In this work we have investigated the production of catalase from Bacillus sp. strains, which were screened and identified from soil. These strains were cultivated in shaking flasks with tryptic soy broth (TSB) at $30^{\circ}C$ and 200 rpm. Effects of the temperature and pH on the stability of the native catalase and whole cell viability were studied in the temperature range of $25-60^{\circ}C$ and the pH range of 7-13. Korean natural zeolite was added to culture medium and mixed with microorganisms for 24 hours. The native catalase maintained its activity over $50^{\circ}C$. The enzyme acitiviy of the catalase from Bacillus flexus BKBChE-3 was highest among the Bacillus sp. strains studied. Bacillus flexus BKBChE-3 and immobilized Bacillus cells have survived under extreme conditions of over $50^{\circ}C$ and pH 12. 60 mL of 10.5 mM $H_2O_2$ solution were entirely removed within 1 hour with catalase produced from Bacillus sp. on the flask. When Bacillus cells were immobilized on Korean natural zeolite, colony forming unit of Bacillus flexus BKBChE-3 was increased and high efficiency of hydrogen peroxide removal was observed.
Jeong Gwi Taek;Park Eun Soo;Byun Ki Young;Lee Hye Jin;Kim In Heung;Joe Yung Il;Kim Hae Sung;Song Yo Soon;Kim Do Heyoung;Ryu Hwa Won;Lee Woo Tae;Sun Woo Chang Shin;Park Don Hee
KSBB Journal
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v.19
no.5
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pp.385-389
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2004
In this research, the chemo-enzymatic synthesis of sorbitan methacrylate was investigated to optimize reaction conditions. Firstly, sorbitan was manufactured by sorbitol cyclic reaction in the presence of p-toluenesulfonic acid (p-TSA) as catalyst material. Secondly, sorbitan methacrylate was synthesized by immobilized lipase Novozyme 435 with acyl donors in t-butanol. As a result of enzymatic synthesis of sorbitan methacrylate, the conversion yield reached about $65\%$ in the condition of initial sorbitan conc. 50 g/L, enzyme content $3\%$ (w/v) , molar ratio 1:3, reaction temperature 50^{circ}C and reaction time 42 hrs using methyl methacrylate as acyl donor. Comparing with acyl donors and reaction temperature, the conversion yield reached about 18, 65 and $80\%$ with methacrylic acid, methyl methacrylate and vinyl methacrylate as acyl donor, respectively. And optimum reaction temperature was 60, 50, and 50^{circ}C, respectively
The multi-wall carbon nano-tube composite mixed with carbon paste electrode presented more sensitive and selective amperometric signals in the oxidation of glucose than general screen-printed carbon electrodes(SPCEs). Redox mediators to transport electrodes from enzyme to electrodes are very important part in the biosensor. A novel osmium redox complex was synthesized by the coordinating pyridine group containing primary amines which were electrochemically immobilized onto the MWCNT-SPCEs surface. Electrochemical studies of osmium complexes were investigated by cyclic voltammetry, chronoamperometry. The surface coverage of osmium complexes on the modified carbon nano-tube electrodes were significantly increased at 100 time (${\tau}_0=2.0\;{\times}\;10^{-9}\;mole/cm^2$) compared to that of the unmodified carbon electrodes. It's practical application of the glucose biosensor demonstrated that it shows good linear response to the glucose concentration in the range of 0-10 mM.
As the demand for large-scale analysis of gene expression using DNA arrays increases, the importance of the surface characterization of DNA arrays has emerged. We compared the efficiency of molecular biological applications on solid-phases with different surface polarities to identify the most optimal conditions. We employed thiol-gold reactions for DNA immobilization on solid surfaces. The surface polarity was controlled by creating a self-assembled monolayer (SAM) of mercaptohexanol or hepthanethiol, which create hydrophilic or hydrophobic surface properties, respectively. A hydrophilic environment was found to be much more favorable to solid-phase molecular biological manipulations. A SAM of mercaptoethanol had the highest affinity to DNA molecules in our experimetns and it showed greater efficiency in terms of DNA hybridization and polymerization. The optimal DNA concentration for immobilization was found to be 0.5 ${\mu}M$. The optimal reaction time for both thiolated DNA and matrix molecules was 10 min and for the polymerase reaction time was 150 min. Under these optimized conditions, molecular biology techniques including DNA hybridization, ligation, polymerization, PCR and multiplex PCR were shown to be feasible in solid-state conditions. We demonstrated from our present analysis the importance of surface polarity in solid-phase molecular biological applications. A hydrophilic SAM generated a far more favorable environment than hydrophobic SAM for solid-state molecular techniques. Our findings suggest that the conditions and methods identified here could be used for DNA-DNA hybridization applications such as DNA chips and for the further development of solid-phase genetic engineering applications that involve DNA-enzyme interactions.
This report describes the structures of high-mannose-type N-linked oligosaccharides in glycoproteins synthesized by the microfilariae of Diroflcrio immitis. Microfilariae of D. immitis were incubated in vitro in media containing 2-(3H) mannose to allow metabolic radiolabeling of the oligosaccharide moieties of newly synthesized glycoproteins. Glycopeptides were prepared from the radiolabeled glycoproteins by digestion with pronase and fractionation by chromatography on concanavalin A Sepharose. Thirty eight percent of 2- (3H) mannose incorporated into the microalariae of D. immitis glycopeptides was recovered in high mannose-type asparagine-linked oligosaccharides which were bound to the immobilized lectin. Upon treatment of 2-(3H) mannose labeled glycopeptides with endo - β- N- acetylglu co saminidase H , the high mannose type chains were released and their structures were determined by high performance liquid chromatography and exoglycosidase digestion. The major species of high mannose-type chains synthesized by microfilariae of D. immitis have the composition Man5GlcNAc2, Man6ClcNAc2, Man7GlcNAc2, and Man8GlcNAc2. Structural analyses indicate that these oligosaccharides are similar to high mannose-type chains synthesized by vertebrates.
Park, Hee-Joong;Koh, Jong-Uk;Ahn, So-Youn;Kong, Kwang-Hoon
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.26
no.3
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pp.433-439
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2005
To gain further insight on the relationship between structure and functions of glutathione S-transferase (GST), the three tyrosine 108 mutants, Y108A, Y108F, and Y108W, of human GST P1-1 were expressed in Escherichia coli and purified to electrophoretic homogeneity by affinity chromatography on immobilized GSH. The substitution of Tyr 108 with alanine resulted in significant decrease of the GSH-conjugation activity and the GSH peroxidase activity, but approximately 63% increase of steroid isomerase activity toward ${\Delta}^5$–[androstene 3,17-dione. On the other hand, the substitution of Tyr 108 with phenylalanine resulted in decreases of $k_{cat}\;and\;k_{cat}/K_m{^{EPNP}}$ by 2 orders of magnitude, suggesting that Tyr 108 residue of hGSTP1-1 are considered to be important for the catalysis and the binding of the epoxide substrates. The substitution of Tyr 108 with tryptophan resulted in significant decreases of the specific activities toward EPNP, cumene hydroperoxide and ${\Delta}^5$–ndrostene 3,17-dione, but approximately 2-fold increase on the enzyme-catalyzed addition of GSH to DCNB. We conclude from these results that Tyr 108 in hGST P1-1 plays very different roles depending upon the nature of the electrophilic substrates.
The enzymatic interesterification was performed to produce structured lipids (SLs) with palm mid fraction (PMF) and stearic ethyl ester (STEE) for 1, 3, 6, 9, 12 and 15 hr at $80^{\circ}C$. The reaction was catalyzed by Lipozyme TLIM (immobilized lipase from Thermomyces lanuginosus, amount of 20% by weight of total substrates) in a shaking water bath set at 180 rpm. The optimum condition for synthesis of asymmetric SLs were: substrate molar ratio 1:0.5 (PMF:STEE, by weight), reaction time 6 hr, enzyme 20% (wt%, water activity=0.085) of total substrate and reaction temperature $80^{\circ}C$. After reaction at optimized condition, triacylglycerols (symmetrical and asymmetrical TAGs) from reactants were isolated. POP/PPO (1,3-palmitoyl-2-oleoyl glycerol or 1,2-palmitoyl-3-oleoyl glycerol), POS/PSO (palmitoyl-oleoyl-stearoyl glycerol or palmitoyl-stearoyl-oleoyl glycerol), SOS/SSO (1,3-stearoyl-2-oleoyl glycerol or 1,2-stearoyl-3-oleoyl glycerol) were obtained by solvent fractionation. Finally, refined SLs contained stearic acid of 16.91%. Solid fat index and thermogram of the refined SLs were obtained using differential scanning calorimetry. The degree of asymmetric triacylglycerol in the refined SLs was analyzed by Ag-HPLC equipped with evaporated light scattering detector (ELSD). The refined SLs consisted of symmetric TAG of 41.15 area% and asymmetric TAG of 58.85 area%.
Kim, Jin-Hee;Kang, Hye-Jin;Kim, Eung-Soo;Kim, Jeong-Ho;Koo, Yoon-Mo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.2
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pp.231-236
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2004
The inexpensive large-scale production of pure PGA (Penicillin G Acylase) has been a commercial goal. PGA has been used as a model enzyme in the development of simple one-step purification methods. In this study, the purification of poly-His tagged PGA protein secreted into the periplasmic space was carried out by using immobilized metal-ion affinity chromatography (IMAC). The PGA gene was obtained from E. coli ATCC 11105. Codons encoding histidines were fused at the C-terminus of the PGA gene by PCR. E. coli JM109 harboring pPGA-HIS6 vector produced active his-tagged acylases in the presence of lac promoter during cultivation at $26^{\circ}C$. The maximum specific activity of the acylase purified by using one-step chromatography after osmotic shock was 38.5 U/mg and was recovered with the yield of 70%. Both 23 kDa ($\alpha$) and 62 kDa ($\beta$) subunits were recovered by using IMAC with just C-terminus tagging of the $\beta$ subunit. The purification of the periplasmic fraction by osmotic shock and that of purified acylase was increased by 2.6-fold and 19-fold, respectively, compared to the crude extract.
In this study, a biosensor was developed using an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) to rapidly measure the fungicide iprovalicarb residues in agricultural products. The biosensor was designed to include micro-pumps and solenoid valves for fluid transport, a spectrophotometer cuvet as a reaction chamber, a photodiode with a light-emitting diode for optical density measurement, and a control microcomputer to implement assay. The rate of change in optical density of the cuvet was read as final signal output. Micro-pumps were evaluated to investigate their delivery capability, the highest values of the error and the coefficient of variation were 4.3% and 4.6% respectively. As the incubation period was reduced from 15 minutes to 11 minutes to shorten the total processing time, the sensor sensitivity was decreased as the antibody dilution ratio was reduced to a half. The maximum usable period of the coated cuvet was found to be two days with 1% error limit. To predict the concentration of the iprovalicarb residue in agricultural products, a linear calibration model was obtained with r-square values of 0.992 for potato and 0.985 for onion. In validation test for the samples of potatoes and onions against the high performance liquid chromatography, very high correlation values were obtained as 0.996 and 0.993 respectively. Using the cuvet immobilized with antigen, it took 21-minutes for the biosensor to complete the measuring process of the iprovalicarb residues.
Kim, Chul-Ho;Lee, Gyun-Min;Han, Moon-Hi;Rhee, Sang-Ki
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.15
no.6
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pp.430-435
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1987
A chitin-immobilized enzyme amyloglucosidase(AMG) and a bacterium Zymomonas mobilis were coentrapped in alginate gel beads. Ethanol production was performed in a packed bed column reactor in a simultaneous saccharification and fermentation(SSF) mode using liquefied sago starch as a substrate. It was found that this process eliminated product inhibition and reverse reaction of glucose enhancing the rate of saccharification and ethanol production. At a low dilution rate of D = 0.11 hr$^{-1}$, the steady-state ethanol concentration was 46.0g/$m\ell$ (96.8 % of theoretical yield). The maximum ethanol productivity was 17.7g/$m\ell$, h at D = 0.83 hr$^{-1}$ when the calculation was based on the total working volume. The continuous production of ethanol was maintained stably over 40 days without problems in this reactor system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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