineral. Eight of the ten formed no osseous tissue. These results show that cells from normal human alveolar bone are capable of forming bone-like tissue when transplanted into immunodeficient mice.
연구배경: HSVtk/GCV를 이용한 유전자치료에서 면역반응은 1) adenovirus 혹은 retrovirus와 같이 벡타로 사용된 virus의 단백질, 2) 치료목적으로 이입된 HSVtk 유전자의 생성물, 3) 암세포에 대해서 일어날 수 있다. 그리고 이러한 면역반응은 cytokines의 생성 혹은 cytotoxic tumor-specific T-cell의 생성을 초래하여 bystander effect에 의한 살상효과를 증가시키거나, anti-tumor immunity를 유도하여 tumor vaccine의 효과를 나타낼 수 있다. 한편 이와는 대조적으로 면역반응용 HSVtk 유전자를 발현하는 세포들을 파괴하여 이입된 HSVtk 유전자의 발현기간을 제한함으로서 유전자치료의 효과를 감소시킬 수도 있다. 본 연구는 retrovirus 벡타로 이입한 HSVtk 유전자치료에서 면역체계가 bystander effect에 의한 살상효과에 미치는 영향을 규명하고 면역체계가 이입한 유전자의 발현에 미치는 영향을 조사하고자 하였다. 방 법: Immunocompetent mice인 Balb/c mouse와 immunodeficient mouse인 Balb/c-nude 및 SCID mouse에서 retrovirus 벡타를 사용하여 HSVtk 유전자를 이입하고 치료효과를 조사하였다. 그리고 Balb/c mouse에 면역억제제인 cyclosporin을 투여하여 면역억제제가 bystander effect 및 유전자치료 효과와 유전자의 발현기간에 미치는 영향을 조사하였다. 결 과: Balb/c mouse에 HSVtk 유전자를 이입하고 GCV를 투여한 군은 GCV를 투여하지 않은 대조군에 비해 종양의 성장이 유의하게 억제되었으나 Balb/c-nude mouse와 SCID mouse의 경우 GCV를 투여한 군과 대조군 사이에 유의한 차이가 없었다. 면역억제제인 cyclosporin을 투여한 군에서 유전자 치료 효과가 cyclosporin을 투여하지 않은 정상 mouse에 비해 치료효과가 유의하게 작았다. Cyclosporin 투여에 따른 유전자의 발현기간에는 유의한 차이가 없었다. 결 론: Retrovirus 벡타를 사용한 HSVtk 유전자치료에는 면역증강이 치료효과를 증가시킬 것으로 생각된다.
Epstein-Barr virus (EBV) is etiologically associated with a variety of diseases including lymphoproliferative diseases, lymphomas, carcinomas, and autoimmune diseases. Humans are the only natural host of EBV and limited species of new-world monkeys can be infected with the virus in experimental conditions. Small animal models of EBV infection, required for evaluation of novel therapies and vaccines for EBV-associated diseases, have not been available. Recently the development of severely immunodeficient mouse strains enabled production of humanized mice in which human immune system components are reconstituted and express their normal functions. Humanized mice can serve as infection models for human-specific viruses such as EBV that target cells of the immune system. This review summarizes recent studies by the author's group addressing reproduction of EBV infection and pathogenesis in humanized mice.
Lee, Jeong-Min;Hwang, Kwon-Taek;Lee, Jong-Moon;Kim, Sun-Ho;Watson, Ronald R.;Park, Kun-Young
Preventive Nutrition and Food Science
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제9권1호
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pp.65-70
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2004
Side-stream cigarette smoke (SSCS) is a major component of environmental tobacco smoke. The purpose of this study was to investigate the development of lung injury and lipid peroxidation in the lung and liver of immunodeficient (Nude) mice exposed to acute SSCS (a total 5 hours of exposure). The effects of French maritime bark extract (Pycnogeno $l^{ⓡ}$) supplementation of the mice were also determined. SSCS increased pulmonary resistance and lipid peroxidation in these mice. Pycnogeno $l^{ⓡ}$ supplementation increased vitamin E levels in lung and liver. In addition, Pycnogeno $l^{ⓡ}$ attenuated SSCS-mediated lung injury and lipid peroxidation. It appears that the enhanced resistance against SSCS-induced lung injury and lipid peroxidation may be primarily due to the antioxidant property of Pycnogeno $l^{ⓡ}$ in supplemented mice.
Recombination activating gene-2 (RAG-2) plays a crucial role in the development of lymphocytes by mediating recombination of T cell receptors and immunoglobulins, and loss of RAG-2 causes severe combined immunodeficiency (SCID) in humans. Rag-2 knockout mice created using homologous recombination in ES cells have served as a valuable immunodeficient platform, but concerns have persisted on the specificity of Rag-2-related phenotypes in these animals due to the limitations associated with the genome engineering method used. To precisely investigate the function of Rag-2, we recently established a new Rag-2 knockout FVB mouse line ($Rag-2^{-/-}$) manifesting lymphopenia by employing a CRISPR/Cas9 system at Center for Mouse Models of Human Disease. In this study, we further characterized their phenotypes focusing on histopathological analysis of lymphoid organs. $Rag-2^{-/-}$ mice showed no abnormality in development compared to their WT littermates for 26 weeks. At necropsy, gross examination revealed significantly smaller spleens and thymuses in $Rag-2^{-/-}$ mice, while histopathological investigation revealed hypoplastic white pulps with intact red pulps in the spleen, severe atrophy of the thymic cortex and disappearance of follicles in lymph nodes. However, no perceivable change was observed in the bone marrow. Moreover, our analyses showed a specific reduction of lymphocytes with a complete loss of mature T cells and B cells in the lymphoid organs, while natural killer cells and splenic megakaryocytes were increased in $Rag-2^{-/-}$ mice. These findings indicate that our $Rag-2^{-/-}$ mice show systemic lymphopenia with the relevant histopathological changes in the lymphoid organs, suggesting them as an improved Rag-2-related immunodeficient model.
Park, Hyun Jung;Lee, Won Young;Jeong, Ha Yeon;Song, Hyuk
International Journal of Stem Cells
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제9권2호
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pp.186-191
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2016
Background and Objectives: With the global demand for dairy protein for consumption growing annually, there has been increasing activity in the research field of dairy protein synthesis and production. From a manipulation perspective, it is more difficult to use live cattle for laboratory studies on the production of milk as well as of dairy protein such as casein, as compared with using laboratory animals like rodents. Therefore, we aimed to develop a mouse model of bovine mammary alveolar ducts for laboratory-scale studies. We studied the formation of the bovine mammary gland ductal structure by transplanting the MAC-T bovine alveolar cell line into mice. Methods and Results: MAC-T cells ($1{\times}10^7$) were suspended in Matrigel and injected into the dorsal tissue of 8-week-old male BALB/C nude mice. Histological analysis of tissue dissected from the MAC-T cell-transplanted mice after 6 weeks showed the typical morphology of the tubuloalveolar female gland, as well as glands made up of branching ducts that were surrounded by smooth muscle with small alveoli budding off the ducts. In addition, the epithelial markers CK14 and CK18 were expressed within the duct-like structure. Prolactin was detected in the duct interior in these CK14+ and CK18+ cells but not in the non-transplanted MAC-T cells. Conclusions: These results showed that duct-like tissue had been successfully formed after 6 weeks of transplantation of the CK14+ and CK18+ MAC-T cells into mice dorsal tissue. This mouse model will be a useful tool for further research on the bovine mammary gland.
Probiotics are currently considered as one of tools to modulate immune responses under specific clinical conditions. The purpose of this study was to evaluate whether oral administration of three different probiotics (Lactiplantibacillus plantarum CJLP243, CJW55-10, and CJLP475) could evoke a cell-mediated immunity in immunodeficient mice. Before conducting in vivo experiments, we examined the in vitro potency of these probiotics for macrophage activation. After co-culture with these probiotics, bone marrow derived macrophages (BMDMs) produced significant amounts of proinflammatory cytokines including interleukin-6 (IL-6), IL-12, and tumor necrosis factor-α (TNF-α). Levels of inducible nitric oxide synthase (inos) and co-stimulatory molecules (CD80 and CD86) were also upregulated in BMDMs after treatment with some of these probiotics. To establish an immunocompromised animal model, we intraperitoneally injected mice with cyclophosphamide on day 0 and again on day 2. Starting day 3, we orally administered probiotics every day for the last 15 d. After sacrificing experimental mice on day 18, splenocytes were isolated and co-cultured with these probiotics for 3 d to measure levels of several cytokines and immune cell proliferation. Results clearly indicated that the consumption of all three probiotic strains promoted secretion of interferon-γ (IFN-γ), IL-1β, IL-6, IL-12, and TNF-α. NK cell cytotoxicity and proliferation of immune cells were also increased. Taken together, our data strongly suggest that consumption of some probiotics might induce cell-mediated immune responses in immunocompromised mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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